動物解剖生理實驗指導(共21頁)

1、PAGE PAGE 33實 驗 內 容實驗一、顯微(xin wi)鏡的使用、組織切片的顯微觀察實驗二、犬骨骼的觀察、骨骼辨認(binrn)測試實驗三、血液(xuy)的凝固實驗四、紅細胞的脆性試驗實驗五、蛙心活動觀察實驗六、紅細胞計數實驗七、反射弧分析及脊髓反射活動觀察實驗八、胃腸運動觀察和小腸吸收觀察實驗一 顯微鏡的構造、使用和保養(yǎng)實驗(shyn)目的 了解顯微鏡的基本構造，掌握顯微鏡的使用(shyng)方法和保養(yǎng)方法。材料(cilio)設備 顯微鏡、組織切片、擦鏡紙等。方法步驟 （一）機械部分1、鏡筒2、物鏡轉換器3、鏡臂4、調焦器5、載物臺6、鏡柱7、鏡座（二）光學系統(tǒng)部分光鏡的光學系統(tǒng)主

2、要包括物鏡、目鏡和照明裝置（反光鏡、聚光器和光圈等）。1、目鏡：常見的有5、10和15（表示放大倍數）的目鏡，可根據不同的需要選擇使用，最常使用的是10目鏡。2、物鏡(wjng)：常用(chn yn)物鏡的放大倍數有10、40和100等幾種(j zhn)。一般將8或10的物鏡稱為低倍鏡（而將5以下的叫做放大鏡）；將40或45的稱為高倍鏡；將90或100的稱為油鏡（這種鏡頭在使用時需浸在鏡油中）。圖1-3 物鏡的性能參數及工作距離C 線為蓋玻片的的上表面，10物鏡的工作距離為7.63mm；40物鏡的工作距離為0.198mm；10/0.25、40/0.65、100/1.25表示鏡頭的放大倍數和數字

3、孔徑。160/0.17表示鏡筒長度為160mm，蓋玻片厚度為0.17mm。3、聚光器：調節(jié)光線的強弱，升高聚光器可使光線增強，反之則光線變弱。光圈能控制進入聚光器的光束大小的可變光闌。以調節(jié)光線的強弱。在光圈的下方常裝有濾光片框，可放置不同顏色的濾光片。4、反光鏡：反光鏡有兩個面，一面為平面鏡，另一面為凹面鏡，凹面鏡有聚光作用，適于較弱光和散射光下使用，光線較強時則選用平面鏡。二、光學顯微鏡的使用方法（）準備將顯微鏡平穩(wěn)地放在身前的實驗桌上，略偏左，使鏡臂對著身體，鏡筒向前。（二）對光轉動轉換器，使低倍鏡對準通光孔，轉動粗調節(jié)器，使低倍鏡前端距載物臺約1-2厘米的距離。將光圈放大；讓左眼朝目鏡

4、里注視，同時用手將反光鏡轉向光源；調節(jié)反光鏡，直至從目鏡里看到一個白色明亮的圓形視野。 （三）低倍鏡觀察將玻片標本放在載物臺上，使待檢查部分位于通光孔中心，用彈簧夾片壓住載玻片兩端。兩眼從側面注視，將物鏡降至距標本約0.5厘米時停止。用左眼朝目鏡里觀察，同時轉動粗調節(jié)器，緩慢上升鏡筒，直到視野中出現(xiàn)(chxin)物象，再用細調節(jié)器調節(jié)。（四）高倍(o bi)鏡觀察先將低倍鏡下找到所需觀察(gunch)的物象，把要進一步放大的部位移到視野正中央。轉動轉換器，使高倍鏡到位。調節(jié)反光鏡和光圈，使光照明亮，再微微調節(jié)細調節(jié)器，直到物象清晰。 （五）顯微鏡復原用擦鏡紙揩凈目鏡和物鏡，用清潔紗布揩凈鏡體。

5、再轉動轉換器，把兩個物鏡偏到兩旁，并將鏡筒下降，然后將顯微鏡平穩(wěn)地放入鏡箱內保存。實驗(shyn)二 動物主要(zhyo)組織的顯微鏡識別實驗(shyn)目的 掌握單層扁平上皮、單層柱狀上皮、單層立方上皮、疏松結締組織、骨骼肌、平滑肌、神經元的結構特點。材料設備 顯微鏡、單層扁平上皮、單層柱狀上皮、單層立方上皮、疏松結締組織、骨骼肌、平滑肌、神經組織切片及相關的圖。方法步驟 1、取鏡與放置移動顯微鏡時，要一手拿鏡臂，一手托鏡座，將顯微鏡放置在前方桌面上。2、打開光源，上升聚光鏡，開大孔徑光闌。3、觀察將被檢標本置于載物臺上，用壓片夾夾住, 旋轉最低倍數物鏡觀察。調節(jié)粗調焦螺旋，使載物臺緩緩上升

6、，直至物鏡鏡頭接近標本。這時，一邊使用目鏡觀察，一邊調節(jié)粗調焦螺旋使載物臺下降，直至視野中看到物像為止。移動載片位置，使物象處于視野的中心，此時再調節(jié)細調焦螺旋以增加物象的清晰度，可以調節(jié)聚光鏡和孔徑光闌，使光線強弱適中，以便于觀察。轉動物鏡轉換器，換用高倍鏡頭。用細調焦螺旋調節(jié)，換用高倍鏡后，可調節(jié)聚光鏡和孔徑光闌以增加亮度。觀察更細微結構(jigu)必需使用油鏡時，則在制片上滴一滴香柏油。油鏡使用完后，要及時地用蘸有乙醚的擦鏡紙把油鏡鏡頭擦拭干凈。4.收顯微鏡關閉(gunb)光源；下降聚光鏡；關閉孔徑光闌；轉動物鏡轉換器，使之處于最低倍數物鏡下。顯微鏡保持清潔。顯微鏡的光學部分只能用專門(

7、zhunmn)的擦鏡紙擦拭。按實驗室的要求，做好顯微鏡的使用記錄等。實驗結果 1復層上皮組織2平滑肌3. 神經組織4. 心肌切片5. 硬骨組織6. 軟骨組織實驗三 犬全身主要骨、關節(jié)、骨性標志的識別實驗目的 在犬骨骼標本上識別各部位骨骼及骨性標志。材料設備 犬骨骼標本。方法步驟 脊柱骨的組成：頸椎、胸椎、腰椎、薦椎、尾椎的形態(tài)與連結。胸廓的組成：胸椎、肋骨和胸骨。骨盆腔構造：背側薦骨、側面髖骨、后側坐骨、腹側恥骨組成。四肢骨組成及分布：骨骼名稱、形態(tài)、關節(jié)名稱、關節(jié)角度。骨性標志：肩胛岡、大結節(jié)、髖結節(jié)、大轉子、坐骨結節(jié)。實驗結果繪制犬全身主要骨、關節(jié)和骨性標志的圖示。技能(jnng)考核在標

8、本和活體(hu t)上識別主要骨、關節(jié)及骨性標志。*骨骼(gg)辨認測試實驗三 血液凝固實驗目的 以血液凝固時間作為指標，了解對血液凝固影響的因素，加深對生理止血過程的理解。 實驗原理 血液凝固是一個酶的有限水解激活過程，可分為三個環(huán)節(jié)：（1）凝血酶原激活物的形成；（2）凝血酶原激活為凝血酶；（3）纖維蛋白的形成。在此過程中有多種凝血因子和Ca離子的參與。根據凝血過程起動時激活因子來源不同，可將血液凝固分為內源性激活途徑和外源性激活途徑。內源性激活途徑是指參與血液凝固的所有凝血因子在血漿中，外源性激活途徑是指受損的組織中的組織因子進入血管后，與血管內的凝血因子共同作用而啟動的激活過程。 實驗藥

9、品(yopn)和器材 生理鹽水，液狀石蠟(sh l)、草酸鹽、檸檬酸鹽、肝素（8 U/ml）。注射器，試管6支，小燒杯2個，試管架，竹簽1束(或細試管刷)，秒表。實驗(shyn)方法與步驟 1. 采血（動物不限）。 2. 準備試管。 試管1 不加任何處理（對照管） 試管2 用液狀石蠟潤滑整個試管內表面 試管3 放少許脫脂棉試管4 加草酸鉀12 ml 試管5 加檸檬酸鹽12 ml3. 每管加入血液1-2 ml。將多余的血盛于小燒杯中，并不斷用竹簽攪動直至纖維蛋白形成。 4. 記錄凝血時間 每個試管加血1-2 ml后，即刻開始計時，每隔壁15 s 傾斜一次，觀察血液是否凝固，至血液成為凝膠狀不再流

10、動為止，記錄所經歷的時間。4、5號試管加入血液后，用拇指蓋住試管口將試管顛倒兩次，使血液與藥物混合。 5. 如果加草酸鉀和檸檬酸鹽的試管不出現(xiàn)血凝,可再向兩管內分別加入0.025 molL-1的CaCl2溶液23滴,觀察血液是否發(fā)生凝固? 注意事項 1. 采血的過程盡量要快，以減少計時的誤差。對比實驗的采血時間要緊接著進行。 2. 判斷凝血的標準(biozhn)要力求一致。一般以傾斜試管達45度時，試管內血液不見流動為準。 3. 每支試管口徑(kujng)大小及采血量要相對一致，不可相差太大。 實驗(shyn)結果 將實驗結果及各種條件下的凝血時間，并進行比較、分析解釋產生差異的原因。思考題

11、1.血液凝固的機制及影響血凝的外界因素？ 2.為什么有幾管不凝？為什么有幾管比對照組管凝血時間長？為什么有幾管比對照管凝血時間短？實驗四 紅細胞脆性的測定實驗(shyn)目的 學習測定紅細胞滲透脆性的方法(fngf)，理解細胞外液滲透張力對維持細胞正常形態(tài)與功能的重要性。 實驗(shyn)原理 正常紅細懸浮于等滲的血漿中，若置于高滲溶液內，則紅細胞會因失水而皺縮；反之，置于低滲溶液內，則水進入紅細胞，使紅細胞膨脹。如環(huán)境滲透壓繼續(xù)下降，紅細胞會因繼續(xù)膨脹而破裂，釋放血紅蛋白，稱之為溶血。紅細胞膜對低滲溶液具有一定的抵抗力，這一特征稱為紅細胞的滲透脆性。紅細胞膜對低滲溶液的抵抗力越大，紅細胞在低

12、滲溶液中越不容易發(fā)生溶血，即紅細胞滲透脆性越小。將血液滴入不同的低滲溶液中，可檢查紅細胞膜對于低滲溶液抵抗力的大小。開始出現(xiàn)溶血現(xiàn)象的低滲溶液濃度，為該血液紅細胞的最小抵抗力；出現(xiàn)完全溶血時的低滲溶液濃度，則為該血液紅細胞的最大抵抗力。 生理學上將與血漿滲透壓相等的溶液稱為等滲溶液；而將能維持紅細胞正常形態(tài)、大小和懸浮于其中的溶液稱為等張溶液。等滲溶液不一定是等張溶液（如1.99%的尿素溶液），但等張溶液一定是等滲溶液。 實驗藥品 1%肝素，1%氯化鈉溶液，2%氯化鈉溶液，蒸餾水。 儀器與器材 10 ml小試管，試管架，滴管，1 ml移液管，2 ml移液管。 實驗方法與步驟 1.溶液配制：取1

13、1個小試管，配制出11種不同濃度的氯化鈉低滲溶液。 不同濃度的NaCL溶液配制試管號試液12345678910111%NaCl/ml1.41.31.21.11.00.90.80.70.60.52%NaCl 2蒸餾水/ml0.60.70.80.91.01.11.21.31.41.50NaCl濃度/%0.70.650.60.550.50.450.40.350.30.2522.制備抗凝血：不同動物采血方法(fngf)各有所異，但多采用末梢血，將血滴在有1%肝素（或檸檬酸鹽）的表面皿上，混勻(1%肝素0.1 ml可抗10 ml血)。 3.加抗凝血：用滴管(d un)吸取抗凝血，在各試管中各加一滴，輕輕

14、搖勻，靜置0.51 h。 4.觀察結果：根據各管中液體顏色和渾濁度的不同，判斷(pndun)紅細胞脆性。 未發(fā)生溶血的試管：液體下層為大量紅細胞沉淀，上層為無色透明，表明無紅細胞破裂。 部分紅細胞溶血的試管：液體下層為紅細胞沉淀，上層出現(xiàn)透明淡紅（淡紅棕）色，表明部分紅細胞已經破裂，稱為不完全溶血。 紅細胞全部溶血的試管：液體完全變成透明紅色，管底無紅細胞沉淀，表明紅細胞完全破裂，稱為完全溶血。 實驗結果 報告該實驗動物紅細胞的最小滲透抵抗力和最大滲透抵抗力。將全班的結果加以統(tǒng)計，并用平均值標準差表示。討論如何通過滲透脆性特征判斷機體的健康狀況。 注意事項 小試管要干燥，加抗凝血的量要一致，只

15、加一滴。 混勻時，輕輕傾倒12次，減少機械震動，避免人為溶血。 抗凝劑最好為肝素，其他抗凝劑可改變溶液的滲透性。 配制不同濃度的NaCl溶液時應力求(lqi)準確、無誤。NaCl溶液的濃度梯度可根據動物的實際情況適當進行調整。思考題 1.紅細胞的形態(tài)與生理(shngl)特征有何關系？ 2.根據結果分析(fnx)血漿晶體滲透壓保持相對穩(wěn)定的生理學意義。 3.輸液時應注意的事項。實驗五 蛙心活動觀察 實驗目的 觀察滴加乙酰膽堿、腎上腺素對心臟運動的影響。實驗原理心臟的特殊傳導系統(tǒng)具有自動節(jié)律性，但各部分的自動節(jié)律性高低不同。兩棲類動物的心臟起搏點是靜脈竇(哺乳動物的是竇房結)。正常情況下，靜脈竇（

16、竇房結）的自律性最高，能自動產生節(jié)律性興奮，并依次傳到心房、房室交界區(qū)、心室，引起整個心臟興奮和收縮，因此靜脈竇（竇房結）是主導整個心臟興奮和搏動的正常部位，被稱為正常起搏點；其他部位的自律組織僅起著興奮傳導作用，故稱之為潛在起搏點。實驗材料蛙或蟾蜍。任氏液、1:10000腎上腺素、1：10000乙酰膽堿。儀器與器械 蛙板，蛙類常用手術器械一套，蛙釘，玻璃分針，秒表，滴管。實驗方法與步驟 1.實驗的準備 （1）在體蛙心的制備取蛙一只，破壞腦、脊髓后背位固定于蛙板上，左手持鑷子提起胸骨后端的皮膚剪一小口，然后向左、右兩側鎖骨外側剪開皮膚。把游離(yul)的皮膚掀向頭端。再用鑷子,提起胸骨后方的腹

17、肌，剪開一小口后,剪刀伸入胸腔(勿傷及心臟和血管)，沿皮膚切口剪開胸壁，剪斷左右烏喙骨和鎖骨，使創(chuàng)口呈一倒三角形，充分暴露心臟部位。持眼科鑷提起心包膜并用眼科剪剪開心包膜，暴露心臟（圖5.4-1）。2.實驗(shyn)項目(1) 觀察心臟的結構 參照圖5.4-1識別蛙類心臟。自心臟腹面可觀察到心室、心房，動脈球和主動脈。用玻璃分針向前翻轉蛙心，暴露心臟背面可觀察到靜脈竇和心房。記錄每分鐘的收縮次數(次min-1)，注意它們的跳動(tiodng)次序 (2)在靜脈竇上分別滴加1:10000腎上腺素2滴，記錄每分鐘心臟收縮次數，滴加數滴任氏液，用吸水紙吸干。(3)再在靜脈竇上滴加1：10000乙酰

18、膽堿2滴，記錄每分鐘心臟收縮次數，滴加數滴任氏液，用吸水紙吸干。實驗結果 記錄并分析各項結果。思考題 1.正常情況下，兩棲類動物（或哺乳類動物）的心臟起搏點是心臟的哪一部分？它為什么能控制潛在起搏點的活動？ 2.如何證明兩棲類心臟(xnzng)的起搏點是靜脈竇?實驗(shyn)六 紅細胞計數實驗(shyn)目的學習、掌握應用稀釋法計數紅細胞和白細胞的方法。 實驗原理 血液中血細胞數很多，無法直接計數，需要將血液稀釋到一定倍數，然后再用血細胞計數板，在顯微鏡下計數一定容積的稀釋血液中的紅、白細胞數量，最后將之換算成每升血液中所含的紅、白細胞數。 常用的血細胞計數板是改良式牛鮑爾計數板（Neuba

19、uer），為優(yōu)質厚玻璃制成。每塊計數板由“H”型凹槽分為兩個同樣的計數池(圖6.5-1)。計數池的兩側各有一個支持(zhch)堤，比計數池高出0.1mm。計數池的長、寬各3.00mm，平均分成邊長為1mm的9個大格。每個大格容積(rngj)為0.1mm3。在9個大格中，位于四角的四個大方格是計數白細胞的區(qū)域，每個大方格又用單線分為16個中方格；位于中央的大方格用雙線分成25個中方格，其中(qzhng)位于正中及四角的5個中方格是計數紅細胞和血小板的區(qū)域，每個中方格又用單線分為16個小方格(圖6.5-2)。實驗對象動物種類不限。 實驗藥品蒸餾水，75%酒精，95%酒精，乙醚，血細胞稀釋液。儀器器

20、材顯微鏡，血細胞記數板（改良Neubauer），小試管，微量（血紅蛋白）采血管，1ml、5ml移液管，玻璃棒，刺血針，干棉球。 實驗方法和步驟 1.采血與血液(xuy)的稀釋： 用微量（血紅蛋白(xuhng dnbi)）采血管吸20l血液(xuy)，加至有紅細胞稀釋液（4ml）的試管中，吹打幾次，使稀釋液與血液混勻。這樣使紅細胞稀釋了200倍（白細胞稀釋20倍）。充池（布血） 將蓋玻片的一邊與計數池的縱線末端接觸，然后緩慢放下，使蓋玻片平放在計數室兩側的隆起上（這樣可趕走蓋玻片下的空氣），用微量采血管或蘸有紅細胞懸浮液的玻璃棒靠近蓋玻片的前方邊緣，靠毛細管作用將紅細胞懸浮液充入計數池。室溫中平

21、放35分鐘，待細胞下沉后顯微鏡下計數。若計數池未被布滿或過多以致使蓋玻片浮動，或弄到蓋玻片外面都需重新充池（布血）。2.計數： 于高倍鏡下計數中間大方格內四角及中央的5個中方格內紅細胞總數?；蛩闹芩膫€大方格內的白細胞數。計數視野的移動路線如圖6.5-3所示。如果細胞壓邊線，則按數上不數下，數左不數右原則進行。如果各中方格內的紅細胞數相差20個以上(魚類紅細胞相對較少不應多于10個)，四周各大方格內的白細胞數相差8個以上，則說明血細胞分布不均勻，需振蕩稀釋液，重新充池（布血）。3.計算： 紅細胞數L-1=N20010255-1=N10000N：表示5個中方格內數得的紅細胞數； 255-1：將五個

22、中方格紅細胞數換算為一個大方格內紅細胞數； 10：將一個大方格內紅細胞數換算為1l血液內紅細胞數。 200：為血液稀釋倍數。 注意事項 1、取血操作應迅速,以免凝血。2、吸取血液時,采血管中不得有氣泡,吸血和稀釋液的體積一定要準確。3、計數時，顯微鏡要放穩(wěn)，載物臺應置水平位，不得傾斜。一般在暗光下計數的效果較好。4、血細胞計數板洗滌血細胞計數板只能用清水浸泡、漂洗和蒸餾水漂洗，然后以濾紙吸干。 實驗結果 報告該實驗動物(dngw)的紅細胞數和白細胞數。并對全班的結果加以統(tǒng)計，用平均值標準差表示。 思考題 1.稀釋液裝入計數板后，為什么要靜止(jngzh)一段時間才開始計數？2.顯微鏡載物臺為什

23、么應置于水平(shupng)位，而不能傾斜？3.分析影響計數準確性的可能因素。 實驗七 反射弧分析及脊髓反射活動觀察實驗目的 1.通過對脊蛙的屈肌反射的分析，探討反射弧的完整性與反射活動的關系； 2.以蛙的屈肌反射為指標，觀察脊髓反射中樞活動的某些基本特征，并分析它們產生可能的神經機制。實驗原理 在中樞神經系統(tǒng)的參與下，機體對刺激所產生的適應反應過程稱為反射。較復雜的反射需要由中樞神經系統(tǒng)較高級的部位整合才能完成，較簡單的反射只需通過中樞神經系統(tǒng)較低級的部位就能完成。將動物的高位中樞切除，僅保留脊髓的動物稱為脊動物。此時動物產生的各種反射活動為單純的脊髓反射。由于脊髓已失去了高級中樞的正常調控

24、，所以反射活動比較簡單，便于觀察和分析反射過程的某些特征。 反射活動的結構基礎是反射弧。典型的反射弧由感受器、傳入神經、神經中樞、傳出神經和效應器五個部分組成。引起反射的首要條件是反射弧必須保持完整性。反射弧任何一個環(huán)節(jié)的解剖結構或生理完整性一旦受到破壞，反射活動就無法實現(xiàn)。完成一個反射所需要的時間稱為反射時。反射時除與刺激強度有關外，反射時的長短與反射弧在中樞交換神經元的多少及有無中樞抑制存在有關。由于中間神經元連結的方式不同，反射活動的范圍和持續(xù)時間，反射形成難易程度都不一樣。實驗藥品(yopn)與器材 硫酸溶液（0.1%、0.3%、0.5%、1%）、1%可卡因或普魯卡因。蛙類手術器械、鐵

25、支柱、玻璃平皿、燒杯（500 ml或搪瓷(tngc)杯）、小濾紙（約1 cm1 cm）、紗布(shb)、秒表。實驗方法與步騾1.標本制備 取一只蟾蜍，用粗剪刀由兩側口裂剪去上方頭顱，或用探針沿枕骨大孔刺入腦腔，破壞腦髓，制成脊蟾蜍。將動物俯臥位固定在蛙板上，于右側大腿背部縱行剪開皮膚，在股二頭肌和半膜肌之間的溝內找到坐骨神經干，在神經干下穿一條細線備用。將脊蟾蜍懸掛在鐵支柱上。2.實驗項目 （1）脊髓反射的基本特征： 騷扒反射 將浸有1%硫酸溶液的小濾紙片貼在蟾蜍的下腹部，可見四肢向此處騷扒。之后將蟾蜍浸入盛有清水的大燒杯中，洗掉硫酸濾紙片。 屈肌反射和反射時的測定：在平皿內盛適量的0.1%硫

26、酸溶液，將蟾蜍一側后肢的一個腳趾，浸入硫酸溶液中，同時按動秒表開始記錄時間，當屈肌反射一出現(xiàn)立刻停止記時，并立即將該足趾浸入大燒杯水中浸洗數次，然后用紗布擦干。此時秒表所示時間為從刺激開始到反射出現(xiàn)所經歷的時間，稱為反射時。用上述方法重復三次，注意每次浸入趾尖的深度要一致，相鄰兩次實驗間隔至少要23 s。三次所測時間的平均值即為此反射的反射時。再用不同的硫酸濃度測定反射的反射時。 （2）反射弧的分析 分別將左右后肢趾尖浸入盛有1%硫酸的平皿內（深入的范圍一致）,雙后肢是否都有反應? 實驗完后,將動物浸于盛有清水的燒杯內洗掉濾紙片和硫酸，用紗布擦干皮膚。 在左后肢趾關節(jié)上作一個環(huán)形皮膚切口，將切

27、口以下的皮膚全部剝除(bo ch)（趾尖皮膚一定要剝除干凈），再用1%硫酸溶液浸泡該趾尖，觀察該側后肢的反應。實驗完后,將動物浸于盛有清水的燒杯內洗掉濾紙片和硫酸，用紗布擦干皮膚。 將浸有1%硫酸溶液的小濾紙片貼在蛙的左后肢(huzh)的皮膚上。觀察后肢有何反應?待出現(xiàn)反應后，將動物浸于盛有清水的燒杯內洗掉濾紙片和硫酸，用紗布擦干皮膚。 提起穿在右側坐骨神經下的細線，剪斷坐骨神經，刺激右后肢(huzh)趾,觀察有無反應? 以探針搗毀蟾蜍的脊髓后再重復上步驟,觀察有何反應。注意事項 1.制備脊蛙時，顱腦離斷的部位要適當，太高因保留部分腦組織而可能出現(xiàn)自主活動，太低又可能影響反射的產生。 2.用硫

28、酸溶液或浸有硫酸的紙片處理蛙的皮膚后，應迅速用自來水清洗，以清除皮膚上殘存的硫酸，并用紗布擦干，以保護皮膚并防止沖淡硫酸溶液。 3.浸入硫酸溶液部位應限于一個趾尖，每次浸泡范圍應一致,切勿浸入太多。實驗結果 1.描述各項實驗結果，探討形成的機制。 2.說出有反射活動時的反射弧的組成。思考題 1.右側坐骨神經被剪斷后，動物的反射活動發(fā)生了什么變化?這是損傷了反射弧的哪一部分?2.剝去趾關節(jié)以下皮膚后，不再出現(xiàn)原有的反射(fnsh)活動，為什么?可能(knng)出現(xiàn)的問題與解釋在測反射時時(shsh)，有可能出現(xiàn)H2SO4的濃度低，反而反射時短。（1）隨著實驗進程，標本產生了適應性，反應靈敏性下降

29、，因此濃度增加,反射時有可能增加。（2）標本本身興奮性就很低。實驗八 胃腸運動和小腸吸收觀察實驗目的 觀察胃腸道的各種形式的運動，以及神經和體液因素對胃腸運動的調節(jié)。了解小腸吸收與內容物滲透壓間的關系。實驗原理 消化道平滑肌具有自動節(jié)律性，可以形成多種形式的運動，主要有：緊張性收縮、蠕動、分節(jié)運動及擺動。在整體情況下，消化道平滑肌的運動受到神經和體液的調節(jié)。阿托品具有松弛內臟平滑肌的作用，可用于治療解除平滑肌痙攣。兔的胃腸運動活躍且運動形式典型，是觀察胃腸運動的好材料。腸內容物的滲透壓為制約腸吸收的重要因素。同種溶液在一定濃度范圍內，濃度愈大，吸收愈慢；濃度愈高時，反而會出現(xiàn)倒?jié)B現(xiàn)象，使內容物的滲透壓降低至一定程度后可被吸收，由于飽和硫酸溶液對腸壁具有倒?jié)B透作用，因此，可用作瀉鹽（飽和硫酸鎂溶液對