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文檔簡介
1、Ni柱純化His-tag蛋白質(zhì)一非變性條件下抽提His-Tag蛋白質(zhì)下列方法適用于從細(xì)菌中抽提通常含有連續(xù)6個組氨酸尾(HisTagProtein)的具有天然結(jié)構(gòu)的可溶性重組蛋白質(zhì)(NativeProtein)。其他來源的蛋白質(zhì)樣品,如果目標(biāo)蛋白質(zhì)具有His-Tag結(jié)構(gòu),提供的層析方法可供參考。1.樣品準(zhǔn)備1)準(zhǔn)備細(xì)胞,接種,誘導(dǎo)表達(dá)。對于實驗室用的pET載體表達(dá)系列,在細(xì)胞OD600=0.5-0.8時,用ImMIPTG誘導(dǎo)1-3小時,可以獲得理想的表達(dá)效率。收集細(xì)胞,置于-70度或立即進(jìn)行步驟2操作。2)加入1/20細(xì)胞生長體積的NTA-0BuffeK20mMTris-HClpH7.9,0.
2、5MNaCl,10%Glycerol)和PMSF。PMSF用無水乙醇配制成200mM儲存液,-20度或4度保存;PMSF使用的工作濃度位1mM;注意:PMSF見水分解,需要在使用前加入。該步驟冰上操作。3)將細(xì)胞懸浮起來,加入溶菌酶(工作濃度位0.2-0.4mg/ml,如果表達(dá)的宿主細(xì)胞內(nèi)含pLysS或pLysE,可以不加溶菌酶),混勻,冰上放置30分鐘,超聲或勻漿破碎細(xì)胞。該步驟冰上操作。4)加入10%TritonX-100,使Triton的終濃度為0.05%,充分混勻,冰上放置15分鐘,間或混勻);冰上超聲破碎細(xì)胞,同時降低粘稠度。5)加入1MMgCl2,使MgCl2的終濃度為1mM,混勻
3、。加入DNase,使DNase的終濃度為10mg/m1,混勻,室溫放置10分鐘。6)5000轉(zhuǎn)/分(20,000xg以上),4度離心15分鐘以上。取上清,置于冰上備用或-20度保存。2層析1)將NTA樹脂裝入合適的層析柱,層析用10倍NTA體積的NTA-0Buffer洗。2)將樣品(步驟2(6)加到NTA層析柱中,流速控制在15ml/小時左右,收集穿透部分,用于SDS/PAGE分析蛋白質(zhì)的結(jié)合情況。3)層析用5倍NTA體積的NTA-0Buffer洗,流速控制在30ml/小時左右。4)分別用5倍NTA體積的NTA-20,NTA-40,NTA-60,NTA-80,NTA-100,NTA-200,N
4、TA-1000Buffer洗脫,流速控制在15ml/小時左右,收集洗脫液,每管收集一個NTA體積。5)確定目標(biāo)蛋白質(zhì)在洗脫液中的分布情況。最為有效的方式是SDS/PAGE分析。也可以用BBST的Bradford蛋白質(zhì)測定試劑盒,快速確定蛋白質(zhì)的含量,然后用SDS/PAGE分析蛋白質(zhì)的分布。6)目標(biāo)蛋白質(zhì)需要進(jìn)一步純化需要根據(jù)蛋白質(zhì)的用途確定。純化的目標(biāo)蛋白質(zhì)的保存條件需要根據(jù)蛋白質(zhì)的性質(zhì)和用途確定。附溶液配方:NTA-0Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,NTA-20Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10
5、%Glycerol,20mMImidazole咪唑)NTA-40Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,40mMImidazole咪唑)NTA-60Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,60mMImidazole咪唑)NTA-80Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,80mMImidazole咪唑)NTA-100Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,100mMImidazole咪唑)
6、NTA-200Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,200mMImidazole咪唑)NTA-1000Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,1000mMImidazole(咪唑)二變性條件下從包涵體中純化His-Tag的蛋白質(zhì)有些蛋白質(zhì)細(xì)菌或其他細(xì)胞中表達(dá)效率很高,但溶解性很差,通常形成包涵體。這些蛋白質(zhì)的溶解通常需要用鹽酸胍或尿素。與MBP和GST的親和層析材料相比,NTA樹脂可以在6M的鹽酸胍存在的情況下與具有HisTag的蛋白質(zhì)結(jié)合。整個層析過程都是在有鹽酸胍的條件下進(jìn)行。純化后的
7、蛋白質(zhì)需要進(jìn)行復(fù)性,正確復(fù)性的蛋白質(zhì)才具有生物學(xué)活性。下列方法(步驟4-5)用于從細(xì)菌中抽提含His-Tag位于包涵體變性蛋白質(zhì)。1樣品準(zhǔn)備1)準(zhǔn)備細(xì)胞,接種,誘導(dǎo)表達(dá)。對于實驗室用的pET載體表達(dá)系列,在細(xì)胞OD600=0.5-0.8時,用1mMIPTG誘導(dǎo)1-3小時,可以獲得理想的表達(dá)效率。收集細(xì)胞,置于-70度或立即進(jìn)行步驟2操作。2)加入1/20細(xì)胞生長體積的GuNTA-0Buffer(20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,6MGuanidiumHCl)和PMSF。PMSF用無水乙醇配制成200mM儲存液,-20度或4度保存;PMSF使用的工作濃
8、度位1mM;注意:PMSF見水分解,需要在使用前加入。3)將細(xì)胞懸浮起來,冰上超聲破碎細(xì)胞,降低粘稠度。4)室溫放置30分鐘,間或混勻或用磁力攪拌。5)15000轉(zhuǎn)/分(20,000xg以上),4度離心15分鐘以上。取上清,置于冰上備用或-20度保存。2層析1)將NTA樹脂裝入合適的層析柱,層析用10倍NTA體積的GuNTA-0Buffer洗。2)將樣品(步驟2(5)加到NTA層析柱中,流速控制在15ml/小時左右,收集穿透部分,用于SDS/PAGE分析蛋白質(zhì)的結(jié)合情況。3)層析用5倍NTA體積的GuNTA-0Buffer洗,流速控制在30ml/小時左右。4)分別用5倍NTA體積GuNTA-2
9、0,GuNTA-40,GuNTA-60,GuNTA-100,GuNTA-500洗脫,流速控制在15ml/小時左右,收集洗脫液,每管收集一個NTA體積。5)確定目標(biāo)蛋白質(zhì)在洗脫液中的分布情況。最為有效的方式是SDS/PAGE分析。也可以用BBST的Bradford蛋白質(zhì)測定試劑盒,快速確定蛋白質(zhì)的含量,然后用SDS/PAGE分析蛋白質(zhì)的分布。6)目標(biāo)蛋白質(zhì)需要進(jìn)一步純化需要根據(jù)蛋白質(zhì)的用途確定。7)純化的目標(biāo)蛋白質(zhì)需要復(fù)性,復(fù)性常用的手段可以參考有關(guān)手冊確定的原則,根據(jù)蛋白質(zhì)的特性來摸索具體的方案。附溶液配方:GuNTA-0Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10
10、%Glycerol,6MGuanidiumHClGuNTA-20Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,6MGuanidiumHCl,20mMImidazoleGuNTA-40Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,6MGuanidiumHCl,40mMImidazoleGuNTA-60Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,6MGuanidiumHCl,60mMImidazoleGuNTA-100Buffer:20mMTris-HClpH
11、7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,6MGuanidiumHCl,100mMImidazoleGuNTA-500Buffer:20mMTris-HClpH7.9,0.5MNaCl,10%Glycerol,6MGuanidiumHCl,500mMImidazole附:NTA樹脂的再生NTA樹脂在使用若干次數(shù)(3-5次)后,結(jié)合效率有所下降,可以用以下方法再生,提高樹脂的使用壽命和蛋白質(zhì)的結(jié)合效率。注意:NTA樹脂再生前需要從層析柱下端流干所有溶液,估計出NTA的樹脂體積,按下列次序?qū)⒃偕噭┘拥綄游鲋铮诘壬弦辉偕芤毫鞲珊?,再加下一再生溶解。用戶需要自行?zhǔn)備25%,50%,75%,100%(v/v)乙醇和去離子水。NTA再生步驟:(1) 從層析柱下端流干所有溶液,用2倍NTA樹脂體積的0.2MAceticAcid/6MguanidineHC1洗。(2) 用2倍體積的去離子水洗。(3) 用3倍體積的2%SDS洗。(4) 用1倍體積的25%乙醇洗。(5) 用1倍體積的50%乙醇洗。(6) 用1倍體積的75%乙醇洗。(7) 用5倍體積的100%乙醇洗。(8) 用1倍體積的75%乙醇洗。(9) 用1倍體積的50%乙醇洗。(10) 用1倍體積的2
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