




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文檔簡(jiǎn)介
基因的重組與轉(zhuǎn)移第1頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月外源DNA載體DNA重組分子原核細(xì)胞真核細(xì)胞擴(kuò)增或表達(dá)表達(dá)連接轉(zhuǎn)化或轉(zhuǎn)導(dǎo)電穿孔或顯微注射受體細(xì)胞第六章
基因的重組與轉(zhuǎn)移
第2頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月第3頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月一、粘性末端的連接DNA連接酶把相互靠近的5’端磷酸與3’-OH連到一起。第一節(jié)
DNA片段的體外連接第4頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月1.兩段DNA的連接依靠粘性末端第5頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月2.DNA片段與載體的連接依靠粘性末端第6頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月第7頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月ligasenick第8頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月二、齊平末端(bluntend)的連接5’端與3’端并列靠近的時(shí)間太短,不容易被連接酶連接。1.直接連接T4DNA連接酶雖然能連接平末端,但效率很低,只有粘性末端的10%。5’
5’
5’
5’
3’
3’
3’
3’
-OH-OH-P-PP-P-HO-HO-5’
3’
-OH-PP-HO-5’
3’
第9頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月1972年,斯坦福大學(xué)的P.Labban和P.Kaiser提出。(1)同聚加尾法
2.人工加尾形成
“粘性末端”
DNA末端轉(zhuǎn)移酶能在沒(méi)有模板的情況下給DNA的3’-OH端加上脫氧核苷酸。①原理:分別給載體和插入片段加上互補(bǔ)的核苷酸。②加尾—堿基互補(bǔ)第10頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月④缺點(diǎn):③優(yōu)點(diǎn):能把任何片段連接起來(lái)目的基因和載體加尾長(zhǎng)度不同,需補(bǔ)齊;不能把插入片段再切下來(lái)。非酶切位點(diǎn)第11頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月用T4DNA連接酶連到平端DNA上,然后再用酶切,形成一個(gè)人工粘性末端。(2)銜接物(linker)連接①linker用化學(xué)合成法合成的一段10-12bp的特定限制性內(nèi)切酶識(shí)別位點(diǎn)序列的平端雙鏈。GGAATTCCCCTTAAGGEcoRIlinker:②linker的作用第12頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月
第13頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月
第14頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月④缺點(diǎn):1)可以用內(nèi)切酶把插入片段切下來(lái)。如果插入片段內(nèi)部也有該酶位點(diǎn),不能切下完整的插入片段2)能給載體連接上Polylinker:③優(yōu)點(diǎn):第15頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月(3)DNA接頭
(adapter)連接法1978年康內(nèi)爾大學(xué)的吳瑞教授發(fā)明。5‘p-GATCCCGG-OH3’
GGCC-p5’
BamHIadapter用T4DNA連接酶連到DNA分子的兩端,直接成為人工粘性末端。①adapter一頭平末端、另一頭粘性末端(某種酶切位點(diǎn)序列)。②adapter的作用第16頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月Blunt-endedDNA5’p-GATCCCGG-OH3’
HO-GGCC-p5’
BamHIadapterP--P5‘p-GATCCCGG-GGCC--CCGG-GGCCCTAG-P5’
5‘p-GATCCCGG-GGCC-CCGGGGCCCTAG-P5’
CCGGGATCCCGG-OHGGCCCTAGGGCC-P5’
接頭自我連接第17頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月第18頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月接頭與接頭會(huì)彼此以粘性末端接在一起,影響與DNA片段的連接。③優(yōu)點(diǎn):連上后就能用。④缺點(diǎn):先用小牛腸堿性磷酸酶(CIP)處理接頭,水解掉其5’端的磷酸,防止自我連接。(以后再用T4多核苷酸激酶加上磷酸。)⑤防止自我連接第19頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月5‘p-GATCCCGG-OHHO-GGCC-PP-CCGG-OHHO-GGCCCTAG-P5’
CCGGGATCCCGG-OHHO-GGCCCTAGGGCC5’
接頭之間不能形成磷酸二酯鍵自我連接!5‘GATCCCGG-OHHO-GGCC5’
5’CCGG-OHHO-GGCCCTAG5’
CIP處理-OHHO-第20頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月Blunt-endedDNA5’p-GATCCCGG-OH3’
HO-GGCC-p5’
BamHIadapterP--P5‘HO-GATCCCGG-HO-GGCCCCGG-OH-GGCCCTAG-OH5’
5’HO-GATCCCGG-OH3’
HO-GGCC-OH5’
切口切口HO--OHCIP處理T4ligase雖然有切口,但仍然能與DNA片段連接。第21頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月三、PCR產(chǎn)物的連接1.在引物的5’端設(shè)計(jì)酶切位點(diǎn)符合載體的多克隆位點(diǎn);(1)設(shè)計(jì)原則(2)帶酶切位點(diǎn)的引物的結(jié)構(gòu)3’端15~20bp與模板互補(bǔ);5’端6~10bp是某個(gè)內(nèi)切酶的識(shí)別序列。(5’端多余的3~5bp起保護(hù)堿基作用)避免與所擴(kuò)增的DNA片段內(nèi)部酶切位點(diǎn)重復(fù)。第22頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月引物1GCAGAATTC
互補(bǔ)序列模板EcoRI位點(diǎn)5’--3’
GCAGAATTC
互補(bǔ)序列5’--3’
3’
模板GCAGAATTC
互補(bǔ)序列
PCR產(chǎn)物5’--3’
3’
復(fù)性延伸模板模板3’
3’
第23頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月GCTAGCCGG
互補(bǔ)序列模板BamHI位點(diǎn)-5’
3-’
5’
復(fù)性延伸模板模板3’
3’
GCTAGCCGG
互補(bǔ)序列-5’
3’-模板5’
GCTAGCCGG
PCR產(chǎn)物
互補(bǔ)序列-5’
3’-引物2第24頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月帶酶切位點(diǎn)的PCR產(chǎn)物GCAGAATTC
PCR產(chǎn)物5’--3’
GCTAGCCGG
PCR產(chǎn)物-5’
3’-CGTCTTAAGCGATCGGCCEcoRI位點(diǎn)BamHI位點(diǎn)AATTC
PCR產(chǎn)物5’--3’
GCTAG
PCR產(chǎn)物-5’
3’-GCEcoRIBamHI兩頭各有一個(gè)粘性末端!第25頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月2.與T載體直接連接(1)PCR產(chǎn)物兩個(gè)3’端一般都有一個(gè)ATaqDNA聚合酶的特性:在DNA雙鏈的3’端再加上一個(gè)多余的核苷酸(優(yōu)先加A)。(2)平末端載體兩個(gè)3’端各加一個(gè)T利用TaqDNA聚合酶,當(dāng)原料中只有dTTP時(shí),被迫在平端載體3’端上添加T!第26頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月AAdNTPTTdTTPTaqDNA聚合酶載體PCR產(chǎn)物TATA第27頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月四、DNA體外連接應(yīng)注意的事項(xiàng)插入片段與載體的酶切位點(diǎn)互補(bǔ)相同的粘性末端才能有效地連接。盡量避免平端連接。決不能進(jìn)行非粘性末端連接。第28頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月EcoRIEcoRIEcoRI(1)用相同的酶切(2)用同尾酶切BamHI、BclI、BglII、Sau3AI、XhoII都產(chǎn)生GATC4個(gè)堿基的粘性末端。第29頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月2.DNA插入的方向正確(1)用雙酶切由于產(chǎn)生的粘性末端不同,只能以固定方向連接。EcoRIBamHIEcoRIBamHIEcoRIBamHI第30頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月3.插入基因的開(kāi)放閱讀框(ORF)正確(1)DNA定向插入(2)起始密碼尤其當(dāng)載體上有ATG起始密碼的時(shí)候,更要注意。ATGGAATTC載體ATGCGGAATTCT插入片段EcoRIEcoRIATGGAATTCT重組但移碼突變!第31頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月4.防止載體自身環(huán)化連接(1)提高插入片段的用量連接反應(yīng)體系中,插入片段比載體多10倍以上。(2)用堿性磷酸酶處理載體載體切口的5’磷酸被除去,不能自我連接。但可以與插入片段以單鏈連接。5’
3’
載體插入片段第32頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月1.載體自身環(huán)化連接(能存活)2.載體之間互相連接(能存活)3.插入片段互相連接(不能存活)4.一個(gè)載體與幾個(gè)插入片段重組(能存活)五、載體和外源DNA插入片段的連接結(jié)果5.幾個(gè)載體與一個(gè)插入片段重組(能存活)第33頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月17第34頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月1.目的增加受體菌細(xì)胞膜的通透性。第二節(jié)
重組體導(dǎo)入細(xì)菌細(xì)胞一、感受態(tài)大腸桿菌的制備第35頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月使用喪失了限制體系的大腸桿菌。如K12系列的大腸桿菌。2.菌種第36頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月第37頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月用CaCl2處理大腸桿菌,能增加膜的通透性。3.制備原理第38頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月4.制備過(guò)程培養(yǎng)大腸桿菌OD600至0.3-0.4Onice5-10min4℃離心收集菌用冰冷的60mMCaCl2重懸4℃離心收集菌4℃離心收集菌分裝、-70℃凍存(15%甘油)用冰冷的60mMCaCl2重懸Onice30min用冰冷的60mMCaCl2重懸第39頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月二、重組DNA導(dǎo)入大腸桿菌(1)轉(zhuǎn)化(transformation)大腸桿菌捕獲質(zhì)粒DNA的過(guò)程。(2)轉(zhuǎn)染(transfection)大腸桿菌捕獲噬菌體DNA的過(guò)程。1.外源DNA導(dǎo)入細(xì)菌的幾種方法(3)轉(zhuǎn)導(dǎo)(transduction)借助噬菌體把外源DNA導(dǎo)入細(xì)菌的過(guò)程。第40頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月每gDNA轉(zhuǎn)化成功的細(xì)菌克隆數(shù)。3.轉(zhuǎn)化方法
2.轉(zhuǎn)化率簡(jiǎn)單,但轉(zhuǎn)化效率不高(106-108/gDNA)。(1)熱休克法(heatshock)轉(zhuǎn)化效率高(高于109/gDNA)。(2)電轉(zhuǎn)化法第41頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月10ng載體DNA100L感受態(tài)菌Onice混合,靜置10分鐘42oC1分鐘加入1mLLB培養(yǎng)基37℃搖1小時(shí)10-100L轉(zhuǎn)化液涂含抗菌素的平板吸附DNA攝入DNA(1)熱休克法第42頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月LB培養(yǎng)受體菌至OD600=0.5-0.6冰浴15分鐘,2℃離心集菌冰冷的水重懸菌體2℃離心集菌冰冷的水重懸菌體2℃離心收集菌體少量冰冷的水重懸分裝成50-300L
電轉(zhuǎn)儀調(diào)為2.5kV脈沖控制器200-400
0.5g質(zhì)粒DNA
Onice混合加入1mL培養(yǎng)液37℃中速震蕩60分鐘10-100L轉(zhuǎn)化液涂含抗菌素的平板轉(zhuǎn)化(2)電轉(zhuǎn)化法第43頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月4.平板培養(yǎng)基培養(yǎng)細(xì)菌10-100L轉(zhuǎn)化液涂于含抗菌素的平板37℃過(guò)夜第44頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月環(huán)形重組質(zhì)粒質(zhì)粒自我連接線性載體或DNA片段進(jìn)入細(xì)菌會(huì)被降解。環(huán)形質(zhì)粒數(shù)(1)重組質(zhì)粒
5.影響轉(zhuǎn)化率的因素第45頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月①生長(zhǎng)狀態(tài)制備感受態(tài)菌必須使用對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的菌。②必須在冰冷的條件下制備。要充分,使細(xì)菌細(xì)胞膜失去一些蛋白。④儲(chǔ)存感受態(tài)菌要在-70℃以下③CaCl2處理⑤使用感受態(tài)菌時(shí)必須梯度融化融化后一般不能再次凍存使用。(2)感受態(tài)細(xì)胞
(competentcells)第46頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月把重組的噬菌體DNA或Cosmid質(zhì)粒DNA包裝成具有感染能力的噬菌體顆粒。6.體外包裝的噬菌體的轉(zhuǎn)導(dǎo)(1)體外包裝(invitropackaging)
(2)轉(zhuǎn)導(dǎo)(transduction)通過(guò)受體菌細(xì)胞表面的DNA接受器位點(diǎn)(receptorsite),使帶有外源基因的重組體DNA注入受體大腸桿菌進(jìn)行擴(kuò)增。第47頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月cI857基因是個(gè)溫度敏感性阻遏蛋白基因,感染細(xì)菌后,在32℃下培養(yǎng)細(xì)菌時(shí)能夠保持溶源性。但當(dāng)溫度升高到44℃—45℃時(shí),就會(huì)導(dǎo)致cI基因編碼的阻遏蛋白失活,DNA復(fù)制、外殼蛋白合成。便于提取外殼蛋白。(3)cI857基因突變的噬菌體
但由于該噬菌體的S基因上有一個(gè)突變,所以細(xì)菌還不裂解。S和R是控制寄主細(xì)菌發(fā)生溶菌作用的兩個(gè)基因,故稱溶菌基因。第48頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月cI857其它基因溶源狀態(tài)(DNA不轉(zhuǎn)錄、不翻譯)DNA阻遏蛋白活性阻遏蛋白失活44℃—45℃DNA轉(zhuǎn)錄、翻譯合成外殼蛋白32℃第49頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月噬菌體1外殼蛋白基因E發(fā)生了無(wú)義突變,不能合成頭部蛋白,但能合成其它外殼蛋白(尾部蛋白)。在cI857基因突變的噬菌體的基礎(chǔ)上,選擇兩種外殼蛋白的突變型噬菌體。(4)
互補(bǔ)型噬菌體
外殼蛋白基因D發(fā)生了無(wú)義突變,不能合成頭部的包裝識(shí)別蛋白,但能合成其它外殼蛋白(頭部、尾部蛋白)。噬菌體2第50頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月(5)體外包裝過(guò)程
第51頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月體外包裝好的重組噬菌體感染受體菌,使受體菌發(fā)生溶菌,形成噬菌斑。(每gDNA能形成106噬菌斑)。(6)
轉(zhuǎn)導(dǎo)
第52頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月轉(zhuǎn)化率高的菌株;有突變的菌株(與導(dǎo)入的載體基因互補(bǔ));不育的菌株(不會(huì)與其他酵母接合)。第三節(jié)
外源基因?qū)胝婧思?xì)胞一、導(dǎo)入酵母細(xì)胞1.菌株選擇如:ura3-52,trp1-289,leu2-3,leu2-112,his31第53頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月(1)利用原生質(zhì)球進(jìn)行轉(zhuǎn)化2.酵母的轉(zhuǎn)化方法
酵母原生質(zhì)體感受態(tài)酶去壁CaCl2、PEG插入外源基因的酵母載體PEG(聚乙二醇)CaCl2使細(xì)胞膜具有通透性,允許DNA進(jìn)入。轉(zhuǎn)化第54頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月
酵母0.1mol/LLiCl處理插入外源基因的酵母載體感受態(tài)40%PEG4000(2)利用Li+鹽進(jìn)行轉(zhuǎn)化第55頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月葉盤(pán)消毒切取土壤農(nóng)桿菌浸泡看護(hù)培養(yǎng)基愈傷組織分化幼苗二、導(dǎo)入植物細(xì)胞1.葉盤(pán)法(leafdisk)第56頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月植物細(xì)胞原生質(zhì)體纖維素酶和果膠酶DNA混合入電擊緩沖液1-2kV電壓擊愈傷組織幼苗分化2.電擊法(electroporation)第57頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月外源基因選擇標(biāo)記基因電擊通過(guò)膜上的小孔吸入DNADNA進(jìn)入細(xì)胞核選擇穩(wěn)定表達(dá)的細(xì)胞擯棄不表達(dá)或表達(dá)不穩(wěn)定的細(xì)胞第58頁(yè),課件共67頁(yè),創(chuàng)作于2023年2月又稱高速微型子彈射擊法(High-velocitymicroprojectiles)DNA1.2m鎢彈頭吸附特制手槍射擊植物裝入3.基因槍法(genegun)第
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