植物組織滲透勢的測定質(zhì)壁分離法

1、實 驗 1 植 物 組 織 滲 透 勢 的 測 定 （ 質(zhì) 壁 分 離 法 ） 一、實驗?zāi)康?觀察植物組織在不同濃度溶液中細胞質(zhì)壁分離的產(chǎn)生過程及其用于測定植 物組織滲透勢的方法。 二、實驗原理 當植物組織細胞內(nèi)的汁液與其周圍的某種溶液處于滲透平衡狀態(tài)， 植物細胞 內(nèi)的壓力勢為零時， 細胞汁液的滲透勢就等于該溶液的滲透勢。 該溶液的濃度稱 為等滲濃度。 當用一系列梯度濃度溶液觀察細胞質(zhì)壁分離現(xiàn)象時， 細胞的等滲濃度將介于 剛剛引起初始質(zhì)壁分離的濃度和尚不能引起質(zhì)壁分離的濃度之間的深液濃度。 代 入公式即可計算出春滲透勢。 三、實驗儀器、試劑、材料等 顯微鏡；載玻片及蓋玻片；鑷子；刀片 配成 0

2、.5 0.1mol/L 梯度濃度的蔗糖溶液各 50ml。 稱 34.23g 蔗糖用蒸餾水配成 100ml，其濃度為 1m0le/L （母液）。再配制成 下列各種濃度： 0.50mol/L ：吸母液 25ml+水 25ml 0.45mol/L ：吸母液 22.5ml+ 水 27.5ml 0.40mol/L ：吸母液 20.0ml+ 水 30.0ml 0.35mol/L ：吸母液 17.5ml+ 水 32.5ml 0.30mol/L ：吸母液 15.0ml+ 水 35.0ml 0.25mol/L ：吸母液 12.5ml+ 水 37.5ml 0.20mol/L ：吸母液 10.0ml+ 水 40.0

3、ml 0.15mol/L ：吸母液 7.5ml+ 水 42.5ml 0.10mol/L ：吸母液 5.0ml+ 水 45.0ml 四、實驗方法 將帶有色素的植物組織（葉片） ，一般選用有色素的洋蔥鱗片的外表皮、紫 鴨跖草、苔蘚、紅甘藍或黑藻、絲狀藻等水生植物，也可用蠶豆、玉米、小麥等 作物葉的表皮。 撕取下表皮， 迅速分別投入各種濃度的蔗糖溶液中， 使其完全浸 入， 510 分鐘后，從 0.5mol/L 開始依次取出表皮薄片放在滴有同樣溶液的載 玻片上，蓋上蓋玻片， 于低倍顯微鏡下觀察， 如果所有細胞都產(chǎn)生質(zhì)壁分離的現(xiàn) 象，則取低濃度溶液中的制片作同樣觀察， 并記錄質(zhì)壁分離的相對程度。 實驗中

4、 必須確定一個引起半數(shù)以上細胞原生質(zhì)剛剛從細胞壁的角隅上分離的濃度， 和不 引起質(zhì)壁分離的最高濃度。 在找到上述濃度極限時， 用新的溶液和新鮮的葉片重復(fù)進行幾次， 直至有把 握確定為止。 在此條件下，細胞的滲透勢與兩個極限溶液濃度之平均值的滲透勢 相等。 將結(jié)果記錄下表。 測出引起質(zhì)壁分離剛開始的蔗糖溶液最低濃度和不能引起質(zhì)壁分離的最高 濃度平均值之后，可按下列公式計算在常壓下該組織細胞質(zhì)液的滲透勢。 s為細胞滲透勢。 R為氣體常數(shù) =0.083 105/L P/molK。 T為絕對溫度，單位 K，即 273+t ，t 為實驗濕度。 I 為解離系數(shù)，蔗糖為 1 。 C為等滲溶液的濃度，單位為

5、mol/L 。 則： s=0.083105（273+t ）1C 實驗人 時間 材料名稱 實驗時室溫 蔗糖摩爾濃度（ mol/L ） 滲透勢（ P） 質(zhì)壁分離的相對程度（以圖表示） 0.50 0.45 0.40 0.35 0.30 0.25 0.20 0.15 0.10 五、實驗作業(yè)： 1、 敘述細胞滲透作用的原理。 2、 測定并計算不同植物組織的滲透勢 實驗 2 植物組織水勢的測定（小液流法） 、實驗?zāi)康?了解植物組織中水分狀況的另一種表示方法及用于測定的方法和它們 的優(yōu)缺點 二、實驗原理 將植物組織分別放在一系列濃度遞增的溶液中，當找到某一濃度的溶液與 植物組織之間水分保持動態(tài)平衡時， 則可

6、認為此植物組織的水勢等于該溶液的水 勢。因溶液的濃度是已知的，可以根據(jù)公式算出其滲透壓，取其負值，為溶液的 滲透勢（ ），即代表植物的水勢（ w）（waterpotential）。 w P CRT（大氣壓） 三、實驗儀器、試劑、材料等 （一）材料：小白菜或其它作物葉片 （二）儀器設(shè)備： 1.帶塞青霉素小瓶 12 個； 2.帶有橡皮管的注射針頭； 3. 鑷子； 4.打孔器 5.培養(yǎng)皿。 （三）試劑： 1.0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、 0.30mol/L 蔗糖溶液； 2.甲 烯藍粉末。 四、實驗方法 1、取干燥潔凈的青霉素瓶 6 個為甲組，各瓶中分別加入 0.050.30mo

7、l/L 蔗糖溶液約 4ml（約為青霉素瓶的 23處），另取 6 個干燥潔凈的青霉素瓶為乙 組，各瓶中分別加入 0.050.30mol/L 蔗糖溶液 1ml 和微量甲烯藍粉末著色，上 述各瓶加標簽注明濃度。 2、取待測樣品的功能葉數(shù)片， 用打孔器打取小圓片約 50 片，放至培養(yǎng)皿中， 混合均勻。用鑷子分別夾入 58 個小圓片到盛有不同濃度的甲烯藍蔗糖溶液的 青霉素瓶中（乙組） 。蓋上瓶塞，并使葉圓片全部浸沒于溶液中。放置約30 60min，為加速水分平衡，應(yīng)經(jīng)常搖動小瓶。 3、經(jīng)一定時間后，用注射針頭吸取乙組各瓶藍色糖液少許，將針頭插入對 應(yīng)濃度甲組青霉素瓶溶液中部， 小心地放出少量液流， 觀察

8、藍色液流的升降動向。 （每次測定均要用待測濃度的甲烯藍蔗糖溶液清洗幾次注射針頭） 。如此方法檢 查各瓶中液流的升降動向。 若液流上升，說明浸過小圓片的蔗糖溶液濃度變小 （即 植物組織失水）；表明葉片組織的水勢高于該濃度糖溶液的滲透勢；如果藍色液 流下降則說明葉片組織的水勢低于該糖溶液的滲透勢， 若藍色液流靜止不動， 則 說明葉片組織的水勢等于該糖溶液的滲透勢， 此糖溶液的濃度即為葉片組織的等 滲濃度 4 、將求得的等滲濃度值代入如下公式： w CRTi1.013 0.1。式中： w植物組織的水勢（單位： Mpa ） 溶 液 的 滲 透 勢 C 等 滲 濃 度 （ mol/L ） R 氣 體 常

9、 數(shù) （ 0.008314MPa/L/mol/K ）T絕對溫度 i解離系數(shù)（蔗糖 1，CaCl22.60）1 大氣壓 1.013 0.1MPa。 五、實驗作業(yè) 用小液流法測定植物組織的水勢與用質(zhì)壁分離法測定植物細胞的滲透勢都 是以外界溶液的濃度算出的溶質(zhì)勢，它們之間的區(qū)別何在？ 實驗 3 蒸騰速率的測定（快速稱重法） 一、實驗?zāi)康?學會用快速稱重法測定植物的蒸騰速率，加深對植物水分代謝的認識。 二、實驗原理 植物蒸騰失水， 重量減輕。 因此，用稱重法測得一定面積或一定重量的蒸騰 器官在一定時間里的失水量，即可測得其蒸騰速率。 三、實驗儀器、試劑、材料等 精度為 10mg的扭力天平 1架；枝剪

10、1 把；剪刀 1 把；鉛筆 1支；線 1 根； 坐標方格紙 1張；標簽 1 個；尺子 1 把；各種樹木的帶葉枝條。 四、實驗方法 1、將扭力天平放在被測樹木附近的平穩(wěn)處， 調(diào)平， 然后在被測植株上選一重 約 10g 左右且有代表性的枝條，在其基部掛上標簽，并縛一細線。在綁線處 上方 12cm處將、枝條剪下，立即稱重（記為 W1，精確至 0.001g ），并在讀 數(shù)時準確計時（ t 1）。 2、迅速將枝條用線懸掛原處， 使其在原環(huán)境中蒸騰， 約 15min 后，取下枝條， 第二次稱重（記為 W2，精確至 0.001g ），并準確計時（ t 2）。兩次所稱重量只 差即是這段時間內(nèi)枝條蒸騰部位的鮮重

11、。 3、求算葉面積或蒸騰部位的鮮重。 （1）用稱紙法求算葉面積 用尺量出坐標紙邊長，算出全紙面積，稱出全 紙重，精度同上。摘下葉子， 平攤在坐標紙上， 在坐標紙上用鉛筆繪出葉子輪廓， 剪下葉形，稱重，精度同上。按下式計算葉面積（ S）： S（cm2） 剪下的葉形紙重（ g）全紙面積（ cm2） 全紙重（ g） （2）求算蒸騰部位的鮮重 剪下枝條上的葉片和嫩梢，稱枝重（ W3），精度 同上， W1減去 W3即為蒸騰部分的鮮重： 蒸騰部位的鮮重 =W1-W2 4、計算蒸騰速率。 蒸騰速率 g（ m2h1） 或： (W1 W2 )(g) 10000 60 2 S(cm2) (t2 t1)(min)

12、(W1 W2)(mg) (W1 W3 )(g) (t2 t1)(min) 蒸騰速率 mg（g min） 五、實驗作業(yè) 計算所測植物的蒸騰強度 實驗 4 單鹽毒害及離子間拮抗現(xiàn)象 一、實驗?zāi)康?通過簡單試驗說明培養(yǎng)液中各種離子平衡（各種離子及其濃度）的重要性。 二、實驗原理 離子間的拮抗現(xiàn)象的本質(zhì)是復(fù)雜的， 它可能反映不同離子對原生質(zhì)親水膠粒 的穩(wěn)定度、 原生質(zhì)膜的透性， 以及對各類酶活性調(diào)節(jié)等方面的相互制約作用， 從 而維持機體的正常生理狀態(tài)。 三、實驗儀器、試劑、材料等 燒杯；紗布；石蠟； 0.12mol/L KCl ；0.06mol/L CaCl 2； 0.12mol/L NaCl （所用

13、藥品均需用 AR） 四、實驗方法 實驗前 34 天選擇飽滿的小麥種子 100粒浸種，在室溫下萌發(fā)， 待根長 1cm 時即可用作材料。 取 4 個小燒杯，依次分別倒人不列鹽溶液： （1）0.12molL KCI （2）0.06 mol L CaCl2 （3）0.12 mol L NaCI （4）0.12 molL NaCl 100 ml0.06 molL CaCl2 1 ml 十0.12mol L KCl 2.2 ml 小燒杯用涂石蠟的紗布蓋上。挑選大小相等及根系發(fā)育一致的小麥幼苗 10 株或 20株，小心種植在紗布蓋的孔眼里，使根系接觸到溶液，在室溫下培育 23 星期后，即可看出在單鹽溶液中，

14、小麥幼苗生長，特別是它們的根部出現(xiàn) 畸形。 五、實驗作業(yè) 比較小麥在不同鹽溶液中的生長情況并加以解釋 實驗 5 葉綠體色素的提取和分離（紙層析法） 一、實驗?zāi)康?了解葉綠體色素提取分離的原理以及它們在光合作用中的意義。 二、實驗原理 葉綠體色素是植物吸收太陽光能進行光合作用的重要物質(zhì)，主要由葉綠素 a、葉綠素 b、胡蘿卜素和葉黃素組成。從植物葉片中提取和分離色素是對其認 識和了解的前提。利用葉綠體色素能溶于有機溶劑的特性，可用丙酮提取。 分離色素的方法有多種， 紙層析是其中最簡便的一種。 當溶劑不斷地從層析 濾紙上流過時， 由于混合物中各成分在兩相 （即流動相和固定相） 間具有不同的 分配系數(shù)

15、，它們的移動速度不同，使樣品中的混合物得到分離。 三、實驗儀器、試劑、材料等 大試管 臺天平 研缽 量筒 燒懷 漏斗 軟木層 新華濾紙 丙酮 四氯化碳 無水硫酸鈉 碳酸鈣 石英砂 四、實驗方法 1 、稱取新鮮葉子 2 g ，放入研缽中加丙酮 5ml ，少許碳酸鈣和石英砂，研 磨成勻漿，再加丙酮 5 ml ，然后以漏斗過濾之，即為色素提取液。 2 、取準備好的濾紙條 （22 cm），將其一端剪去兩側(cè)， 中間留一長約 1.5cm， 寬約 0.5cm 的窄條。 3 、用毛細管取葉綠素溶液點于窄條的上方，注意一次所點溶液不可過多。 如色素過淡，用電吹風吹干后再點 1 一 2 次。 4、在大試管中加入四

16、氯化碳 35ml 及少許無水硫酸鈉。然后將濾紙條固定 于軟木塞上，插入試管內(nèi)，使窄端浸入溶劑中（色素點要略高于液面，濾紙條邊 緣不可碰圖到試管壁） ，蓋緊軟木塞，直立于陰暗處進行層析。 5、經(jīng)過 0.5 一 1 小時后，觀察分離后色素帶的分布。最上端橙黃色為胡蘿 卜素，其次黃色為葉黃素， 再下面藍綠色為葉綠素 a，最后的黃綠色為葉綠素 b。 五、實驗作業(yè) 提取葉綠素時為什么要加少量的碳酸鈣，加多了會出現(xiàn)什么問題？ 實驗 6 光合速率的測定（改良半葉法） 一、實驗?zāi)康?光合速率是一項重要的生理指標，對研究植物的生命活動、分析環(huán)境條件與 植物生長發(fā)育一級產(chǎn)量的關(guān)系， 均具有重要的意義。 此法所用設(shè)

17、備簡單， 操作方 便，數(shù)據(jù)比較穩(wěn)定，適于田間應(yīng)用。學會用改良半葉法測定植物的光合速率。 二、實驗原理 對稱葉片的兩側(cè)處在相同的條件下，光合速率應(yīng)基本相同?？上葴y出一側(cè)葉 片一定葉面積的干重，使另一側(cè)在光下進行光合作用并阻止光合產(chǎn)物向外運輸。 一定時間后， 再測出該側(cè)葉片相同葉面積的干重。 根據(jù)兩者重量之差、 所用時間 和葉面積，即可求得葉片的光合速率。 三、實驗儀器、試劑、材料等 分析天平；烘箱(公用) ；打孔器 1付；墊板 1 塊；鑷子 1把；稱量瓶 2個； 標簽牌若干；脫脂棉簽 1 個；三氯甲烷；各種闊葉樹的葉片均可。 四、實驗方法 1、選擇植物上有代表性的葉片若干，掛上標簽。 2、按順序

18、在選好的葉片基部葉脈匯聚處背腹面及葉柄上端的周圍涂三氯甲 烷，使韌皮部的細胞中毒，以防止光喝產(chǎn)物外運。 3、在涂藥葉中脈的一側(cè)，避開較粗的側(cè)脈，用打孔器取小圓片若干片，其 總面積以 3050cm2 為宜，置于稱量瓶中。從開始取第一篇小圓片時起計時。 4、將稱量瓶置于 8090的烘箱中烘至恒重，然后在分析天平上稱重，其 干重記為 W1。 5、自計時起 46h 后，按先前順序在葉的兩一側(cè)對稱部位， 用同一付打孔器 取相同數(shù)目的小圓片。計時方法與第一次取圓片相同。烘干，稱重，其干重記為 W2。 6、計算 凈光合速率 mg 有機物( dm2h) W1(mg) W2(mg)100 光合時間 (h)一次所

19、取圓片總面積 (cm2) 五、實驗作業(yè) 計算所測植物的凈光合速率。 實驗 7 植物呼吸強度的測定 ( 小籃子法 ) 一、實驗?zāi)康?熟悉測定呼吸強度的方法。 二、實驗原理 利用 Ba（OH）2 溶液吸收呼吸過程中釋放的 CO2，實驗結(jié)束后，用草酸溶液滴 定殘留的 Ba（ OH）2，從空白和樣品兩者消耗草酸溶液之差，即可計算出呼吸過 程中釋放的 CO2 量。 三、實驗儀器、試劑、材料等 廣口瓶；溫度計；酸式滴定管；干燥管；尼龍網(wǎng)制小籃； 0.05 mol/L Ba （OH）2； 指示劑： 0.1%麝香草酚酞酒精溶液。 1/44 mol/L 草酸溶液：準確稱取重結(jié)晶的草酸 H2C2O4 2H2O2.

20、8652g，溶于蒸 餾水，配成 1 000ml ，每 ml溶液相當于 1mg的 CO2。 四、實驗方法 1、取 500ml 廣口瓶一個，裝配一只三孔橡皮塞，一孔插入盛堿石灰的干燥 管，以吸收空氣中的 CO2，保證進入呼吸瓶的空氣無 CO2，一孔插入溫度計，另一 孔直徑約 1cm左右供滴定用， 滴定前用小橡皮塞塞緊。 瓶塞下面掛一尼龍網(wǎng)制小 籃，用以盛實驗材料。 2、稱取萌發(fā)的小麥或水稻種子 15g，裝于小籃內(nèi)，將小籃掛在廣口瓶內(nèi)，同 時加 0.05mol/L Ba （OH）2 溶液 25ml 于廣口瓶內(nèi)，立即塞緊瓶塞，并用熔化的 石蠟密封瓶口，防止漏氣。每 10 分鐘左右，輕輕地搖動廣口瓶，破

21、壞溶液表面 的 BaCO3 薄膜，以利對 CO2的吸收。 3、1 小時后，小心打開瓶塞，迅速取出小籃，加入 2滴指示劑，立即重新塞 緊瓶塞。然后拔出小橡皮塞，將滴定管插入小孔中，用 1/44 mol/L 的草酸滴定， 直到藍綠色轉(zhuǎn)變成無色為止。記錄滴定所耗用的草酸溶液的 ml 數(shù)。 4、另取用沸水煮死的種子為材料，作同樣測定，以此作為對照。 5、計算。 五、實驗作業(yè) 比較不同類型種子的呼吸強度 實驗 8 植物體內(nèi)有機物運輸途徑（環(huán)割法） 一、實驗?zāi)康?熟悉植物體有機物運輸?shù)耐緩?。 二、實驗原理 韌皮部的篩管是植物體內(nèi)有機物質(zhì)運輸?shù)耐ǖ溃h(huán)割試驗即可以證明這一 點。在木本植物的枝條或樹干上，用

22、刀環(huán)形剝?nèi)ヒ粚訕淦ぃ钸_形成層，從而阻 斷了割環(huán)上下方有機物的交換，在割環(huán)的上方聚集著從葉片運率的大量有機物， 引趄樹皮組織生長加強，而形成愈傷組織或瘤狀物。 三、實驗儀器、試劑、材料等 解剖刀 四、實驗方法 1 、夏季，在幼齡楊樹或其他木本植物上選定尚未發(fā)生分枝的旺長枝條，于 其中 12 枝進行環(huán)狀剝皮，使剝環(huán)寬度在 3cm左右。環(huán)割后，每星期觀察一次 枝條變化，并與生長情況相似的對照枝條進行比較， 特別注意觀察以下幾個方面； （1）剝環(huán)上部葉片是否萎蔫？ （2）枝條頂端生長速度有何改變？ （3）剝環(huán)上下切口愈傷組織生長情況。 （4）剝環(huán)上下部休眠芽萌發(fā)情況。 2、另選一相似枝條進行雙環(huán)割，

23、再剝環(huán)相距 40-50cm，同樣觀察以上各項。 3、秋季要將以上處理的枝條剪下（連同對照枝條，風于保存作教學材料） 。 五、實驗作業(yè) 敘述植物體中有機物從葉運到根的途徑。 實驗 9 IAA 的生物鑒定（小麥芽鞘切段伸長法） 一、實驗?zāi)康?熟悉生長素含量的生物測定方法。 二、實驗原理 將小麥胚芽鞘的延長部分切成段， 漂浮在含有生長素 IAA 的溶液中，這些切 段可以繼續(xù)伸長， 在一定濃度范圍內(nèi)， 芽鞘切段的伸長與生長素濃度的對數(shù)成正 比，因而可通過測定切段伸觀多少來測定生長素的含量。 三、實驗儀器、試劑、材料等 25 oC 暗室；濾紙；旋轉(zhuǎn)器；分析天平；小瓷缸；大瓷缸；培養(yǎng)皿；銀試管； 移液管；

24、青霉素瓶；刀片；小鑷子；尼龍網(wǎng)；刻度尺；半對數(shù)座標紙；飽和漂白 粉溶液；小麥品種，揚麥 1 號最好用中農(nóng) 28； 100 ppmIAA 母液：稱 10 mgI AA 溶于少量無水酒精中， 再用水稀釋至 100ml。 此溶液在冰箱中可保存一個月。 緩沖液：稱取 K2HPO4，1.7 94g，檸檬酸 1.019g ，蔗糖（ AR）20g溶于 1000ml 重蒸餾水中， pH為 5.0 。 四、實驗方法 1、挑選大小均勻的小麥種子（必須用前一二年的種子，因當年新收的種子 發(fā)芽不整齊），用飽和漂白粉溶液滅菌 30 分鐘后，用自來水沖冼半天， 放在盛腫 濕潤濾紙的培養(yǎng)皿中，腹溝朝下，在 25oC黑暗條件

25、下萌發(fā) 24 小時。 2、當?shù)谝慌吒霈F(xiàn)后， 移于用尼龍網(wǎng)覆蓋的小瓷缸中， 胚根插入尼龍網(wǎng)眼。 小瓷缸放入盛水的大瓷缸中，以保持濕度或在小瓷缸上罩上燒杯保濕。 3 、繼續(xù)在 25 oC黑暗下培養(yǎng)，約 40 小時后，當胚芽鞘長達 3cm左右時，選 取 2.8-3.0cm 幼苗作為生物鑒定材料，因這樣大小的芽鞘對 IAA 最敏感。 4 、切去芽鞘尖端 3mm，取下面 5mm切段作試驗。 5 、將 5mm切段漂浮在重蒸餾水中浸洗 2 3 小時，除去初段中內(nèi)源激素。 6 、配制 0.001 、0.01 、0.1 、 1.0 、10 PPm的 IAA的系列標準溶液（配在具 塞試管中）。 吸取 100pp

26、mIAA1ml 9ml 緩沖液10ppm IAA 吸取 10PPmIAA1ml 9ml緩沖液1PPm IAA 吸取 1PPmIAA1ml 9ml緩沖液0.1PPm IAA 吸取 0.1PPmIAAml 9ml緩沖液0.01 PPm IAA 吸取 0.01 PPm IAA1ml 9ml 緩沖液0.O01 PPm IAA 7、在具塞青霉素瓶中分別吸入上述 IAA 系列標準溶液（0001、001、1.0 、 10PPm IAA） 2ml，另外吸取 2ml 緩沖浪作為對照。 8、切段浸泡后，用濾紙將切段表面水分吸干，在上述盛有不同濃度生長素 的青霉素瓶中，分別放入芽鞘切段 10 段（最好放 1112

27、段，以便挑選）加塞， 每一濃度重復(fù) 3 次。將青霉素瓶置于旋轉(zhuǎn)器上（旋轉(zhuǎn)速度為 16r/min ）在 25 暗室中旋轉(zhuǎn)培養(yǎng)。 9、上述操作均需在暗室中綠光下進行。 10、旋轉(zhuǎn)培養(yǎng) 20 小時后取出芽鞘切段，在濾紙上吸干，測量芽鞘切段的長 度。 11、在半對數(shù)坐標紙上，以芽鞘切段增長 %*為縱坐標， IAA 濃度為橫坐標， 作出標準曲線。在生長素濃度為 0.001 1.0PPm 范圍內(nèi)，切段的伸長與生長素 濃度的對數(shù)成正比， 如需鑒定某一植物提取液中生長素含量， 必須與標準的 IAA 作對照。 五、實驗作業(yè) 1、采取小麥芽鞘切段伸長法測定生長素含量時，為什么要將芽鞘尖端3mm 切去而取下面的 5mm作實驗？ 2、為什么要用緩沖液了配制 IAA 的系列標準溶液？ 實驗 10 生長調(diào)節(jié)劑在插條生根上的應(yīng)用 一、實驗?zāi)康?了解生長調(diào)節(jié)劑對植物插條生根的影響。 二、實驗原理 生長素類的生長調(diào)節(jié)劑和 ABT生根粉對根原始體的形成有促進作用。 因此對 不易插根生條的植物常用一定濃度的這類藥品處理插條，使其易于生根成活。 三、實驗儀器、試劑、材料等 1