葉綠體蛋白的提取_第1頁(yè)
葉綠體蛋白的提取_第2頁(yè)
葉綠體蛋白的提取_第3頁(yè)
葉綠體蛋白的提取_第4頁(yè)
全文預(yù)覽已結(jié)束

下載本文檔

版權(quán)說(shuō)明:本文檔由用戶提供并上傳,收益歸屬內(nèi)容提供方,若內(nèi)容存在侵權(quán),請(qǐng)進(jìn)行舉報(bào)或認(rèn)領(lǐng)

文檔簡(jiǎn)介

1、一.樣品的制備樣品的處理(包括CK和TRE)用20%的PEG-6000 (滲透勢(shì)大約為T.88MPa) 誘導(dǎo)干旱脅迫(D),直到它們的相對(duì)含水量達(dá)到83%-86%(一般 3天)。然后高溫脅迫(H)處理在光照培養(yǎng)箱中進(jìn)行,溫度40C 處 理時(shí)間為24個(gè)小時(shí)(恢復(fù)0h:R0)。然后R12,R24, R36,髦。DH 處理前,R0, R12,R24, R36, R48: CK,CK+TRE,CK+DH,CK+TRE+DH;DH處理后,取第3片全展葉為試材,進(jìn)行葉綠體蛋白組的分析。每個(gè)處理重復(fù) 3 次。(CK,CK+TRE,CK+DH,CK+TRE+DH)葉綠體的分離剪取10g小麥葉片,將葉片剪碎,液

2、氮研磨;加入 5 倍體積 4C預(yù)冰冷的 buffer A(buffer A: 50mM Tris-HCl, 20mM EDTA 0.5M蔗糖,0. 25M Vc, pH3.5),勻漿用8層醫(yī)用紗布 過(guò)濾濾液至預(yù)冷的50mL離心管中,棄殘?jiān)?。濾液1500g / min, 15min離心,棄上清,留沉淀。向沉淀中加入3mL bufferA,充分懸浮,轉(zhuǎn)入10mL離心管中。2000g / min, 15min離心,棄上清,收集沉淀。加入 2mLbufferB,充分懸浮。(buffer B: 50mM Tris-HCl, 20mMEDTA, 0. 5M蔗糖,1%BSA, 7mM 蹄基乙醇現(xiàn)用現(xiàn)加)15

3、00g / min,離心10min,棄上清,收集沉淀,再用bufferB 洗一次。同上離心,棄上清,再加bufferC洗一次,離心,沉淀大部分 為葉綠體。(buffer C: 50mM Tris-HCl pH8.0,20mM EDTA,0. 5M 蔗糖)葉綠體的純化(1)制作不連續(xù)的percoll密度梯度,先在超速離心管中加入3mL 的60%的percoll,然后沿管壁緩緩加入4mL的40%percoll,最 后加入 5ml 20%的 percoll。Percoll 濃度(% )706050403020比重 g/ml1.0901.0771.0671.0561.0431.031問(wèn):請(qǐng)問(wèn)perco

4、ll連續(xù)梯度怎么配制?比如15%75%的percoll連續(xù)梯度?答:根據(jù)你需要的具體密度梯度決定的,根據(jù)要分離 的不同細(xì)胞種類,數(shù)量等等,也有用原液配的。也有用80%配的, 不一定的。另外,percoll本身是低滲透壓的,要用高滲透壓溶液 配成生理等滲透壓溶液,然后使用,不然,細(xì)胞容易破裂。一般是 先用9份Percoll與1份8.5% NaCl或1.5M PBS混合達(dá)到生理性 滲透壓,然后用生理溶液(0.85% NaCl或0.15M PBS)稀釋到所需 濃度。即取Percoll原液與10倍濃縮的PBS以9: 1的比例混合, 此時(shí)溶液 為100% Percoll,比重是1.127。將粗提出的葉綠

5、體加入離心管中,8000g / min離心lh。在20%和40%之間是一些密度較小的細(xì)胞器或破碎的葉綠體, 在40%和60%之間是純化的葉綠體,在試管底部還有一些沉淀。用注射器扎入40%和60 %的界面,吸出葉綠體。(4)加入等體積的 bufferC(50 mM Tris-Hcl pH8. 0, 20 mM EDTA, 0.5 M蔗糖),10000rpm離心5min,再用bufferC洗一遍,沉淀即 為純化的葉綠體。葉綠體純度的鑒定4. 1顯微鏡觀察用bufferC將葉綠體溶液稀釋lO倍,滴到載波片上,可見(jiàn)光下觀 察葉綠體形態(tài)、紫外線下觀察葉綠素?zé)晒?,比較葉綠體和葉綠素?zé)?光重疊程度。(熒光顯

6、微鏡)2特異酶檢測(cè)過(guò)氧化氫酶活性的檢測(cè):先用BCA法測(cè)蛋白濃度,然后用過(guò)氧化氫 酶檢測(cè)試劑盒檢測(cè)葉綠體蛋白的提取及溶解純化的葉綠體(10g 片)加入 1.5mL Buffer(100mM Tris,100 mM edta,50mM borax, 50mM Vc, 1 %TritonXT00,2% 伙巰基乙醇, 30%的蔗糖),將純化的葉綠體劇烈懸浮,室溫5min。加入等體積Tris飽和酚(pH8. O),劇烈震蕩10min。4,15000g離心15min,將上層的酚轉(zhuǎn)移到新的試管中。加入5倍體積的硫酸銨飽和甲醇沉淀蛋白,-20r, 6h。15000g, 15min, 4笆離心。用冰甲醇洗一次,冰丙酮洗三次沉淀, 每次洗滌15000g, 4C 5min,最終沉淀在空氣中干燥。用BCA方法測(cè)定蛋白濃度。雙向電泳IEFSDS雙向電泳凝膠的固定及染色將凝膠放入400 ml固定液中固定3h。超

溫馨提示

  • 1. 本站所有資源如無(wú)特殊說(shuō)明,都需要本地電腦安裝OFFICE2007和PDF閱讀器。圖紙軟件為CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.壓縮文件請(qǐng)下載最新的WinRAR軟件解壓。
  • 2. 本站的文檔不包含任何第三方提供的附件圖紙等,如果需要附件,請(qǐng)聯(lián)系上傳者。文件的所有權(quán)益歸上傳用戶所有。
  • 3. 本站RAR壓縮包中若帶圖紙,網(wǎng)頁(yè)內(nèi)容里面會(huì)有圖紙預(yù)覽,若沒(méi)有圖紙預(yù)覽就沒(méi)有圖紙。
  • 4. 未經(jīng)權(quán)益所有人同意不得將文件中的內(nèi)容挪作商業(yè)或盈利用途。
  • 5. 人人文庫(kù)網(wǎng)僅提供信息存儲(chǔ)空間,僅對(duì)用戶上傳內(nèi)容的表現(xiàn)方式做保護(hù)處理,對(duì)用戶上傳分享的文檔內(nèi)容本身不做任何修改或編輯,并不能對(duì)任何下載內(nèi)容負(fù)責(zé)。
  • 6. 下載文件中如有侵權(quán)或不適當(dāng)內(nèi)容,請(qǐng)與我們聯(lián)系,我們立即糾正。
  • 7. 本站不保證下載資源的準(zhǔn)確性、安全性和完整性, 同時(shí)也不承擔(dān)用戶因使用這些下載資源對(duì)自己和他人造成任何形式的傷害或損失。

評(píng)論

0/150

提交評(píng)論