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文檔簡介

質粒DNA的小量制備基礎植物生物技術提綱目的1原理2材料3方法4注意事項5一、目的掌握一種較常用的提取質粒DNA的方法三、材料(一)儀器

超凈工作臺;隔水式電熱恒溫培養(yǎng)箱;搖床;2102型分光光度計;Eppendorf5417C常溫高速離心機;XW-80型旋渦混合器;電熱恒溫水浴鍋;低溫冰箱(-20℃)~-70℃);穩(wěn)壓電泳儀(0~500V,0~300mA);Chemi-Smart2000/3000型化學發(fā)光及凝膠成像系統(tǒng);(二)器皿

刻度搖菌管,微量移液器,標記筆,EP管(三)菌種

大腸桿菌DH-5α中的Hm質粒(四)培養(yǎng)基

LB液體培養(yǎng)基:蛋白胨10克﹑酵母提取物5克和氯化鈉10克用蒸餾水溶解至1000毫升,用10mMNaOH調至pH7.2-7.4,濕熱滅菌20分鐘。

三、材料(五)試劑

1.溶液I[50mM葡萄糖10mMEDTA25mMTris-HCI(pH8.0)]配制方法

:吸取母液1M葡萄糖2.5毫升;0.5MEDTA1毫升;1MTris-HCI

(pH8.0)12.5毫升,加無菌水至50毫升2.溶液Ⅱ[0.2MNaOH;1%SDS]配制方法:1M

NaOH

2毫升﹑10%

SDS1毫升加無菌水至10毫升3.溶液Ⅲ[KAC(pH4.8)緩沖溶液]配制方法:5MKAC

60毫升﹑冰醋酸

11.5毫升加無菌水至100毫升三、材料(五)試劑7.Tris飽和酚8.氯仿-異戊醇(24:1):取240毫升氯仿,加入10毫升異戊醇,充分混勻9.預冷無水乙醇:無水乙醇保存在-20℃冰箱中備用。10.TAE電泳緩沖液:40mMTris-HCI(pH8.0)、20mMNaAC、2mMEDTA。三、材料(五)試劑11.溴酚藍指示劑溶液:0.2%溴酚藍、40%蔗糖配制方法:0.2克溴酚藍、40克蔗糖用100毫升無菌水充分溶解,4℃保存。12.0.8%瓊脂糖制備配制方法:用100毫升TAE電泳緩沖液加上0.8克瓊脂糖加熱完全溶解后,加入6微升10毫克/毫升EB于45℃倒入插有點樣梳的制膠槽。三、材料四、方法1.取平板活化后的菌落接種于含50毫克/升Kan的LB液體培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)過夜。

平板活化震蕩培養(yǎng)

接種于LB培養(yǎng)基加50毫克/升Kan四、方法3.取沉淀,重懸于100微升溶液I,于XW-80型旋渦混合器上完全分散,室溫放置5分鐘;

4.加人新配的溶液Ⅱ200微升,蓋緊管口,立即反復倒置5次,室溫放置5分鐘;5.加入溶液Ⅲ150微升,倒置混勻,于冰上放置10分鐘;加溶液I加溶液Ⅱ

加溶液Ⅲ

6.12000rpm離心10分鐘,取上清,計算體積;7.加入等體積的酚和氯仿-異戊醇(24:1),混合后于12000rpm離心10分鐘,取上清,加入1.5毫升EP管,計算體積;8.加人2倍體積預冷無水乙醇沉淀核酸,室溫放置10分鐘;四、方法加氯仿-異戊醇加無水乙醇9.12000rpm離心10分鐘、小心除去上清,將離心管倒置于紙巾上;10.加7

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