基因工程第一章核酸的制備

（優(yōu)選）基因工程第一章核酸的制備本文檔共73頁；當前第1頁；編輯于星期六\2點23分第一節(jié)天然DNA的制備（PreparationofDNA）一、DNA的組成與結(jié)構(gòu)（CompositionandStructureofDNA）:Aphosphategrouplinkedbyaphosphodiesterbondtoapentose(afive-carbonsugarmolecule)thatinturnislinkedtoanitrogen-andcarbon-containingringstructurecommonlyreferredtoasa“base”.BasePentosePhosphateGroupNucleotide本文檔共73頁；當前第2頁；編輯于星期六\2點23分主要堿基的化學結(jié)構(gòu)：本文檔共73頁；當前第3頁；編輯于星期六\2點23分結(jié)構(gòu)：本文檔共73頁；當前第4頁；編輯于星期六\2點23分DNA本文檔共73頁；當前第5頁；編輯于星期六\2點23分DNA本文檔共73頁；當前第6頁；編輯于星期六\2點23分解鏈溫度（Tm，meltingpoint）本文檔共73頁；當前第7頁；編輯于星期六\2點23分DNA分子雜交(HybridizationofDNAstrandsfromdifferentsources)本文檔共73頁；當前第8頁；編輯于星期六\2點23分環(huán)狀DNA（CircularDNA）超螺旋DNA（supercoiledDNA，SC-DNA）；共價閉合環(huán)狀DNA（CovalentlyclosedcircularDNA，cccDNA）；開環(huán)DNA（opencircleDNA，oc-DNA）；線形DNA（linearDNA，L-DNA）本文檔共73頁；當前第9頁；編輯于星期六\2點23分二、天然DNA的提?。≒urificationofDNA）(一)生物材料的準備（PreparationofMaterial）：1.DNA的保存：1.1.70%的乙醇（Ethanol）溶液（Tris-Cl10mmol/LpH8.0，EDTA1mmol/L）1.3.低溫本文檔共73頁；當前第10頁；編輯于星期六\2點23分2.大腸桿菌（E.coli）常見抗生素（Antibiotics）的使用：2.1氨芐青霉素（ampicillin，Ap）：抑制細菌細胞壁肽聚糖的合成，50～150μg/mL（水溶液）；2.2鏈霉素（streptomycin，Sm）：與細菌核糖體30S亞單位結(jié)合，抑制細菌蛋白質(zhì)(酶)的合成,使細菌不能正常生長或者代謝而死亡，25～50μg/mL（水溶液）；2.3四環(huán)素（tetracycline，Tc）：與細菌核蛋白體的30S亞單位結(jié)合，干擾核糖體上密碼子與反密碼子的相互作用，從而阻止氨?；鵷RNA同核蛋白體結(jié)合，5mg/mL（乙醇溶液）；2.4氯霉素（chloramphenicol，Cm）：與細菌核蛋白體50S亞基結(jié)合，抑制肽?；D(zhuǎn)移酶，從而抑制蛋白質(zhì)合成，20μg/mL（乙醇溶液）；2.5卡那霉素（knamycin，Km）：與細菌核蛋白體蛋白基結(jié)合，并與較小的RNA亞基編譯區(qū)的特定堿基結(jié)合，從而抑制蛋白質(zhì)合成，25～50μg/mL（水溶液）；本文檔共73頁；當前第11頁；編輯于星期六\2點23分(二)裂解細胞（Celllysis）：1.化學方法：1.1CTAB裂解法：CTAB（cetyltriethyammoniumbromide，十六烷基三甲基溴化銨），陽離子去污劑，與核酸形成復合物，在高鹽溶液（＞0.7mol/LNaCl）中穩(wěn)定，在低鹽溶液（≤0.3mol/LNaCl）中沉淀。1.2SDS裂解法：SDS（sodiumdodecylsulfate，十二烷基磺酸鈉），陰離子去垢劑，蛋白質(zhì)變性劑，有效沉淀多糖，與K離子形成絮狀沉淀，廣泛用于質(zhì)粒（plasmid）DNA的提取，蛋白質(zhì)的分離純化。本文檔共73頁；當前第12頁；編輯于星期六\2點23分2.酶裂解方法：2.2蛋白酶K（ProteinaseK）裂解法：用于水解蛋白質(zhì)，特別是與DNA結(jié)合緊密的組蛋白（Histone），廣泛用于動物組織基因組DNA的提取，通常與SDS，Tris-Cl及EDTA共同裂解細胞。2.3溶菌酶（lysozyme）裂解法：通常用于細菌裂解，提取質(zhì)粒DNA，其原理是破壞細菌細胞壁的肽聚糖支架，通過低滲透壓使細胞脹裂，引起細胞裂解。作用條件溫和，pH6.0～7.0，室溫25℃。本文檔共73頁；當前第13頁；編輯于星期六\2點23分（三）DNA的分離和抽提1.酚-氯仿抽提法：苯酚（phenol）-氯仿（chloroform）-異戊醇（isoamylalcohol）比例：25:24:1，苯酚：蛋白質(zhì)變性劑；氯仿：蛋白質(zhì)變性劑；并使變性的蛋白質(zhì)從水相層分離；異戊醇：防止產(chǎn)生泡沫。本文檔共73頁；當前第14頁；編輯于星期六\2點23分2.氯化銫密度梯度離心法(CsCldensitygradientcentrifugation)；3.固相萃取法(solidphaseextraction,SPE)；本文檔共73頁；當前第15頁；編輯于星期六\2點23分離心技術在基因工程中的應用（ApplicationofCentrifugationtechniques）本文檔共73頁；當前第16頁；編輯于星期六\2點23分（四）DNA的純化（purification）和濃縮（condense）1.DNA的純化：1.1Rnase處理，去除RNA；1.2離子交換層析法；1.3氯化銫密度梯度離心法；1.4瓊脂糖電泳洗脫法；本文檔共73頁；當前第17頁；編輯于星期六\2點23分瓊脂糖電泳（Agarosegelelectrophoresis）1.安放好制膠模具（梳子和膠槽）本文檔共73頁；當前第18頁；編輯于星期六\2點23分2.瓊脂糖凝膠澆灌并冷凝本文檔共73頁；當前第19頁；編輯于星期六\2點23分3.移走梳子，暴露出上樣孔本文檔共73頁；當前第20頁；編輯于星期六\2點23分4.瓊脂糖膠放置在電泳緩沖液中本文檔共73頁；當前第21頁；編輯于星期六\2點23分5.上樣，通電流，直至DNA遷移到適當位置本文檔共73頁；當前第22頁；編輯于星期六\2點23分6.在紫外光（UV）下觀察DNA電泳情況本文檔共73頁；當前第23頁；編輯于星期六\2點23分DNA電泳完畢后的瓊脂糖凝膠本文檔共73頁；當前第24頁；編輯于星期六\2點23分在紫外光（UV）下觀察DNA電泳情況本文檔共73頁；當前第25頁；編輯于星期六\2點23分不同凝膠的DNA電泳情況瓊脂糖凝膠（agarose）聚丙烯酰胺凝膠凝膠（PAGE）本文檔共73頁；當前第26頁；編輯于星期六\2點23分電泳儀（電源和電泳槽）本文檔共73頁；當前第27頁；編輯于星期六\2點23分離子交換柱層析純化DNA本文檔共73頁；當前第28頁；編輯于星期六\2點23分2.DNA的濃縮：2.1乙醇（Ethanol）沉淀法；2.2正丁醇（butylalcohol）抽提法；2.3聚乙二醇（PEG6000）濃縮法；本文檔共73頁；當前第29頁；編輯于星期六\2點23分第三節(jié)人工合成核酸片段二、核酸的酶法合成PCR反應（PolymeraseChainReaction,

聚合酶鏈式反應）：模仿細胞內(nèi)發(fā)生的DNA復制過程，在體外有酶催化合成特異性DNA片段。本文檔共73頁；當前第30頁；編輯于星期六\2點23分PCR技術簡史1971年，Khorana提出：經(jīng)過DNA變性，與合適引物雜交，用DNA聚合酶延伸引物，并不斷重復該過程便可克隆tRNA基因。但由于測序和引物合成的困難，以及70年代基因工程技術的發(fā)明使克隆基因成為可能，所以，Khorana的設想被人們遺忘了……本文檔共73頁；當前第31頁；編輯于星期六\2點23分PCR技術簡史1985年，美國PE-Cetus公司的Mullis等人發(fā)明了聚合酶鏈反應（PCR）基本原理是在試管中模擬細胞內(nèi)的DNA復制最初采用E-coliDNA聚合酶進行PCR，由于該酶不耐熱，使這一過程耗時，費力，且易出錯耐熱DNA聚合酶的應用使得PCR能高效率的進行，隨后PE-Cetus公司推出了第一臺PCR自動化熱循環(huán)儀1993年，Mullis等因此項技術獲諾貝爾化學獎本文檔共73頁；當前第32頁；編輯于星期六\2點23分1.PCR的基本原理(MechanismofPCR)類似于DNA的體內(nèi)復制。其原理是通過高溫變性模板、引物與模板退火、引物沿模板延伸三步反應組成一個循環(huán)，通過多次循環(huán)反應，使目的DNA得以幾何級數(shù)倍增。本文檔共73頁；當前第33頁；編輯于星期六\2點23分5Primer15Primer2Cycle2Cycle1555555TemplateDNA55555555本文檔共73頁；當前第34頁；編輯于星期六\2點23分Cycle3555555555555555525～30次循環(huán)后，模板DNA的含量可以擴大100萬倍以上。本文檔共73頁；當前第35頁；編輯于星期六\2點23分（3）PCR的基本反應步驟變性95?C延伸72?C退火Tm-5?C本文檔共73頁；當前第36頁；編輯于星期六\2點23分PCR反應標準的PCR反應條件：

10X緩沖液（Buffer）10μL4種dNTP混合物各200umol/L引物（Primer）各10～100pmol模板DNA（Template）0.1～2μgTaqDNA聚合酶0.5～

2.5UMg2+

1.5mmol/L本文檔共73頁；當前第37頁；編輯于星期六\2點23分PCR反應本文檔共73頁；當前第38頁；編輯于星期六\2點23分70-75℃90-94℃37-60℃PCR循環(huán)本文檔共73頁；當前第39頁；編輯于星期六\2點23分1234522557294時間（min）溫度（℃）PCR反應適溫延伸3高溫變性1低溫退火2重復1~3步25~30輪目的DNA片段擴增100萬倍以上DNA雙螺旋DNA單鏈與引物復性DNA變性形成2條單鏈子鏈延伸DNA加倍37-60℃90-95℃70-75

℃本文檔共73頁；當前第40頁；編輯于星期六\2點23分PCR擴增No.of No.AmpliconCycles CopiesofTarget1 22 43 84 165 326 6420 220=1,048,57630 230=1.07X1071cycle=2Amplicon2cycle=4Amplicon3cycle=8Amplicon4cycle=16Amplicon5cycle=32Amplicon6cycle=64Amplicon7cycle=128Amplicon本文檔共73頁；當前第41頁；編輯于星期六\2點23分PCR反應特點靈敏度高皮克(pg=10-12)量級擴增到微克(ug=10-6)水平能從100萬個細胞中檢出一個靶細胞病毒檢測的靈敏度可達3個RFU（空斑形成單位）

細菌檢測的最小檢出率為3個細菌簡便、快速一次性加好反應液，2～4小時完成擴增擴增產(chǎn)物一般用電泳分析對標本的純度要求低血液、體腔液、洗嗽液、毛發(fā)、細胞、活組織等組織的粗提DNA本文檔共73頁；當前第42頁；編輯于星期六\2點23分（1）TaqDNA聚合酶（2）

PwoDNA聚合酶（3）TthDNA聚合酶（4）C.therm聚合酶4.2.1耐熱性DNA聚合酶本文檔共73頁；當前第43頁；編輯于星期六\2點23分（1）TaqDNA聚合酶1986年從一種75℃熱泉中的細菌(Thermusaquaricus)中分離純化出來的。95kDa，單分子酶，75℃活性最強。具有5’-3’合成活性和5’-3’外切活性,無3’-5’外切活性。95℃時半衰期為40分鐘。啟動PCR反應的能力很強，聚合速度快，在72℃的聚合速度為每秒30-100堿基。由于沒有3'-5'外切活性，在擴增過程中有8.9-11x10-5

的錯配率。本文檔共73頁；當前第44頁；編輯于星期六\2點23分（2）PwoDNA聚合酶來自古細菌Pyrococcuswoesei，由德國寶靈曼公司開發(fā)（BM），

90kDa，100℃的半衰期大于2小時，具有3’-5’外切活性，出錯率低，使用較多的的且具有高保真度的PCR酶。本文檔共73頁；當前第45頁；編輯于星期六\2點23分（3）TthDNA聚合酶

來自嗜熱熱細菌（Thermusthermophilus），由Promega公司開發(fā)成商品。94kDa，95℃的半衰期為20分鐘。在Mg2+存在條件下以DNA為模板合成DNA，而在Mn2+存在下可以RNA為模板合成cDNA。因此可在高溫下做RT-PCR（反轉(zhuǎn)錄PCR）反應，避免RNA反轉(zhuǎn)錄過程中形成的二級結(jié)構(gòu)。

本文檔共73頁；當前第46頁；編輯于星期六\2點23分（4）C.therm聚合酶來自Carboxydothermushudrogenoformans，以Mg2+為輔助因子的逆轉(zhuǎn)錄酶，最適溫度適60-70℃，同時也具有3’-5’外切酶校對活性，用于RT-PCR

反應。本文檔共73頁；當前第47頁；編輯于星期六\2點23分4.2.2靶DNA/模板單、雙鏈DNA均可。純度：不能混有蛋白酶、核酸酶、DNA聚合酶抑制劑、DNA結(jié)合蛋白類。使用濃度：一般100ngDNA模板/100L。模板濃度過高會導致反應的非特異性增加。其兩端20-30bp序列用以一對引物的設計。本文檔共73頁；當前第48頁；編輯于星期六\2點23分①引物長度18～30bp，過短則降低特異性，過長則會引起引物間的退火而影響有效擴增，同時也增加引物合成的成本。②避免引物內(nèi)部或引物之間存在互補序列（3個堿基），避免序列內(nèi)有較長的回文結(jié)構(gòu)，減少引物二聚體的形成以及引物內(nèi)部二級結(jié)構(gòu)的形成。③G/C和A/T堿基均勻分布，G+C含量在40～60%之間，引物堿基序列盡可能選擇堿基隨機分布，避免出現(xiàn)嘌呤或嘧啶連續(xù)排列。4.2.3PCR引物本文檔共73頁；當前第49頁；編輯于星期六\2點23分④引物3’末端堿基應與模板DNA嚴格配對，并且3’末端為G、C時引發(fā)效率較高。⑤引物5’末端堿基可不與模板DNA匹配，可添加與模板無關的序列(如限制性核酸內(nèi)切酶的識別序列、ATG起始密碼子或啟動子序列等)，便于克隆和表達。⑥引物用核酸序列保守區(qū)內(nèi)設計并具有特異性，引物的堿基順序不能與非擴增區(qū)有同源性。本文檔共73頁；當前第50頁；編輯于星期六\2點23分4.2.4PCR原材料dNTP脫氧核苷三磷酸四種dNTP濃度應相等要求：濃度過高易產(chǎn)生錯誤堿基的摻入，濃度過低則降低反應產(chǎn)量本文檔共73頁；當前第51頁；編輯于星期六\2點23分4.2.5PCR緩沖液成分：10mmol/LTris-HCl(pH8.8室溫下)，50mmol/LKCl，1.5mmol/LMgCl2。Mg2+：是DNA聚合酶的激活劑，0.5mmol/L-2.5mmol/L反應體系。Mg2+濃度過低會使Taq酶活性喪失、PCR產(chǎn)量下降；Mg2+過高影響反應特異性本文檔共73頁；當前第52頁；編輯于星期六\2點23分4.2.6PCR循環(huán)的溫度和時間溫度:90-95℃模板變性，復性（37-60℃），溫度由引物長度和GC含量決定；70-75℃引物在模板上延伸反應時間變性30s，如果模板G+C含量高，變性時間可適當延長。復性30s。延伸1kb1min充足，由擴增產(chǎn)物的大小決定。循環(huán)次數(shù)

25～35

次。本文檔共73頁；當前第53頁；編輯于星期六\2點23分25μLPCR反應體系：模板DNA1μL（10－100ng）引物11μL（10μmol/L）引物21μL（10μmol/L）dNTP（10mmol/L）1μL（20mmol/L）10×PCR反應的緩沖液2.5μLTaq酶0.5μL（1U/μl）ddH2O補至25μL4.3PCR擴增DNA片段的方法常規(guī)程序本文檔共73頁；當前第54頁；編輯于星期六\2點23分PCR反應的程序：溫度（℃）時間（分鐘）(1)953-5(2)950.5(3)600.5(4)721(5)721025－30個循環(huán)本文檔共73頁；當前第55頁；編輯于星期六\2點23分PCR反應的操作注意事項：1）加樣操作必須在冰上進行；2）加樣的順序：（1）從大到??；（2）先加藥品再酶：PCR反應結(jié)果異常及解決辦法：1）無帶；2）雜帶多；3）DNA降解。本文檔共73頁；當前第56頁；編輯于星期六\2點23分PCR中應注意的事項

防止污染試劑小量分裝吸頭及EP管一次性使用器皿及工作區(qū)域要分開，無菌操作設立對照：陽性對照：陽性模板陰性對照：陰性模板試劑對照：除模板外的所有組分本文檔共73頁；當前第57頁；編輯于星期六\2點23分4.4PCR技術應用

4.4.1PCR技術的主要類型反向PCR錨定PCR不對稱PCR原位PCRRT-PCR重組PCR差異顯示PCR免疫PCR實時定量PCR多重PCR本文檔共73頁；當前第58頁；編輯于星期六\2點23分1)反向PCR(reversePCR)方法：對某個已知DNA片段兩側(cè)的未知序列進行擴增。用途：探索鄰接已知DNA片段的未知序列；建立基因組步移文庫。已知序列未知序列未知序列本文檔共73頁；當前第59頁；編輯于星期六\2點23分已知序列未知序列未知序列連接酶本文檔共73頁；當前第60頁；編輯于星期六\2點23分2）不對稱PCR(asymmetricPCR)

目的：擴增產(chǎn)生特異長度的單鏈DNA。方法：采用兩種不同濃度的引物，最佳比例一般是0.01∶0.5μM。

用途：制備核酸序列測定的模板制備雜交探針基因組DNA結(jié)構(gòu)功能的研究本文檔共73頁；當前第61頁；編輯于星期六\2點23分

高濃度引物低濃度引物本文檔共73頁；當前第62頁；編輯于星期六\2點23分3）RT－PCR: