感染性疾病相關(guān)參考模板

1、感染性疾病相關(guān)個體化醫(yī)學(xué)分子檢測技術(shù)指南前言感染性疾病是當今世界嚴重威脅人類健康的重大疾病，快速、準確的診斷是有效治療、病情監(jiān)測和控制疾病蔓延的重要前提。隨著分子檢測技術(shù)的不斷發(fā)展和完善，分子檢測在病原微生物感染診斷及治療監(jiān)測上的臨床應(yīng)用日益廣泛，已成為一些重要的感染性疾病的診斷和療效評價中不可缺少的重要工具。為使我國的感染性疾病分子檢測臨床應(yīng)用健康有序發(fā)展，更好的為醫(yī)患提供高質(zhì)量的服務(wù)，有必要制訂感染性疾病相關(guān)的分子檢測技術(shù)指南，規(guī)范臨床實驗室相關(guān)分子檢測操作程序，指導(dǎo)從事感染性疾病分子診斷的醫(yī)務(wù)人員正確開展工作。本指南以大量、豐富的臨床實踐為基礎(chǔ)，同時消化吸取了大量國內(nèi)外文獻的精華，廣泛征

2、求相關(guān)學(xué)科專家的意見，遵循科學(xué)性、實用性、可行性的原則，反復(fù)修改而成。我們衷心希望感染性疾病相關(guān)個體化醫(yī)學(xué)分子檢測技術(shù)指南能夠?qū)V大檢驗人員起到很好的幫助和指導(dǎo)作用，從而為提高感染性疾病臨床診治水平發(fā)揮積極的作用本指南起草單位：中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院、國家衛(wèi)生計生委臨床檢驗中心本指南起草人：尚紅、李金明、郭曉臨、代娣、程仕彤目錄1. 本指南適用范圍32. 標準術(shù)語33. 感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測概述94. 感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測分析前質(zhì)量控制124.1 標本采集134.2 標本的轉(zhuǎn)運164.3 標本的接收174.4 標本的保存184.5 檢驗項目的選擇195. 感染性疾

3、病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測分析中質(zhì)量控制205.1 實驗室的設(shè)計要求205.2常用的分子檢測方法215.3 試劑和方法的選擇295.4 設(shè)備維護和校準365.5 人員培訓(xùn)365.6 試劑性能驗證376. 感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測分析后質(zhì)量控制406.1 結(jié)果報告406.2 結(jié)果的解釋及醫(yī)患的溝通416.3 檢測后標本的保存及處理427. 質(zhì)量保證427.1 標準操作程序427.2 質(zhì)控品427.3 室內(nèi)質(zhì)量控制437.4 室間質(zhì)量評價478. 感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測應(yīng)用488.1 乙型肝炎病毒感染診療的個體化分子檢測488.2 丙型肝炎病毒感染診療的個體化分子檢測528.

4、3 結(jié)核分枝桿菌感染診療的個體化分子檢測568.4 人獲得性免疫缺陷病毒感染診療的個體化分子檢測57附錄65參考文獻661. 本指南適用范圍本指南由國家衛(wèi)生計生委個體化醫(yī)學(xué)檢測技術(shù)專家委員會編訂，是國家衛(wèi)生計生委個體化醫(yī)學(xué)檢測技術(shù)系列指南之一，旨為臨床實驗室進行感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測提供參考和指導(dǎo)。本指南介紹了感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測應(yīng)注意的相關(guān)問題、技術(shù)方法、結(jié)果報告與解釋、質(zhì)量保證及臨床應(yīng)用等內(nèi)容。本指南主要適用于開展個體化醫(yī)學(xué)分子檢測的醫(yī)療機構(gòu)臨床檢驗實驗室，同時供從事感染性疾病診治的臨床醫(yī)師參考。2. 標準術(shù)語2.1 感染性疾病（infectious diseas

5、e）即由病原微生物引起的疾病的統(tǒng)稱。2.2 病原微生物（pathogen）指侵犯人體，引起感染的微生物，或稱病原體。病原微生物包括病毒、細菌、真菌、支原體、衣原體、立克次體、螺旋體、寄生蟲和朊毒體。2.3 宿主（host）為病原體提供生存環(huán)境的生物，本指南中的“宿主”僅指人體。2.4 窗口期（window period）宿主感染病原體，需要一段時間之后才能產(chǎn)生抗體。從感染病原體到能檢測到抗體的時間就叫做窗口期。2.5 擴增子擴增產(chǎn)物（amplicon/amplification product）由目標擴增反應(yīng)產(chǎn)生的相對低分子量的產(chǎn)物。2.6 質(zhì)控品（control）為質(zhì)量控制目的而制備的標本稱

6、為質(zhì)控品。質(zhì)控品不能用于校準。質(zhì)控品的性能指標有:穩(wěn)定性、瓶間差、定值和非定值、分析物水平、預(yù)處理的要求等。2.7 標準品（standard）用于定標，即標準曲線的繪制。2.8 校準品（calibrator）指定用來校準某檢測系統(tǒng)（儀器+試劑+方法程序）的，是在考慮到基質(zhì)效應(yīng)的情況下，人為賦予校準品的校準值。因此，校準品必須專用于某一檢測系統(tǒng)。2.9 抑制作用（inhibition）臨床標本中的某些成分或者標本采集和處理過程中引入的某些外源性物質(zhì)可能對擴增反應(yīng)或者識別過程產(chǎn)生的削弱作用。2.10 內(nèi)部質(zhì)控（internal control）在同一個反應(yīng)管中存在的一段非目標序列，將與目標序列一同

7、被擴增，用于識別由溫控故障、不合格的試劑或聚合酶活性等造成的抑制作用，以及識別相同的基質(zhì)內(nèi)是否存在抑制性物質(zhì)。2.11 核酸酶（nuclease）能夠水解核酸的多種酶中的任何一種，比如內(nèi)切酶和外切酶。2.12 核酸提?。╪ucleic acid extraction）將核酸（RNA，DNA）從生物物質(zhì)中分離出來的過程，以備進行核酸的擴增和分析。2.13 檢驗（examination）以確定一個特性的值或特征為目的的一組操作。實驗室檢驗也常稱為檢測或試驗。確定一個特性的值的實驗室檢驗稱為定量檢驗，確定一個特性的特征的實驗室檢驗稱定性檢驗。2.14 原始樣品（primary sample）標本（s

8、pecimen）為檢驗、研究或分析一種或多種量或特性而取出的認為可代表整體的一獨立部分的體液、呼出氣、毛發(fā)或組織等。2.15 樣品（sample）取自原始樣品的一部分或多部分。2.16 寡核苷酸（Oligonucleotide）一種短分子單鏈DNA，通常為6-100個核苷酸，由化學(xué)方式合成。2.17 引物（Primer）一個寡核苷酸，可以與目標DNA的互補鏈雜交。在DNA聚合酶和核苷酸的參與下，啟動DNA的合成過程（從3-OH 端開始）。2.18 探針（Probe）已定義的單鏈核酸片段，用于識別特定的包含其互補序列的DNA或者RNA分子。探針通常都附帶一個標記（放射性標記或者化學(xué)性標記），使探

9、針在雜交后能被檢測到。2.19 淬滅劑（Quencher）能夠從熒光基團接收能量并且通過近端淬滅或者FRET淬滅來消耗該能量的分子。2.20 野生型（wild type）基因或生物體在自然界中常見的或非突變型的形式。2.21 突變（mutation）基因的結(jié)構(gòu)發(fā)生改變而導(dǎo)致細胞、病毒或微生物的基因型發(fā)生穩(wěn)定的、可遺傳的變化過程。2.22 點突變（point mutation）基因內(nèi)單個核苷酸置換所造成的結(jié)構(gòu)改變。2.23 缺失突變（deletion mutation）由于相鄰的多個核苷酸或片段丟失所造成的突變。2.24 雜合子（heterozygote）又稱“雜合體”。在二倍體生物中，一對同源

10、染色體上特定的基因座上有兩個不同的等位基因的個體或細胞。2.25 純合子（homozygote）又稱“純合體”。在二倍體生物中，一對同源染色體上特定的基因座上有兩個相同的等位基因的個體或細胞。2.26 表型（phenotype）一個生物體（或細胞）可以觀察到的性狀或特征，是特定的基因型和環(huán)境相互作用的結(jié)果。2.27 基因型（genetype）一個生物體或細胞的特定基因組成。2.28 單核苷酸多態(tài)性（Single nucleotide polymorphisms, SNPs）是指由單個核苷酸A、T、C或G的改變而引起的DNA序列的改變，造成包括人類在內(nèi)的物種之間染色體基因組的多樣性。2.29 隨

11、機誤差（random error）在重復(fù)測量中按不可預(yù)見方式變化的測量誤差的分量。通常隨機誤差的參考量值是對同一被測量多次重復(fù)測量得到的均值。2.30 系統(tǒng)誤差（systematic error）在重復(fù)測量中保持不變或按可預(yù)見方式變化的測量誤差的分量。系統(tǒng)誤差的參考量值是真值,或者是測量不確定度可忽略不計的測量標準測得的值,還可以約定量值。2.31 驗證（verification）通過提供客觀證據(jù)證實對規(guī)定要求已得到滿足的認定。驗證過程證實的檢驗程序的性能指標,應(yīng)與檢驗結(jié)果的預(yù)期用途相關(guān)。2.32 確認（validation）通過提供客觀證據(jù)對特定的預(yù)期用途或應(yīng)用要求已得到滿足的認定。性能確認

12、應(yīng)盡可能全面,并通過客觀的證據(jù)(以性能特征形式) 證實滿足檢驗預(yù)期用途的特定要求。2.33 精密度（precision）在規(guī)定條件下，對同一或類似被測對象重復(fù)測量所得示值或測得值間的一致程度。規(guī)定條件可以是重復(fù)性測量條件、期間精密度測量條件或復(fù)現(xiàn)性測量條件。精密度通常無法衡量，而以不精密度表達，常用標準差、方差或變異系數(shù)表示，是對隨機誤差的衡量。2.34 正確度（trueness）多次重復(fù)檢測所得量值的平均值與一個參考量值間的一致程度。通常用“偏倚”表達，是對系統(tǒng)誤差的衡量。選擇一個合適的參考對正確度評價很重要，最好采用參考方法。2.35 可報告范圍（reportable range）指測量儀

13、器的誤差在預(yù)期規(guī)定范圍內(nèi)的被測量值的集合。2.36 測量范圍（measurement range）檢測方法可直接對未經(jīng)稀釋、濃縮或其他非常規(guī)檢測流程預(yù)處理的標本進行檢測，得到的分析物濃度范圍。2.37 臨床可報告范圍（clinically reportable range）通過采用標本的稀釋、濃縮或其他預(yù)期處理，用于延長直接的分析測量范圍下的分析物值的范圍，其范圍一般較測量范圍寬，是考慮方法檢測限和預(yù)處理流程后的測量范圍的延伸。2.38 參考區(qū)間（reference interval）又稱為參考范圍、正常范圍等，通常采用參考值分布的中間95%區(qū)間。2.39 檢測限（limit of detec

14、tion, LoD）指某一分析方法在給定的可靠程度內(nèi)可以從樣品中檢測待測物質(zhì)的最小濃度或最小量。2.40 干擾（interference）指被測物質(zhì)濃度因樣品特性或其他成分的影響而出現(xiàn)的臨床顯著性偏差，評價的是由樣品引起的特異性偏差。2.41 敏感性（sensitivity）指金標準診斷有病的全部病例中，被評價方法結(jié)果為陽性的病例占全部有病病例的比例，即敏感性=真陽性/(真陽性+假陰性) × 100%。2.42 特異性（specificity）指金標準診斷全部無病病例中，被評價檢驗方法結(jié)果為陰性的病例所占全部無病病例的比例，即特異性=真陰性/(假陽性+真陰性) × 100%

15、。2.43 生物學(xué)變異（ biological variation）指在機體穩(wěn)定狀態(tài)下，排除已知可能影響因素（例如，疾病、用藥、禁食、運動等），除外已知節(jié)律性變化（例如，對于某些檢驗項目，晝夜或季節(jié)性變化等），依然存在的隨機變異。2.44 分析前變異（pre-analytical variation）從患者準備開始至樣品分析啟動前各環(huán)節(jié)造成的變異，包括抽血及有關(guān)條件、運輸、離心、保存等環(huán)節(jié)或因素造成的變異。2.45 檢驗前過程（pre-examination processes）分析前階段（preanalytical phase）按時間順序從醫(yī)生申請至分析檢驗啟動前的過程，包括檢驗申請、患者準

16、備和識別、原始樣品采集、運送和實驗室內(nèi)運送等。2.46 檢驗后過程（post-examination processes）分析后階段（postanalytical phase）包括結(jié)果復(fù)核、臨床材料保留和儲存、樣品和廢物處理，以及檢驗結(jié)果的格式化、發(fā)布、報告和留存等。3. 感染性疾病相關(guān)的個體化醫(yī)學(xué)分子檢測概述感染性疾病是由病原微生物（細菌、病毒、真菌、寄生蟲等）引起的疾病的統(tǒng)稱。據(jù)統(tǒng)計感染性疾病死因占全部死因的25%以上，是當今世界嚴重威脅人類健康的重大疾病。3.1 分子檢測與感染性疾病的個體化醫(yī)療 個體化醫(yī)療（personalized medicine）是以每個患者的信息為基礎(chǔ)來決定治療方

17、案，從基因組成或表達變化的差異來把握治療效果或毒副作用等應(yīng)答特異性，對每個患者進行最適宜的治療。個體化醫(yī)療目前在個體化用藥、疾病診斷、治療監(jiān)測以及預(yù)后判斷中都發(fā)揮著重要作用。長期以來感染性疾病的診斷和療效監(jiān)測一直依靠形態(tài)學(xué)、免疫學(xué)以及病原體分離培養(yǎng)和藥敏試驗等方法，但形態(tài)學(xué)檢驗受檢測人員經(jīng)驗影響較大，易誤診；而免疫學(xué)、藥敏試驗和病原體分離培養(yǎng)的窗口期或檢測實驗周期較長，易錯過最佳治療時機。分子檢測在病原體檢測中優(yōu)勢明顯，靈敏度高、特異性強、快速準確。因此近年來發(fā)展較快，已成為病原體診治中不可或缺的重要工具，而且已經(jīng)廣泛應(yīng)用于感染性疾病的個體化診斷和治療中。例如利用分子檢測技術(shù)可以幫助明確乙型肝

18、炎患者體內(nèi)HBV DNA的病毒載量、基因型和基因突變情況，而這些正是判斷患者何時開始治療、采用何種治療方案、發(fā)生肝硬化等不良預(yù)后風(fēng)險的決定性因素。3.2 個體化醫(yī)學(xué)分子檢測在感染性疾病中的應(yīng)用 本指南中涉及的感染性疾病個體化醫(yī)學(xué)分子檢測主要包括病原體核酸定量檢測、分子分型檢測、耐藥基因檢測及與療效相關(guān)宿主基因型檢測。3.2.1 病原體核酸定量（載量）檢測 病原體核酸定量檢測有助于評估疾病階段及嚴重程度，指導(dǎo)臨床合理用藥，觀察療效，監(jiān)測疾病進程以及判斷疾病預(yù)后。例如HCV RNA檢測是判斷HCV有無現(xiàn)癥感染的證據(jù)；其病毒載量的高低與患者的長期預(yù)后如肝硬化和肝癌的發(fā)生相關(guān)，是進行抗病毒治療的基礎(chǔ)，

19、同時還是應(yīng)用抗病毒治療過程中耐藥監(jiān)測的最重要指標。應(yīng)根據(jù)抗病毒治療的早期病毒學(xué)應(yīng)答情況來調(diào)整治療方案，以提高療效，降低耐藥發(fā)生率。3.2.2 病原體分子分型檢測 由于不同型別病原體具有迥異的致病性和藥物敏感性，因此病原體分子分型檢測有助于指導(dǎo)臨床合理治療以及判斷疾病預(yù)后。例如HCV分為6個基因型和80多種基因亞型，不同基因型患者的病毒學(xué)應(yīng)答率差距明顯，如2、3及6型患者較易獲得持續(xù)病毒學(xué)應(yīng)答（SVR），而1和4型應(yīng)答較差，屬于難治性丙型肝炎，其利巴韋林的用藥劑量和用藥時間有顯著差別。因此在采用傳統(tǒng)方法治療前須進行HCV基因型檢測，以便決定治療方案。目前，丙肝的臨床治療已取得重大進展，一些小分子

20、藥物對丙肝病毒無基因型要求，并且臨床治愈率很高。宮頸癌早期癥狀不明顯，發(fā)展過程中存在較長的、可逆轉(zhuǎn)的癌前病變期。從一般的宮頸癌前病變發(fā)展為宮頸癌大約需要10年時間。如能在癌前病變階段進行醫(yī)學(xué)干預(yù)，宮頸癌治愈率可達98%。多中心研究表明，我國宮頸癌及宮頸高危病變以感染HPV16和18型為主，約85%左右的宮頸癌確診病例屬于這兩種類型，且HPV16/18型的感染率和致癌率都明顯高于其他高危HPV型別。因此對高風(fēng)險人群進行HPV16/18等高危型篩查有助于宮頸癌的防治。3.2.3 病原體耐藥基因檢測所有產(chǎn)生耐藥的病原體，不論其產(chǎn)生的機制如何，均與病原體基因位點突變有關(guān)，因此進行病原體耐藥基因檢測有助

21、于早期指導(dǎo)臨床合理用藥，控制耐藥病原體的流行。例如結(jié)核分枝桿菌對利福平耐藥與ropB位點突變有關(guān)；腸球菌對糖肽類抗生素的耐藥基因由Van A、Van B、Van C等介導(dǎo)，測定這些基因可以預(yù)測對萬古霉素和壁霉素的耐藥性。因此，應(yīng)根據(jù)耐藥基因突變情況來調(diào)整治療方案，以提高療效，避免耐藥發(fā)生。3.2.4 與療效相關(guān)的宿主基因型檢測宿主基因多態(tài)性可能對病原體的清除和治療產(chǎn)生影響。研究發(fā)現(xiàn)，IL28B的單核苷酸多態(tài)性（single-nucleotide polymorphism, SNP）與抗HCV療效密切相關(guān)，IL28B的基因型有助于臨床療效預(yù)測，確定慢性丙型肝炎患者的個體化治療方案，使病人獲得最大

22、的收益。3.3 分子檢測在感染性疾病個體化醫(yī)療應(yīng)用中的局限性綜上所述，個體化醫(yī)學(xué)分子檢測已日益廣泛地應(yīng)用于感染性疾病的診治過程，并取得了顯著成效。然而，在目前的臨床實驗室應(yīng)用中，應(yīng)注意以下幾點：影響分子檢測準確性的因素很多，如實驗室污染或是標本間交叉污染可導(dǎo)致假陽性結(jié)果，擴增抑制物或是標本處理不充分可能導(dǎo)致假陰性的結(jié)果等。因此，必須建立規(guī)范化實驗室質(zhì)量控制體系和標準操作程序，并嚴格按照要求進行檢測。盡管其具有敏感性高、特異性好等優(yōu)點，但其本身還有許多方面有待進一步完善。如單次的分子檢測不能判斷是否為活的病原體；受多種因素影響，基因型耐藥和表型耐藥可能存在差異等。因此當我們選擇分子檢測方法時，必

23、須基于該種檢測結(jié)果的臨床價值，需考慮結(jié)合其他檢測項目或檢測方法綜合判斷結(jié)果。感染性疾病的臨床診治常是極其錯綜復(fù)雜的，僅依靠一項或幾項實驗室檢查還不夠，詳細的病史詢問，細致的體格檢查等綜合分析是極為重要的。4. 分析前質(zhì)量控制分子檢測分析前質(zhì)量控制包括填寫正確完整的檢驗申請單，合理規(guī)范的標本采集，適當?shù)臉吮巨D(zhuǎn)運周期和轉(zhuǎn)運條件，以及適宜的標本預(yù)處理和分析前標本保存等。感染性疾病個體化分子檢測通常檢測的是病原體的核酸，其濃度、穩(wěn)定性和完整性對檢驗結(jié)果有決定性影響，因此為得到可靠和準確的檢驗結(jié)果，有必要規(guī)范分析前質(zhì)量控制的各項程序。病原微生物核酸檢測不同于其他分子檢測，有其自身的特點，在分析前階段主要

24、包括：病原微生物核酸不僅存在于血液、腦脊液等體液中，還存在于尿液、糞便等排泄物中，因此影響核酸純化的干擾物質(zhì)（如血紅素、尿素、pH值等）較多。病原微生物核酸受病原微生物生命周期、復(fù)制環(huán)境和患者用藥等情況的影響，所以要根據(jù)檢驗?zāi)康恼_選擇檢驗項目、標本采集時間和標本采集類型等。標本采集和轉(zhuǎn)運容器、標本轉(zhuǎn)運和儲存條件以及標本處理方法等都會直接影響病原微生物核酸檢測。標本采集、轉(zhuǎn)運及儲存需按照血源性病原體職業(yè)接觸防護導(dǎo)則、病原微生物實驗室管理條例和實驗室生物安全通用要求等相關(guān)生物安全要求進行操作。鑒于病原微生物分子檢測的特殊性，有如下建議：4.1 正確、規(guī)范的標本采集 感染性疾病是臨床的常見病，重癥

25、感染有較高的病死率。正確的標本采集對感染的早期診斷和有效治療等有重要的臨床意義。4.1.1 標本采集原則 詳見個體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南，但在感染性疾病個體化醫(yī)學(xué)檢測中尤其需注意以下幾點：采集標本時應(yīng)使用嚴格的無菌技術(shù)，將污染的可能性降至最低；標本采集時間由檢測目的決定，如在感染的急性期，應(yīng)在使用抗生素或傷口局部治療前采集標本進行基線檢測，再根據(jù)治療時間和循環(huán)病原微生物半衰期等確定再次采樣時間；在患者使用抗感染治療前，應(yīng)在發(fā)熱初期或高峰期或發(fā)熱前半小時采集標本，對已使用抗感染治療而又不能停藥的患者，應(yīng)重復(fù)采集標本數(shù)次以提高檢出率；采取適當?shù)慕馄饰恢煤图夹g(shù)，防止標本溶血等影響檢測結(jié)果的準確性；正

26、確選擇采集/儲存容器，例如檢測的病原微生物為RNA病毒（如HCV、HIV等），由于RNA易受RNA 酶的降解, 須使用經(jīng)高壓滅菌或經(jīng)RNase酶清除處理過的無RNase酶的一次性耗材。4.1.2 確定正確的標本量 為避免因病原體核酸濃度過低造成假陰性結(jié)果，應(yīng)根據(jù)檢驗?zāi)康暮蜋z驗方法的要求采集足夠量的標本。例如利用支氣管肺泡灌洗液進行結(jié)核分枝桿菌核酸檢測時，至少要留取1ml支氣管肺泡灌洗液。4.1.3 常用標本類型 常用標本包括血漿、血清、全血、支氣管肺泡灌洗液、骨髓、腦脊液、培養(yǎng)的細胞、培養(yǎng)的菌株、尿液、痰液、拭子、尿液、乳汁等。為避免標本中核酸的降解，保證核酸的完整性和檢測的準確性，對每種標本

27、的采集有以下建議，但具體要求由臨床需求和檢測目的決定：4.1.3.1 血液標本 肝素是Taq 酶的強抑制劑，全血和血漿標本宜選擇乙二胺四乙酸 （EDTA）或枸櫞酸（ACD）鹽作為抗凝劑。鑒于注射器采血易導(dǎo)致溶血，建議采用真空負壓采血管采集血液標本；采用帶有促凝劑的真空負壓采血管采集血清標本。4.1.3.2 呼吸系統(tǒng)標本 痰液標本應(yīng)以清晨第一口痰為宜，患者晨起用清水漱口數(shù)次，用力咳出深部痰液，混有血液為不合格樣品。留取至少1ml于無菌可密封標本盒中。痰量少者可采用加溫45左右的10%氯化鈉溶液霧化吸入，使痰液容易排出。咽拭子應(yīng)用棉拭子采集患者咽后壁或懸雍垂的后側(cè)，反復(fù)涂抹數(shù)次。鼻咽拭子

28、應(yīng)經(jīng)鼻腔進入鼻咽部采集標本，置于運送培養(yǎng)基中送檢；鼻咽管應(yīng)用細鼻飼管從鼻腔進入到鼻咽部，用負壓吸引器吸取鼻咽部分泌物并放入無菌容器內(nèi)送檢。支氣管肺泡灌洗液應(yīng)留取至少1ml于無菌可密封試管中。4.1.3.3 泌尿生殖系統(tǒng)標本 尿液標本：建議采集濃縮晨尿，至少10ml于無菌可密封試管中。應(yīng)考慮尿量、距上次排尿的時間、感染等因素對結(jié)果的影響。在應(yīng)用抗感染治療前或停藥1-2天后采集標本，最好采集清晨第一次尿液或者采集在膀胱內(nèi)貯留6-8小時的尿液。可采用中段尿液采集法、導(dǎo)尿采集法、膀胱穿刺法。宮頸和尿道拭子標本：男性尿道標本采用滌綸拭子，女性宮頸和陰道標本采用人造纖維或滌綸拭子，并放入適當?shù)幕|(zhì)液中。用

29、于支原體分子檢測, 取材時一定要取到上皮細胞（沙眼衣原體在活細胞內(nèi)才能增殖復(fù)制），而只取分泌物會降低檢出率。宿主細胞DNA比例、其他微生物、分泌物的量等可能會直接影響分子檢測結(jié)果。4.1.3.4 其他體液標本 胸腹水標本：首次穿刺抽到積液后，應(yīng)棄掉第一管標本及所用注射器，然后更換新的一次性注射器抽取。穿刺采集后留取中段液體于帶蓋的無菌試管內(nèi)，因積液易凝集，應(yīng)采用EDTA抗凝，同時注意防止外傷性血液的進入。乳汁標本：留取至少10ml。糞便標本：留取有粘液或其他特征性糞便標本于無菌可密封標本盒中，不能混有尿液。腦脊液標本：建議在留取化學(xué)和免疫學(xué)、細菌學(xué)、以及一般性狀等檢查標本后，留取至少1ml腦脊

30、液于無菌可密封試管中，以避免皮膚病菌污染和混入血液致溶血而影響檢測結(jié)果。組織標本：淺表、開放性膿庖和創(chuàng)口應(yīng)清創(chuàng)后,使用拭子涂抹創(chuàng)口；蜂窩織炎和丹毒應(yīng)使用穿刺針抽吸組織取樣；復(fù)雜性皮膚軟組織感染使用組織活檢、穿刺針抽吸、外科手術(shù)等方法取深層組織進行檢測。4.1.3.5 培養(yǎng)的細胞或菌株/毒株 在提取前最好放在37或其適宜生長的溫度或環(huán)境中；并嚴格按照相關(guān)生物安全要求進行操作。4.2 標本的轉(zhuǎn)運4.2.1 標本轉(zhuǎn)運原則 詳見個體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南，但在感染性疾病個體化醫(yī)學(xué)檢測中尤其需注意以下幾點：按照國家病原微生物實驗室生物安全管理條例進行相應(yīng)病原微生物標本的運輸，如已知為HIV陽性標本需由經(jīng)

31、過相關(guān)培訓(xùn)并具有相應(yīng)資質(zhì)的人員使用WHO三級包裝系統(tǒng)的容器運輸。如條件允許，建議盡快將標本轉(zhuǎn)運至實驗室進行預(yù)處理或保存。根據(jù)檢驗的靶基因和處理前時間決定轉(zhuǎn)運條件，如腦脊液標本用于DNA檢測時應(yīng)2-8轉(zhuǎn)運，用于RNA檢測時應(yīng)立即冰上轉(zhuǎn)運。采用適當?shù)霓D(zhuǎn)運方式和容器，以避免標本污染，如采血管可采用氣動傳送轉(zhuǎn)運，但糞便標本建議采用人工轉(zhuǎn)運。實驗室應(yīng)評估標本容器，確保其不會對所進行的分析造成任何干擾。4.2.2 常見類型標本轉(zhuǎn)運要求4.2.2.1 血液標本 全血標本：如轉(zhuǎn)運時間在24小時內(nèi)可室溫轉(zhuǎn)運，在2472小時內(nèi)則2-8轉(zhuǎn)運；凍存樣本需用干冰轉(zhuǎn)運。血漿、血清標本：建議2-8轉(zhuǎn)運；凍存樣本需用干冰轉(zhuǎn)運

32、。4.2.2.2 腦脊液、胸腹水、支氣管肺泡灌洗液標本 用于DNA檢測的樣本，應(yīng)2-8轉(zhuǎn)運；用于RNA檢測的樣本，應(yīng)立即冰上轉(zhuǎn)運；凍存樣本需用干冰轉(zhuǎn)運。4.2.2.3 尿液、乳汁、糞便、宮頸和尿道拭子標本 應(yīng)盡快轉(zhuǎn)運，如環(huán)境溫度25，建議2-8轉(zhuǎn)運。4.2.2.4 痰液標本 用于DNA檢測的標本，如在30分鐘內(nèi)不能轉(zhuǎn)運至實驗室，建議2-8轉(zhuǎn)運。4.2.2.5 培養(yǎng)的細胞或菌株/毒株 最好放在37或其適宜生長的溫度或環(huán)境中轉(zhuǎn)運；注意按照相關(guān)生物安全要求進行操作。4.3 標本的接收4.3.1 不合格標本判斷標準4.3.1.1 通用標準 標本信息不正確、不完整（必要時應(yīng)包括詳盡的臨床信息和采集部位，

33、以便于準確地進行臨床解釋）、標本類型或標本容器與檢驗?zāi)康牟环?、標本量過少/過多、無采集時間、標本有明顯的污染跡象（如已溢灑）、標本采集后超過預(yù)處理時間送檢等。4.3.1.2 不合格標本判斷標準 血液標本溶血、乳糜、嚴重黃疸等；體液標本混有血液；痰標本為褐色血痰或含有少量新鮮血液的血痰、唾液標本（透明或半透明水樣、粘度較低、有時伴有氣泡）；固體培養(yǎng)物培養(yǎng)在非適當?shù)墓腆w培養(yǎng)基、菌苔較少；液體培養(yǎng)物菌液濃度小于1個麥氏濁度等。4.3.2 讓步檢驗標本的接收標準 對于樣本量較少，能滿足檢驗用量但不足樣本保存量的，且患者重新采樣存在困難的，與臨床科室溝通后予以接收。對于樣本有輕微乳糜或溶血，患者重新采樣

34、存在困難或由于藥物等影響再次采樣仍會存在乳糜或溶血的，經(jīng)與臨床科室溝通堅持檢驗的，予以接收，記錄至當日的工作日志，并在發(fā)送的檢驗報告的備注中注明樣本情況。 當標本標識不清或不全，但標本再獲取困難或原始標本中需檢測的核酸不穩(wěn)定，可先接收標本，待項目申請醫(yī)師或標本采集人員識別了標本信息，提供適當?shù)男畔⒉⒋_定標本所對應(yīng)的患者后再發(fā)送檢驗結(jié)果報告。4.4 標本的保存4.4.1 標本保存的原則 詳見個體化醫(yī)學(xué)檢測質(zhì)量保證指南，但在感染性疾病個體化醫(yī)學(xué)檢測中尤其需注意以下幾點：為保證核酸的完整性和穩(wěn)定性，選擇適宜的溫度保存。不能使用無霜冰箱保存標本，要記錄冰箱溫度，如有條件可安裝冷鏈系統(tǒng)監(jiān)測冰箱溫度。使用

35、適宜的容器保存標本和預(yù)處理后的樣本，如血漿在有分離膠的采血管中凍存后會使HIV-1病毒載量檢測值假性升高，因此需離心分離出血漿后，轉(zhuǎn)移至無RNase酶的可密封容器中保存。反復(fù)凍融會降解核酸，因此避免反復(fù)凍融。如果有條件，在用于RNA檢測的標本采樣器中加入RNA穩(wěn)定劑凍存。DNA在TE（Tris-EDTA）中會更穩(wěn)定，室溫可保存26周，2-81年，-207年，-707年。保存病原微生物標本的冰箱需雙人雙鎖，取用具有高致病性病原微生物標本需申報，經(jīng)審批后按相應(yīng)生物安全要求操作。4.4.2 常見類型標本保存條件4.4.2.1血液標本 全血標本：室溫可保存24小時，保存2-8時應(yīng)在72小時內(nèi)提取DNA

36、；建議在去除紅細胞后，-20或-70長期保存。血漿、血清標本：如果4小時內(nèi)不能提取RNA，應(yīng)-70保存血漿。建議-20或-70長期保存。4.4.2.2 呼吸系統(tǒng)標本 痰液標本：如不能立即檢測應(yīng)在-70保存。用于分枝桿菌分子檢測需液化后保存。支氣管肺泡灌洗液標本：如果24小時內(nèi)不能檢測，2-8可保存72小時，如近期不能檢測應(yīng)在-70保存。如進行分枝桿菌檢測，應(yīng)在液化后保存。4.4.2.3 其他體液標本 腦脊液、胸腹水標本：用于DNA檢測的樣本，如不能立即檢測應(yīng)在-20或-70保存。用于RNA檢測的樣本，應(yīng)在1-4小時內(nèi)提??；如近期不能檢測，應(yīng)在去除紅細胞后立即凍存。宮頸和尿道拭子標本：用于DNA

37、檢測的樣本2-8保存10天。尿液、乳汁、糞便標本：建議采集后保存在2-8，并盡快提取核酸。4.4.2.4 培養(yǎng)的細胞或菌株/毒株 在檢測前最好放在37或其適宜生長的溫度或環(huán)境中，注意按照相關(guān)生物安全要求進行操作。4.5 正確選擇檢驗項目 根據(jù)檢驗?zāi)康暮侠磉x擇，包括根據(jù)患者的診治情況正確選擇各檢驗項目的檢測時機和頻次，根據(jù)臨床意義選擇正確的標本類型，根據(jù)不同標本情況正確選擇檢測方法、判斷檢測結(jié)果等。4.5.1 正確選擇檢測時機和頻次 一般情況下，病原體核酸定量檢測應(yīng)根據(jù)病原體感染的自然史，在進行用藥指導(dǎo)、治療或者療效預(yù)測時進行檢測。例如HBV DNA定量檢測應(yīng)在抗病毒治療前進行基線檢測，再根據(jù)治

38、療效果的不同，每3個月或6個月進行隨訪檢測。病原體基因型和耐藥基因檢測，通常在進行用藥指導(dǎo)、治療或者病原體核酸數(shù)量反彈時進行檢測，一般檢測一次即可，但如果存在再次感染或更換治療方案時，可能需要再次進行檢測。與療效相關(guān)的宿主基因型檢測，通常在進行用藥指導(dǎo)或治療時進行，檢測一次即可。4.5.2 根據(jù)臨床意義選擇正確的標本類型 不同標本類型中的病原體可能是處在不同生命周期中的病原體，其分子檢測的臨床意義可能不同。例如外周血單個核細胞（PBMC）可用于檢測HIV整合入宿主基因組的前病毒DNA（即潛伏病毒），而血漿用于檢測HIV的病毒RNA（即游離病毒），在對HIV感染產(chǎn)婦所生的未滿18個月的嬰幼兒進行

39、早期診斷時，應(yīng)選擇HIV DNA檢測，以免受到母親以及嬰幼兒預(yù)防性抗病毒治療的干擾而影響診斷。4.5.3 根據(jù)標本類型正確判斷檢測結(jié)果 不同的標本類型可能導(dǎo)致檢測結(jié)果有顯著差異，這些差異將影響臨床決策，因此要依據(jù)臨床需要選擇正確的標本類型，如EBV在全血中的病毒載量比血漿高1個log。5. 感染性疾病相關(guān)個體化醫(yī)學(xué)分子檢測的分析中質(zhì)量控制5.1 實驗室設(shè)計要求 參見醫(yī)療機構(gòu)臨床基因擴增檢驗實驗室管理辦法等相關(guān)要求，同時需根據(jù)病原微生物實驗室生物安全管理條例和人間傳染的病原微生物名錄對所檢測的病原微生物進行風(fēng)險評估，然后在相應(yīng)生物安全級別的實驗室按照實驗室生物安全通用要求和血源性病原體職業(yè)接觸防

40、護導(dǎo)則等衛(wèi)生法律法規(guī)和各項生物安全管理規(guī)范開展檢測工作。例如結(jié)核分枝桿菌分子檢測，如僅涉及少量活菌可在BSL-2級實驗室開展，但如果需要先進行培養(yǎng)，則需要在BSL-3級實驗室開展。5.2 常用的分子檢測方法5.2.1 聚合酶鏈反應(yīng)（PCR）5.2.1.1 基本原理 PCR技術(shù)的基本原理類似于DNA的天然復(fù)制過程，其特異性依賴于與靶序列兩端互補的寡核苷酸引物。PCR由變性退火延伸三個基本反應(yīng)步驟構(gòu)成：模板DNA的變性：模板DNA經(jīng)加熱至95左右一定時間后，模板DNA雙鏈或經(jīng)PCR擴增形成的雙鏈DNA解離成為單鏈，它與引物結(jié)合，為下輪反應(yīng)作準備。模板DNA與引物的退火：模板DNA經(jīng)加熱變性成單鏈后

41、，溫度降至最佳退火溫度，引物與模板DNA單鏈以互補序列配對結(jié)合。引物的延伸：DNA模板引物結(jié)合物在72條件下、利用DNA聚合酶（如TaqDNA聚合酶）的作用，以dNTP為反應(yīng)原料，靶序列為模板，按堿基互補配對與半保留復(fù)制原理，合成一條新的與模板DNA鏈互補的半保留復(fù)制鏈，重復(fù)循環(huán)變性退火延伸三過程就可獲得更多的“半保留復(fù)制鏈”，而且這種新鏈又可成為下次循環(huán)的模板。每完成一個循環(huán)需24分鐘，23小時就能 將待擴目的基因擴增放大幾百萬倍。5.2.1.2 主要類型及臨床應(yīng)用5.2.1.2.1 定性檢測 定性檢測包括病原體分子分型、耐藥基因突變及宿主基因型檢測。 等位基因特異性PCR（allele s

42、pecific-PCR, ASO-PCR）：又稱作ARMS（amplification refractory mutation system）或PASA（PCR amplification）。基本原理：根據(jù)基因變異位點設(shè)計特異引物，其中一條鏈（特異鏈）的3末端與突變位點的堿基互補，另一條鏈（通用鏈）按常規(guī)方法設(shè)計。因為特異引物在變異基因型中有擴增產(chǎn)物，在野生型中沒有擴增產(chǎn)物，用凝膠電泳能夠很容易地分辨出擴增產(chǎn)物的有無，從而確定有無突變基因型。常用的結(jié)果分析方法：a)瓊脂糖凝膠電泳。b)聚丙烯酰胺凝膠電泳。主要特點：對實驗條件要求較低，操作簡單易行，成本低，重復(fù)性好，所需DNA的量較少且對DNA

43、質(zhì)量要求較低；但對引物設(shè)計要求較高，且僅能進行已知突變檢測。2 多重PCR（multiplex PCR）基本原理：多重PCR在同一PCR反應(yīng)體系里加上二對以上引物，同時擴增出多個核酸片段的PCR。常用的結(jié)果分析方法：毛細管電泳法（capillary electrophoresis, CE）又稱高效毛細管電泳（high performance capillary electrophoresis, HPCE）：是利用離子的電泳遷移率不同，在電場中移動的速度不同，從而將不同的離子分離。高效液相色譜層析（high performance liquid chromatography, HPLC）：溶于流

44、動相的各組分在經(jīng)過固定相時，與固定相發(fā)生作用（吸附、分配、離子吸引、排阻、親和）的大小、強弱不同，導(dǎo)致在固定相中滯留的時間不同，由此判斷待測物。單鏈構(gòu)型多態(tài)性分析（single-strand conformational polymorphism, SSCP）：是利用不同空間構(gòu)型的DNA分子，在凝膠電泳中的泳動速率不同，從而區(qū)分變異的DNA分子。主要特點：多重PCR經(jīng)濟簡便，多種病原體在同一反應(yīng)管內(nèi)同時檢出，將大大地節(jié)省時間，且節(jié)約開支；但特異性會有所降低，且僅能進行已知突變檢測。3 長距離反向PCR（long distance inverse PCR, LD-IPCR）基本原理：根據(jù)已知的核

45、心DNA去末端序列設(shè)計兩條引物，使兩引物3端相互反向。擴增前先用限制性內(nèi)切酶酶切樣品DNA，然后用DNA連接酶連接成一個環(huán)狀DNA分子，通過反向PCR擴增引物的上游片段和下游片段，從而獲得引物外側(cè)的DNA片段。常用的結(jié)果分析方法：脈沖場凝膠電泳（PFGE）：利用定時改變電場方向的交變電源以分離大分子DNA。標記寡核苷酸探針：針對待測基因設(shè)計相應(yīng)的特異性標記寡核苷酸探針，使其在固相或液相中與擴增產(chǎn)物反應(yīng)，檢測相應(yīng)的熒光信號即可判斷待測樣本的基因型。主要特點：LD-IPCR適用于較長序列的分析，且不需預(yù)知待分析序列的具體結(jié)構(gòu)；但方法較為復(fù)雜，需要特殊儀器。4 實時熒光定量PCR（qPCR或real

46、-time PCR）基本原理：實時熒光定量PCR是指在PCR反應(yīng)中引入一種熒光化學(xué)物質(zhì)，隨著PCR反應(yīng)的進行，反應(yīng)產(chǎn)物不斷累積，熒光信號強度也等比例增加?；跈z測PCR擴增周期每個時間點上擴增產(chǎn)物的量，通過熒光強度變化監(jiān)測產(chǎn)物量，從而實現(xiàn)對起始模板定性或定量檢測。根據(jù)使用的熒光標記類型可分為探針類和非探針兩大類。非探針類是利用非特異性的插入雙鏈DNA的熒光結(jié)合染料或者特殊設(shè)計的引物來指示擴增的增加。探針類則是利用與靶序列特異雜交的探針來指示擴增產(chǎn)物的增加。前者簡便易行，而后者由于增加了探針的互補識別步驟，特異性更高。常用的特異性熒光探針及其特點：TaqMan探針：是目前臨床應(yīng)用最廣泛的探針之一

47、。TaqMan是一類寡核苷酸探針，依據(jù)目標DNA序列的上游引物和下游引物之間的序列配對來設(shè)計。探針的5-端用報告熒光染料（reporter fluorescence dye，R）標記，3-端則標記淬滅染料（quencher dye，Q）。當完整的探針與目標序列配對時，5-端報告熒光基團發(fā)射的熒光因與3-端的淬滅劑接近而被淬滅。但隨著PCR延伸，DNA聚合酶的5-端外切酶活性將探針切開，使得熒光基團與淬滅劑分離，報告基團的熒光得以釋放而被檢測。TaqMan MGB探針：是在TaqMan探針基礎(chǔ)上改進而來的，其3端不是淬滅基團而是一種非熒光淬滅劑，另外3端還增加了一個小溝結(jié)合分子MGB，該分子能夠

48、結(jié)合在雙鏈DNA小溝部位，從而使探針與模板緊密結(jié)合。MGB的存在提高了探針的Tm值，一般12-17bp的探針在MGB的作用下Tm值可升高15-30，從而使它能夠分辨單個堿基的差別；而且連在MGB分子后的是非熒光物質(zhì)的淬滅基團，因此這種探針具備更好的淬滅效果，且具有無背景熒光、熒光標記靈活、提高熒光信號的信噪比等優(yōu)點。分子信標（molecular beacon）：是一種莖環(huán)結(jié)構(gòu)的雙標記寡核苷酸探針，位于分子一端的熒光基團與分子另一端的淬滅基團靠近。不存在模板時，探針呈莖環(huán)結(jié)構(gòu)；存在模板時，莖環(huán)結(jié)構(gòu)打開與模板配對，構(gòu)象改變使得熒光基團與淬滅基團分開，釋放熒光。分子信標也有缺點，即探針匹配的是基因內(nèi)

49、部序列，不一定在每個基因上都能找到長短適中且?guī)в心┒嘶匚慕Y(jié)構(gòu)的序列，所以分子信標的探針設(shè)計要求較高。該方法檢測的特異性高于TaqMan等線性探針，較適用于基因點突變的鑒定。蝎形探針:是一種雙分子實時熒光檢測體系，具有反應(yīng)迅速、熒光強度高、特異性好等優(yōu)點。該方法中引物與探針的功能被綜合到同一段寡核苷酸序列上。雙雜交探針：該方法的特點是淬滅效率高，特異性強，但由于兩個探針結(jié)合于模板上，故影響了擴增效率。此外，探針合成成本也相對較高。常用的非探針類熒光標記及其特點雙鏈DNA交聯(lián)熒光染料，通常指SYBR Green或LC Green TM染料，SYBR Green I能結(jié)合到DNA雙螺旋到小溝。在加入

50、過量到SYBR熒光染料到PCR體系中，SYBR熒光染料特異性地摻入到產(chǎn)物的DNA雙鏈，發(fā)射熒光信號，而未摻入DNA鏈中的染料分子不會發(fā)射任何熒光信號，從而保證熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加完全同步。由于它與所有的雙鏈DNA相結(jié)合，不必因為模板不同而特別定制，因此設(shè)計的程序通用性好，且價格相對較低。但是，內(nèi)嵌染料沒有序列特異性，可以結(jié)合到包括非特異產(chǎn)物、引物二聚體、單鏈二級結(jié)構(gòu)以及錯誤的擴增產(chǎn)物上，造成假陽性而影響定量的精確性。高分辨熔解曲線分析（high resolution melting, HRM）及其特點是根據(jù)DNA序列的長度、GC含量以及堿基互補性差異，應(yīng)用高分辨率的熔解曲線對樣品進

51、行分析。高分辨熔解對DNA序列的識別能力主要由三個因素所決定：檢測儀器的分辨率、雙鏈DNA嵌入型染料的種類和PCR產(chǎn)物的純度。其優(yōu)點是高通量、快速、高靈敏度、閉管檢測以防止污染造成的假陽性，但此方法對儀器要求較高。5 PCR-限制性片段長度多態(tài)性分析（PCR-RFLP）基本原理：根據(jù)DNA在限制性內(nèi)切酶酶切后形成的特定DNA片段的大小，判斷待測樣品的基因特征。主要特點：簡便易行，但僅能識別位于酶切位置內(nèi)的突變，而且凝膠電泳的結(jié)果僅能判斷產(chǎn)物的大概長度，是非特異性的方法。目前對同一病原體檢測時應(yīng)用哪一種限制內(nèi)切酶仍沒有一致意見，因此質(zhì)量控制比較難實現(xiàn)。6 PCR-核酸序列分析技術(shù)Sanger測序

52、技術(shù)（雙脫氧鏈終止法）：是廣泛應(yīng)用的第一代DNA測序技術(shù)的典型代表。通常情況下，要測序的DNA先進行核酸擴增，之后進行測序反應(yīng)。測序反應(yīng)中除了加入4種正常的脫氧核苷三磷酸（dNTP）外，還加入一種少量的2,3-雙脫氧核苷三磷酸（ddNTP），當ddNTP位于鏈延伸末端時，由于它沒有3- OH，不能再與其它的脫氧核苷酸形成3,5-磷酸二酯鍵，DNA合成便在此處終止，如果此處摻入的是一個ddATP，則新生鏈的末端就是A，依次類推可以通過摻入ddTTP、 ddCTP、 ddGTP ，則新生鏈的末端為T、C或G。Sanger測序技術(shù)可以獲得未知待分析序列的具體結(jié)構(gòu)，是確定基因序列的金標準，但它的準確率

53、仍然無法達到100%，大約<2%的堿基無法被Sanger法測序所識別。因為通量的緣故，它在大基因和多基因的檢測方面效率很低。焦磷酸測序技術(shù)（pyrosequencing）：是由4種酶催化的同一反應(yīng)體系中的酶級聯(lián)化學(xué)發(fā)光反應(yīng)。當引物與模板DNA退火后，在DNA聚合酶(DNA polymerase)、ATP硫酸化酶（ATP sulfurytase）、熒光素酶（luciferase）和三磷酸腺苷雙磷酸酶（Apyrase）4種酶的協(xié)同作用下，將引物上每一個dNTP的聚合與一次熒光信號的釋放偶聯(lián)起來，通過檢測熒光的釋放和強度，達到實時測定DNA序列的目的。焦磷酸測序技術(shù)是一種新型的酶聯(lián)級聯(lián)測序技術(shù)

54、，其重復(fù)性和精確性可與Sanger測序相媲美，而測序速度則大大提高，非常適合對已知的短序列進行測序分析；但對未知序列分析上，該方法的測序長度明顯短于Sanger法。高通量測序技術(shù)：又稱“下一代”測序技術(shù)（"Next-generation" sequencing technology, NGS），以能一次并行對幾十萬到幾百萬條DNA分子進行序列測定和一般讀長較短等為標志。不同廠家的產(chǎn)品測序原理不同，主要分為邊合成邊測序（Sequencing by synthesis，SBS）、基于“DNA簇”和“可逆性末端終結(jié)（Reversible Terminator）大規(guī)模平行測序、4色

55、熒光標記寡核苷酸的連續(xù)連接反應(yīng)測序和半導(dǎo)體芯片測序。與Sanger測序技術(shù)相比，新一代測序平臺最大的變化是無需克隆這一繁瑣的過程，而是使用接頭進行高通量的并行PCR、測序反應(yīng)，并結(jié)合微流體技術(shù)，利用高性能的計算機對大規(guī)模的測序數(shù)據(jù)進行拼接和分析。接頭的運用，使得高通量測序技術(shù)不再局限于單純的基因組測序，而是作為一個平臺，可以開展全基因表達圖譜分析、SNP、小RNA、ChIP、DNA甲基化等諸多研究。目前尚未在臨床廣泛應(yīng)用。7 PCR-基因芯片技術(shù)基本原理：又稱微列陣技術(shù)，是一種大規(guī)模集成的固相雜交（反向點雜交），即依據(jù)DNA雙鏈堿基互補配對、變性和復(fù)性的原理，以大量已知序列的寡核苷酸、cDNA

56、或基因片段作探針，檢測樣品中哪些核酸序列與其互補，分析得出待測樣品的基因信息。主要特點：一張芯片可同時對多名患者進行多種疾病的檢測，通量較高；待測樣品用量少；靈敏度高，特異性好。5.2.1.2.2 定量檢測 定量檢測包括病原體核酸定量檢測。 實時熒光定量PCR（qPCR或real-time PCR）基本原理：基于檢測PCR擴增周期每個時間點上擴增產(chǎn)物的量，通過熒光強度變化監(jiān)測產(chǎn)物量從而實現(xiàn)對起始模板進行定量。外標法定量：參考基因或標準物與待測標本在不同的反應(yīng)管里平行擴增，則這樣的參考基因或標準物稱為外標。利用外標進行PCR反應(yīng)的方法叫外標法。外標法操作簡便，檢測范圍廣泛；但管間擴增效率的差異會可能影響結(jié)果的準確性，且難以排除假陰性結(jié)果。內(nèi)標法定量：參考基因或標準物與待測標本在同一個反應(yīng)管里擴增，則這樣的參考基因或標準物稱為內(nèi)標。利用內(nèi)標進行PCR反應(yīng)的方法叫內(nèi)標法。內(nèi)標法可以監(jiān)控整個反應(yīng)過程，但使PCR反應(yīng)變?yōu)殡p重PCR，可能會出現(xiàn)競爭現(xiàn)象。2 數(shù)字PCR（digital PCR, dPCR）數(shù)字PCR是一種基于單分子PCR方法來進行計數(shù)的核酸絕對定量的方法。主要采用微流控或微滴化方法，將大量稀釋后的核酸溶液分散至芯片的微反應(yīng)器或微滴中，每個反應(yīng)器的核酸