RTPCR詳細圖文解析

1、一、實時熒光定量PCR原理（一）定義：在PCR反應體系中加入熒光基團，利用熒光信號累積實時監(jiān)測整個PCR進程，最后通過標準曲線對未知模板進行定量分析的方法 。（二）實時原理1、常規(guī)PCR技術：對PCR擴增反應的終點產物進行定量和定性分析無法對起始模板準確定量，無法對擴增反應實時檢測。2、實時定量PCR技術：利用熒光信號的變化實時檢測PCR擴增反應中每一個循環(huán)擴增產物量的變化，通過Ct值和標準曲線的分析對起始模板進行定量分析 3、如何對起始模板定量？ 通過Ct值和標準曲線對起始模板進行定量分析.4、幾個概念：（1）擴增曲線 ：（2） 熒光閾值： （3）Ct值：

2、60;    CT值的重現(xiàn)性： 5、定量原理：理想的PCR反應：   X=X0*2n非理想的PCR反應：  X=X0 (1+Ex)n      n：擴增反應的循環(huán)次數(shù)      X：第n次循環(huán)后的產物量      X0：初始模板量      Ex：擴增效率5、標準曲線 6、絕對定量1）確定未知樣品的 C(t)

3、值2）通過標準曲線由未知樣品的C(t)值推算出其初始量 7、DNA的熒光標記： 二、實時熒光定量PCR的幾種方法介紹方法一：SYBR Green法（一）工作原理1、SYBR Green  能結合到雙鏈DNA的小溝部位     2、SYBR Green  只有和雙鏈DNA結合后才發(fā)熒光3、變性時，DNA雙鏈分開，無熒光4、復性和延伸時，形成雙鏈DNA， SYBR Green 發(fā)熒光，在此階段采集熒光信號。  PCR反應體系的建立及優(yōu)化: 1、SYBR Green 使用濃度:太高

4、抑制Taq酶活性，太低，熒光信號太弱，不易檢測 2、Primer：引物的特異性高，否則擴增有雜帶，定量不準 3、MgCl2的濃度:可以降低到1.5mM,以減少非特異性產物4、反應Buffer 體系的優(yōu)化5、反應溫度和時間參數(shù):由酶和引物決定 6、其他與常規(guī)PCR相同（二）應用范圍1、起始模板的測定；2、 基因型的分析；3、 融解曲線分析：可以優(yōu)化PCR反應的條件，對常規(guī)PCR有指導意義，如對primer的評價；可以區(qū)分單一引物、引物二聚體、變異產物、多種產物。（三）優(yōu)點及缺點優(yōu)點：對DNA模板沒有選擇性；適用于任何DNA； 使用方便；不必設計復雜探針；非常靈敏；

5、便宜。 缺點：容易與非特異性雙鏈DNA結合，產生假陽性；但可以通過融解曲線的分析，優(yōu)化反應條件；   對引物特異性要求較高。方法二：TaqMan-水解型雜交探針  *5端標記有報告基團(Reporter, R)  ，如FAM、VIC等 *3端標記有熒光淬滅基團 (Quencher, Q)* 探針完整，R所發(fā)射的熒光能量被Q基團吸收 ，無熒光， R與Q分開，發(fā)熒光*Taq酶有 53外切核酸酶活性，可水解探針（一）工作原理 注意：每擴增一條DNA分子，釋放一個熒光信號，可以在循環(huán)過程中任一點檢測熒光PCR反應的建立：1

6、、引物、探針的設計： 探針Tm為68-70 ，<30 bp, 5不能有G，G可能會淬滅熒光素，引物盡量靠近探針，擴增片段<400 bp，引物Tm為59-602、反應參數(shù)的確定：一般為：94 ，10-20S 60，30-60S（Taq酶53外切核酸酶活性在60 最高） 也可通過溫度梯度優(yōu)化退火溫度72 ，45 S，3、優(yōu)化引物和探針濃度：獲得最小Ct值，信號/背景比值的最大值  引物濃度：50-900nM 探針濃度：50-250nM4、其他與常規(guī)PCR相同（二）優(yōu)缺點優(yōu)點：對目標序列的高特異性        -陰性結果確定設