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文檔簡介

生物化學(xué)實驗,實驗 Folin-Wu法定量測定血糖的含量,一、目的要求 1、掌握FolinWu法測定血糖含量的原理和方法。 2、學(xué)會制備無蛋白血濾液。,二、實驗原理,Cu2+( CuSO4 )+葡萄糖 Cu+(Cu2O) Cu2O +酸性鉬酸試劑 藍色鉬化合物 OD420比色 無蛋白血濾液中的葡萄糖和堿性硫酸銅溶液共熱反應(yīng),Cu2+即被葡萄糖還原成Cu+(Cu2O),Cu2O又把酸性鉬酸試劑(Mo6+)還原成低價的藍色鉬化合物鉬藍 。 血濾液中葡萄糖的含量與產(chǎn)生的Cu2O成正比,而Cu2O的量與產(chǎn)生的鉬化合物的量成正比??捎帽壬ǘ康臏y定。,二、實驗儀器,1、 新鮮兔子血 2、 濾紙 3、 血糖管(25ml) 4、 奧氏吸管(1ml) 5、 錐形瓶(50ml) 6、 漏斗 7、 電爐 8、 水浴鍋 9、7200型可見分光光度計,1、標準葡萄糖溶液(0.1mg/ml) (1)1%葡萄糖母液:稱取1.000g葡萄糖,溶于蒸餾水,稀釋并定容至100ml。 (2)葡萄糖標準液:取1.0ml葡萄糖母液于100ml容量瓶中,加蒸餾水定容。 2、10%鎢酸鈉溶液:稱取鎢酸鈉10g,溶于蒸餾水并定容至100毫升。 3、0.33mol/LH2SO4溶液:于53ml蒸餾水中加入1ml的濃硫酸。 4、堿性硫酸銅溶液 A液:無水碳酸鈉35g,酒石酸鈉13g及碳酸氫鈉11g溶于蒸餾水,稀釋定容至1000ml. B液:硫酸銅晶體5g,溶于蒸餾水并定容至100ml。 臨用時,A液:B液=15:1混合(體積比),混合液于冰箱中保存(4)。,四、實驗試劑,2、血糖的定量測定: 取25ml的血糖管(見圖1)3支,編號。第一支血糖管中加入1ml蒸餾水(空白管);第二支血糖管中加1ml標準葡萄糖液;用奧氏吸管吸取無蛋白血濾液1ml,放入第三支血糖管中。 然后向三支血糖管中各加入2ml新配制的堿性硫酸銅溶液,同時置于沸水浴中8分鐘,取出,在流水中迅速冷卻后各加4ml酸性鉬酸鹽溶液。一分鐘后,用蒸餾水稀釋至25ml,混勻,用7220分光光度計在420波長處比色,以空白管調(diào)節(jié)零點。,按下式計算100ml全血中所含血糖的含量 m=OD1/OD2 C 10 100 式中: m=100ml全血中含血糖毫克數(shù) C=標準液葡萄糖含量(0.1mg/ml) OD1=樣品液光密度值 OD2=標準液光密度值,六、結(jié)果計算:,實驗 肝糖元的提取和鑒定,一、實驗原理 糖原在濃堿中穩(wěn)定,將肝組織先置于濃堿中加熱,使蛋白質(zhì)及其他成分分解而保留肝糖元。再用濃硫酸使糖原脫水生成糖醛衍生物,衍生物和蒽酮作用形成藍色化合物,與同法處理的標準葡萄糖一起比色定量。,二、實驗儀器 1、 新鮮肝臟 2、 100ml容量瓶 3、 7220分光光度計 4、 水浴鍋 5、 試管(ml、2ml、5ml),三、實驗試劑,1、30%NaOH溶液:30gNaOH溶于100ml蒸餾水中 2 、標準葡萄糖溶液(0.1mg/ml):準確稱取10mg分析純葡萄糖(預(yù)先在110干燥至恒重),用少量蒸餾水溶解后,定容至100ml. 3、顯色劑:稱取0.2g蒽酮加入100ml濃硫酸中。此試劑不穩(wěn)定,以臨用時配用為宜,冰箱保存可用45天,四、實驗步驟 1、準確稱取肝組織0.5g,放入盛有1.5ml30%NaOH的試管中,置于沸水浴中加熱20分鐘,取出后冷卻,將管中內(nèi)溶物全部轉(zhuǎn)移到100ml容量瓶中(用蒸餾水多次洗滌試管,一并收入容量瓶)加蒸餾水定容。 2、取干燥試管三支,注明空白管、標準管、測定管,按下表進行操作。加畢,搖勻,置沸水浴中10分鐘,冷卻,以空白管調(diào)節(jié)零點,在620nm波長下比色測定。,五、結(jié)果計算 100g肝組織中所含糖原的克數(shù) =(OD測/OD標)C標2100(1/1000) (100/111) (100/0.5) 注:100/111是此法測的葡萄糖含量換算為糖原含量的常數(shù),即100g糖原用蒽酮試劑顯色相當于111g葡萄糖用蒽酮試劑所顯得色,實驗五 雙縮脲法測定蛋白質(zhì)的濃度,一、實驗原理 蛋白質(zhì)在堿性溶液中可與CU2+形成紫色化合物,在一定濃度的范圍內(nèi),蛋白質(zhì)濃度與生成的紫色化合物顏色的深淺成正比,可用比色法測定。,二、實驗儀器 1、 試管 2、 吸管 3、 容量瓶 4、 7220分光光度計,三、實驗試劑 1、1mg/ml卵清蛋白液:將1g卵清蛋白溶于0.9%NaCl溶液并稀釋至1000ml. 2、雙縮脲試劑:將1.75gCuSO4.5H2O溶于約150ml蒸餾水,然后置于1000ml容量瓶中,加入300ml濃氨水、300ml冰冷的蒸餾水和200ml飽和氫氧化鈉溶液,搖勻,室溫放置2小時,再加蒸餾水至刻度,搖勻備用。,四、實驗步驟 1、標準曲線的繪制:取7支干燥的試管,按下表加入試劑: 將上述溶液混合后,試管中即有紫紅色出現(xiàn),在540nm下測的各管的吸光度,以蛋白質(zhì)濃度為橫坐標,OD值為縱坐標作出標準曲線。 2、 樣液的測定 取未知濃度的蛋白質(zhì)溶液3.0ml置試管中,加入雙縮脲試劑2.0ml,混勻,測其540nm的吸光度,對照標準曲線求得未知液蛋白質(zhì)濃度。,實驗六 氨基酸的紙層析法,一、原理 以濾紙為支持物的層析法,稱為紙層析法。紙層析所用展層劑大多由水和有機溶劑組成。展層時,水為靜止相,他與濾紙纖維親和力強;有機溶劑為流動相,它與濾紙纖維親和力弱。有機溶劑在濾紙上又下向上移動的,稱為上行法;有上向下移動的,稱為下行法。 將樣品在濾紙上確定的原點處展層,由于樣品中各種氨基酸在兩相中不斷進行分配,且他們的分離系數(shù)各不相同,所以不同的氨基酸隨流動相移動的速率也不相同,于是各種氨基酸在濾紙上就相互分離出來,形成距原點不等的層析點。 在一定條件下(室溫、展層劑的組成、濾紙的質(zhì)量、PH值等不變),不同的氨基酸有固定的移動速率(Rf值) Rf=原點到層析點中心的距離/原點到溶劑前沿的距離 用混合氨基酸做樣品時,如果只用一種溶劑展層,由于某些氨基酸的移動速率相同或相近,就不能將它們分開,為此,當用一種溶劑展層后,可將濾紙旋轉(zhuǎn)90度,以第一次所的層析點為原點,在用另一溶劑展層,從而達到分離的目的。這種方法稱為雙向?qū)游龇ā?本試驗主要介紹的是單向?qū)游龇āF渲谢旌习被嵊芯彼?、酪氨酸、苯丙氨酸組成。,二、實驗儀器 1、 新華濾紙 2、 層析缸 3、 細線 4、 點樣管 5、 橡皮筋 6、 電吹風(fēng) 7、 噴霧器,三、實驗試劑 1、 混合氨基酸 2、展層劑:正丁醇:12%氨水:95%乙醇:蒸餾水=13:3:3:1(v:v) 3、0.5%茚三酮無水丙酮溶液:0.5g茚三酮溶于100ml無水丙酮,貯于棕色瓶中,四、試驗步驟 1、取濾紙條一張,在一端打孔,系一根細線,在另一端3cm處用鉛筆畫一橫線,中間畫一圓點(原點)。 2、取毛細管一支,吸取氨基酸混合液,在原點處點樣,樣點直徑不宜超過5mm,每點一次用吹風(fēng)機吹干,點23次為佳。 3、點樣后將濾紙放入層析缸中展層,注意點樣線要高于層析液面,濾紙不要貼在層析缸璧上,展層23小時。 4、取出濾紙,用鉛筆記下溶劑前沿,然后用熱風(fēng)吹干(或烘箱60)烘干。 5、均勻噴上0.5茚三酮無水丙酮液,注意使溶液不到流,不間斷。 6、用吹風(fēng)機烘干,觀察層析點,確定其幾何中心。 7、量取數(shù)值,計算各自的Rf值,與表中標準氨基酸Rf值比較,確定樣品氨基酸種類。,實驗七 醋酸纖維薄膜電泳法分離牛血清蛋白,一、原理 蛋白質(zhì)是兩性電解質(zhì)。當PHPI時,蛋白質(zhì)為負離子,在電場中向陽極移動;當PHPI時,蛋白質(zhì)為正離子,在電場中向陰極移動。血清中含有數(shù)種蛋白質(zhì),在同一PH值時,因所帶電荷不同,而在電場中的移動速度也不相同,故可用電泳法將其分離。 本試驗以牛血清為材料,醋酸纖維薄膜為支持物,通過點樣、電泳、染色、脫色從而得到血清中蛋白質(zhì)的分離圖譜,再進行觀察和定量分析。,二、實驗儀器 1、 牛血清 2、 醋酸纖維薄膜 3、 鑷子 4、 電泳儀 5、 電泳槽 6、 載玻片,三、實驗試劑 1、巴比妥巴比妥鈉緩沖液(離子強度,PH8.6):稱取巴比妥1.66g和巴比妥鈉12.76g,溶于蒸餾水并稀釋至1000ml。用pH計較正后使用。 2、 染色液:氨基黑10B0.5g,甲醇50ml,冰乙酸10ml,蒸餾水40ml混勻即可。 3、 漂洗液:95%乙醇45ml,冰乙酸5ml和蒸餾水50ml混勻即可。,四、試驗步驟 1、準備:用鑷子取薄膜一條,浸入緩沖液中,完全浸透后(大約3-5分鐘),用鑷子取出,將無光澤的一面向上,平放在干凈濾紙上,將濾紙對折,吸取多余的緩沖液。 2、點樣:取載玻片一塊,用點樣管將血清均勻的涂在載玻片的一端面上,在薄膜一端1/3處點樣。 3、電泳:將薄膜平貼于放在電泳槽上并已浸透緩沖液的濾紙上,無光澤面要向下放置,點樣端放在陰極,進行電泳。電泳條件:電壓90-110V,電流0.4-0.6A,通電60分鐘。 4、 染色:電泳完畢,將薄膜浸入染色液中5-10分鐘,進行染色。 5、漂洗:染色完畢,將薄膜取出,放入漂洗液中漂洗至背景無色,在浸入蒸餾水中。 6、圖譜觀察:觀察圖譜,將各種血清蛋白質(zhì)按實際比例大小繪于實驗報告紙上。,一、原理 聚丙烯酰胺凝膠盤狀電泳是根據(jù)被分離物質(zhì)所帶的電荷多少及其分子的大小,形狀的不同,在電場的作用下,產(chǎn)生不同的速度而分離的方法。 它具有分子篩效應(yīng)、電荷效應(yīng)、濃縮效應(yīng)三重作用。 在這三重效應(yīng)的共同作用下使血清蛋白中不同的蛋白質(zhì)分離開來。,實驗八 聚丙烯酰胺凝膠盤狀電泳法分離牛血清蛋白,二、實驗儀器 電泳儀 電泳槽 注射器 長針頭 吸管 培養(yǎng)皿,三、實驗試劑,三羥甲基氨基甲烷(簡稱Tris) 貯備液的配制:按下表配制A、B、C、D、E、F各貯備液,然后冷藏于4條件下,以防變質(zhì)。 染色液: 0.05%氨基黑10B溶于7%醋酸溶液,或者用靈敏度高5倍考馬斯亮藍R250溶液染色。 脫色液:7%醋酸溶液。 電極緩沖液(pH8.3甘氨酸-Tris緩沖液):甘氨酸28.8g,Tris0.6g加水定容至1000ml. 示蹤劑:0.01%溴酚藍溶液。,四、實驗步驟,1.制膠:取一支長10cm左右的玻璃管,在一端套上乳膠管和短玻棒。 1)7%聚丙烯酰胺凝膠(PH8.9,分離膠): 將試劑按A:C:H2O:E=1:2:1:4比例混合于一燒杯中,用滴管將分離膠加入玻璃管至8cm高度,表面再加少量水覆蓋,在日光燈下聚合20分鐘左右,當有界面出現(xiàn)時,表明已經(jīng)聚合,吸取分離膠表面的水分。,2)2.5%聚丙烯酰胺凝膠(pH6.7,分離膠): 將試劑按B:D:F:E=1:2:1:4比例混合于燒杯中,迅速將其用滴管加到分離膠上面。 至玻璃管9厘米處(即加入1厘米高),在小心地加入一層薄水。 然后膠管移至日光燈下放置20分鐘左右,待第二次出現(xiàn)界面,表示聚合完成,除去表面水分。,2.安裝膠管 把玻璃管下端得橡皮冒除去(拔時用力不要過猛,以防使膠條受損),將膠管安裝在電泳儀上。 注意垂直,并要緊密,防止緩沖液從上槽漏下。 先向各膠管中加滿電極緩沖液,不要有氣泡留存,在向下槽注入緩沖液,然后將膠管下降至下槽緩沖液內(nèi)。 3.加樣 1ml新鮮血清。用40%蔗糖溶液稀釋10倍,加1ml0.1%溴酚藍示蹤劑混勻。 用微量注射器或移液槍向膠管內(nèi)加5-10ul樣品液,注意微量注射器或移液槍頭要插入膠管內(nèi)加液。,4.電泳 上槽連接負極,下槽連接正極,然后通電,先每管電流3mA電泳,當示蹤劑進入分離膠時,電流增至每管5mA。 當示蹤劑移至膠管下端1cm處時,關(guān)閉電源,取出膠管。電泳大約2-3小時。 5.剝膠 取一只帶長針頭的注射器,灌滿水,將針頭從濃縮膠的一端小心的管壁與凝膠之間,轉(zhuǎn)動膠管,并同時推動注射器,在針頭向前推動時,注入蒸餾水,使膠條隨水的壓力及潤滑作用從玻璃管中脫離。,6.染色 將剝出的膠條于氨基黑10染色液或染色靈敏度高倍的考馬斯亮藍溶液中染色10分鐘 7.脫色 將膠條自染色液中取出后,用水沖去表面的染料,置于7%醋酸溶液中浸洗脫色,經(jīng)常換新溶液,直至背景幾乎無色為止,約需2-3天的時間 8.觀察繪圖 將脫色膠條取出放于濾紙上,觀察分離色帶,將結(jié)果繪于實驗報告紙上。,實驗九 胰蛋白酶活力測定,一、原理 福林酚試劑中的磷鎢酸和磷鉬酸,在堿性條件下極不穩(wěn)定,易被酚類化合物還原為藍色化合物(鎢藍和鉬藍)。 蛋白質(zhì)中含具酚基的氨基酸(酪氨酸、色氨酸、苯丙氨酸),用胰蛋白酶水解蛋白底物,生成含酚基的氨基酸與福林酚試劑反應(yīng),生成藍色化合物,在一定的范圍內(nèi),藍色化合物顏色的深淺與酶活力的大小成正比。,二、實驗儀器 試管 7220分光光度計 恒溫水浴鍋,三、實驗試劑 福林試劑B:見福林(Folin)-酚試劑法測定蛋白質(zhì)的濃度部分 0.55mol/L碳酸鈉溶液:58.3g無水碳酸鈉溶于蒸餾水,稀釋并定容至1000ml 10%三氯乙酸溶液 0. 2mol/L磷酸緩沖液(pH7.5): 0.5% 酪素溶液:稱取0.5g酪素,以0.5mol/L氫氧化鈉1ml濕潤,再加少量0. 2mol/L磷酸緩沖液稀釋。在水浴中煮沸溶解,冷卻,稀釋并容至100ml,冷藏在冰箱里。,四、實驗步驟,標準曲線的制作: 精確稱取烘干的酪氨酸50mg,加少量0.2mol/L鹽酸溶解,定容至100ml,分別配成0-100ug/ml不同濃度溶液,不同濃度各取酪氨酸液1ml,加0.5%酪素2ml,于37水浴中反應(yīng)15分鐘,然后加入10%三氯乙酸3ml,離心或過濾除去沉淀,取清液1ml,加入0.55mol/L碳酸鈉5ml,再加入福林試劑1ml,于37 水浴中顯色15分鐘,測OD680。 以光密度為縱坐標,酪氨酸的微克數(shù)為橫坐標繪制標準曲線。,樣品測定:取干燥的試管2支,按下表加入試劑,五、結(jié)果計算,酶活力:在37下每分鐘水解酪素產(chǎn)生lug酪氨酸為一個活力單位。 樣品中含酶活力單位=A/15 F A樣品測定光密度查曲線得相當酪氨酸ug數(shù) F酶液稀釋倍數(shù),實驗十、酵母RNA的提取及鑒定,一、原理 酵母核酸中RNA含量較多,DNA含量則少于2%。 RNA可溶于堿性溶液,當堿被中和后,可加乙醇使其沉淀,有此可得粗RNA制品。,二、實驗儀器 離心機 水浴鍋 電爐 燒杯 量筒,三、實驗試劑,干酵母粉 0.2%氫氧化鈉溶液:2g氫氧化鈉溶于蒸餾水并稀釋至1000ml。 乙酸 95%乙醇 無水乙醚 10%硫酸 氨水 5%硝酸銀溶液:5g硝酸銀溶于蒸餾水并稀釋至100ml,貯于棕色瓶中。 苔黑酚-三氯化鐵溶液:將100mg苔黑酚溶于100ml濃鹽酸中,再加入100mgFeCl3.6H2O。臨用時配制。,四、實驗步驟,1.RNA的提取:稱取2g干酵母粉于100ml燒杯中,加入0.2%氫氧化鈉溶液20ml,沸水浴加熱30分鐘,經(jīng)常攪拌。然后加入乙酸數(shù)滴,使提取液呈酸性(石蕊試紙),離心10-15分鐘(4000r.p.m)。 取上清液,加入2倍體積的95%乙醇,邊加邊攪,加畢,靜止,待完全沉淀,過濾。 濾渣先用95%乙醇洗2次,每次約5毫升,再用無水乙醚洗2次,每次也約5ml。 洗滌時可小心地用玻璃棒攪動沉淀。乙醚濾干后,濾渣即為粗RNA,可鑒定。,2.鑒定:取上述RNA約0.5g,加10%硫酸5ml,加熱至沸12分鐘,將RNA水解。 取水解液0.5ml,加入苔黑酚-三氯化鐵溶液1ml,加熱至沸1分鐘,觀察顏色變 化。 水解液2ml,加入氨水2ml和5%硝酸銀溶液1ml,觀察是否產(chǎn)生絮狀嘌呤銀化合物。,實驗十一 DNA的定量測定-二苯胺法,一、原理 DNA分子中的脫氧核糖基,在酸性溶液中變成-羥基-a-酮基戊糖,與二苯胺試劑作用生成藍色化合物,在一定波長范圍內(nèi),化合物藍色的深淺與DNA的含量成比例關(guān)系,可用比色法測定。,二、實驗儀器 試管 移液管 7220分光光度計,三、實驗試劑,1、DNA標準液(100ug/ml):稱取10mgDNA鈉鹽溶于5mol/l氫氧化鈉溶液并稀釋至100ml。 2、二苯胺試劑: A液:稱取純二苯胺1.50g,溶于100ml冰乙酸,再加濃硫酸1.5ml。貯于棕色瓶中。 B液:稱取1.6ml乙醛溶于100ml蒸餾水中,臨用時配制 臨用時,將20mlA液和0.1mlB液混合即可,四、試驗步驟 1.標準曲線的繪制 取干燥的試管6支,編號,按下表加入試劑:,加畢,混勻,在60度水浴中保溫45分鐘,冷卻后,在595nm波長下測吸光度,以吸光度對DNA濃度作標準曲線。,2.樣品測定 吸取DNA樣液1ml,加入二苯胺溶液2.0ml, 加畢,混勻,在60度水浴中保溫45分鐘,冷卻后,在595nm波長下測吸光度,根據(jù)所測得的吸光度對照標準曲線求得DNA的質(zhì)量。 五、結(jié)果計算 按下式計算樣品中DNA百分含量: DNA%=樣液中測的DNA量/樣液中所含樣品量*100%,實驗十二 維生素C的定量測定(2,6-二氯靛酚滴定法),一、原理 維生素c又稱為抗壞血酸,其還原型能還原染料2,6-二氯靛酚鈉鹽,本身則氧化成脫氫抗壞血酸。 在酸性溶液中,2,6-二氯靛酚成紅色,被還原后變?yōu)闊o色。 因此可用2,6-二氯靛酚滴定樣品中含有的維生素C,當樣品中的維生素C被完全還原后,在滴加過量的2,6-二氯靛酚,溶液變?yōu)榈t色,即為終點。 如無其他雜質(zhì)干擾,則樣品液所還原的2,6-二氯靛酚的量與樣品中所含有維生素C的量成正比。,二、實驗儀器 新鮮水果 吸管 容量瓶 滴定裝置 錐形瓶 研缽 漏斗,三、實驗試劑 1、2%草酸溶液:草酸2g,溶于100ml蒸餾水。 2、1%草酸溶液:草酸1g,溶于100ml蒸餾水。 3、標準維生素C液:準確稱取10.0mg維生素C,溶于1%草酸溶液,并稀釋至100ml,貯于棕色瓶中,冷藏,最好臨用時配制。此溶

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