石蠟切片技術

關于石蠟切片技術切片技術的應用到現(xiàn)在已有一百年多的歷史了。最早應用的只是冰凍切片，隨著冰凍切片的應用和實踐又進一步利用石蠟的硬度，將要檢查的組織塊浸漬并包埋于這種堅實的介質之中，制成了石蠟切片。后來又利用明膠，火棉膠等物質的韌性來包埋組織，制成了明膠切片和火棉膠切片。第2頁,共46頁，2024年2月25日，星期天將各種組織制成非薄的切片標本，需要經過一系列比較繁雜的過程，制作切片的主要過程有：（1）取材（2）固定（3）脫水（4）包埋（5）切片（6）染色（7）封固在這七個主要過程中，又包括著若干步驟。第3頁,共46頁，2024年2月25日，星期天

冰凍切片石蠟切片火棉膠切片

︳↓︳——————————取材———————↓

固定↓↓冰凍———沖水∣↓∣脫水——————∣↓↓∣透明乙醚酒精∣↓↓∣浸蠟膠液滲透∣↓↓∣石蠟包埋火棉膠包埋↓↓↓冰凍切片切片切片↓↓↓染色染色染色↓↓↓封固封固封固第4頁,共46頁，2024年2月25日，星期天第一章組織標本的處理第一節(jié)取材第5頁,共46頁，2024年2月25日，星期天取材是制作切片程序中的首要步驟，取材不當，將直接影響病理診斷和科研工作的效果。組織標本的選用非常重要，不能隨意的切取組織來制作組織切片，否則病理檢驗的結果是不會令人滿意的。第6頁,共46頁，2024年2月25日，星期天

一、取材工具：取材刀具必須鋒利。切取標本不應該擠壓和揉擦，不應使用有鉤鑷子或血管鉗等手術器械鑷取標本，以免損害組織造成人為組織變化，給診斷帶來困難或導致錯診，漏診。第7頁,共46頁，2024年2月25日，星期天二、取材的注意事項：第8頁,共46頁，2024年2月25日，星期天（一）大體標本應選擇病變或可疑病變的組織。必要時選取病變與正常組織交界處。切取標本的原則是求準而不是求量多，所以切取組織宜小不宜大，以不超過20x15mmx3mm為度，過大過厚會影響對標本的固定，另方面也影響切片的制作。特殊目的者應屬例外。

第9頁,共46頁，2024年2月25日，星期天1.了使組織切片的結構清楚，取材要及時，組織塊必須爭取時間及時固定，組織的固定以愈新鮮愈好。2.取材時對大體標本（肉眼標本）繪制圖象，進行仔細描述。包括形狀、大小，硬度，顏色，病灶（或可疑病變）部位等。對所取的組織應定位編號。3.切取各組織塊時，切勿擠壓損傷，對典型或具有教學和科研價值的肉眼標本，不能因取材而對標本造成人為的“病變”。第10頁,共46頁，2024年2月25日，星期天4.取下的組織塊應盡量防止其彎曲扭轉，如胃腸等組織，應先平展于草紙上粘著以后，慢慢地放入固定液中.固定液的量要充足，應為固定組織的10倍。5.組織采取應在正常與病灶交界之處。組織形狀最好為方形或長方形狀，這樣有利于制片。組織厚薄要均勻。第11頁,共46頁，2024年2月25日，星期天6.各組織塊應包括各臟器的重要結構，如腎臟組織包括皮質部分和髓質部分。在有漿膜的臟器（如胃等）組織塊中，要至少有一塊帶有漿膜。7.組織內的鈣化病灶或骨質，應在充分固定之后進行脫鈣。

第12頁,共46頁，2024年2月25日，星期天組織里存有鈣鹽可妨礙用常規(guī)方法制作良好切片。骨組織及鈣化病灶，經過固定后，必先將鈣鹽除去使組織軟化，才能進行常規(guī)切片。如脫鈣不全則切片易撕開或碎裂并損傷切片刀刃。脫去鈣鹽的過程――稱為脫鈣。脫鈣第13頁,共46頁，2024年2月25日，星期天骨組織固定24小時后，鋸下不超過0.5mm厚的薄骨片，再以10%福爾馬林固定后進行脫鈣。（未固定的組織在酸性脫鈣液中受到的損傷比已固定的組織約大三倍）。骨組織過厚則需延長脫鈣時間，長時間浸于強酸影響切片染色效果。在不影響診斷的條件下，應將骨組織周圍的軟組織全部剝去。如果切片目的在于觀察骨髓病變或骨組織腫瘤，最好除去一部分正常的致密的骨組織，以利于脫鈣和制片。脫鈣前最好先將骨組織進行脫脂。脫鈣要徹底，脫水應充分，在脫水過程中，要注意不使其過度硬化。第14頁,共46頁，2024年2月25日，星期天硝酸脫鈣液配方：福爾馬林

5ml

硝酸（比重1.41）7.5－15ml

蒸餾水加至100ml第15頁,共46頁，2024年2月25日，星期天脫鈣步驟取材：骨組織固定于10%福爾馬林24小時后再鋸取厚度約0.5厘米骨片。固定：再以10%福爾馬林固定2天。將組織置于脫鈣劑中，每日更換新鮮液、直至組織軟化為止。流水沖洗24小時（除酸）。進行常規(guī)脫水，透明，浸蠟，切片。第16頁,共46頁，2024年2月25日，星期天8.標本上（組織塊）附著的軟組織如脂肪等，如屬非病變成分，則應在不影響病理診斷的原則下，盡量剝去或切除，以利制片。9.組織塊的固定時間不宜過長或過短，不同的固定液，固定時間有所不同，固定后的組織需要用流水沖洗，再進行脫水制片。10.切取鏡檢組織塊后，可將剩余的組織放入70%灑精中保存，這樣有利于日后再取材切片時的細胞染色。第17頁,共46頁，2024年2月25日，星期天11.組織應平整12.多取包膜13.充分暴露病灶，取材應避免過多的壞死組織或凝血塊，如有手術線結等雜物應拔除。第18頁,共46頁，2024年2月25日，星期天（二）小標本第19頁,共46頁，2024年2月25日，星期天1.微量標本和易碎標本，為避免破損或丟失應以紗布包裹，但包裹前紗布必須浸濕，以免標本粘附紗布上。2.小標本盡量描述標本的數(shù)量3.小標本盡量取盡4.多量的小標本應盡量完全取材，未取完的，余下的可備用。第20頁,共46頁，2024年2月25日，星期天5.粘膜和皮膚組織應于“立埋”6.嚴防擠壓組織。7.內窺鏡鉗取或穿刺取得的小標本，由于體積小，不易識別，可用伊紅等染料染上顏色后包于綢布或吸水紙、擦鏡紙中，以免包埋過程中丟失。第21頁,共46頁，2024年2月25日，星期天三、切取的組織塊的編號、數(shù)量和取材后是否有存留均應記錄四、補取情況應記錄。第22頁,共46頁，2024年2月25日，星期天第二節(jié)組織的固定第23頁,共46頁，2024年2月25日，星期天一、固定的意義概念：固定是指將各種組織浸入防腐劑內，使細胞內的物質為不溶性。固定的作用即是用一種方法將組織盡可能保持在它原來的形態(tài)，且能適于某些研究程序凡是需要制作作病理檢驗標本的各種組織，無論是制作切片標本，還是制作巨體標本，首先必須固定。在制作切片過程中，固定最為重要的步驟，一張優(yōu)秀的組織學切片是建立在適當而完全的固定基礎之上的。固定不良在以后制片的任何階段皆不能補救。因此制片的優(yōu)劣首先取決于最初固定適當與否。第24頁,共46頁，2024年2月25日，星期天重要的是，被固定組織在動物死后或從活體切取后要盡可能立即固定。及時的取材給迅速固定提供了先決條件。如果不迅速固定，造成固定不良，將導致染色不良后果。組織的良好固定，應該是一次性的；某些固定劑還具有助染的作用，可使細胞各部易于著色。固定不良的組織，即使進行補充固定也起不到改善染色的效果。第25頁,共46頁，2024年2月25日，星期天二、固定的目的和效果固定組織的目的是設法得到接近正常生命狀態(tài)的細胞結構，有人說“形態(tài)學的美是良好固定產物”，這說明固定的特殊重要作用。第26頁,共46頁，2024年2月25日，星期天1、抑制自溶和腐?。航M織的固定能保持細胞與生活時的形態(tài)相似。因為當機體生命活動停止、或局部器官、組織割離機體之后，組織細胞的代謝功能即行喪失，新鮮組織如果不經固定，任意放置，由于細胞內酶對蛋白質的分解，以及細胞的孳生等各種因素的作用，則易因細菌繁殖而致組織腐爛。細胞內的蛋白質分解酶將蛋白質分解為氨基酸后脫離細胞而引起組織的自溶。2、保存：細胞經過固定，不但可以防止自溶和細菌性腐敗，而且能沉淀或凝固組織內的各種成份和病理代謝產物，如蛋白質，脂及脂蛋白、脂肪、糖類、色素，其它碳水化合物，無機成份，微生物等都可以經過固定而保存下來，并在制片過程中不為其他試劑溶解破壞。第27頁,共46頁，2024年2月25日，星期天3、硬化：固定劑的硬化作用能使柔軟組織（如腦）的質地變硬而易于操作。4、膠質物體的固化：固定能使細胞正常的半液體狀（溶膠）變?yōu)椴荒苣孓D的固體狀（凝膠）粘度。5、肉眼鑒別：固定可將各種細胞和組織成分的析光率作不同程度的改變，增強組織的析光指數(shù)，這樣能使各種染色成份較之未固定時更容易辨認。第28頁,共46頁，2024年2月25日，星期天6、對染色的影響：某些固定劑尚具有一定的媒染作用而增進染色（如苦味酸對于染色的媒染作用）可使細胞各種部位易于著色，所以組織固定后有利于制片染色和在顯微鏡下的觀察。此外，固定劑有時也會影響染色效果，導致著色效果不理想（如福爾馬林對水溶猩紅染色的影響）。7、滲透和固定：固定還可以使組織和細胞的各種滲透壓不再發(fā)生改變，在制片時就能在最大范圍內保持組織和細胞的原來形態(tài)。第29頁,共46頁，2024年2月25日，星期天三、固定的方法及注意事項：為使組織固定充分，應做到固定容器要合適、固定時間要充足，固定液量要足夠。合適容器固定組織時，應選擇合適的容器、一般容器的容積是組織的10-15倍以上。標本瓶應選擇瓶口較大的為宜，這樣便于固定后的標本經小口瓶硬塞進去，這樣不僅不利于標本易于取出，還可能造成人為擠壓組織而致形態(tài)變化，對大件的標本應按巨檢常規(guī)切片后放于容器固定。第30頁,共46頁，2024年2月25日，星期天充足時間

組織固定的時間要足夠，根據(jù)標本體積大小不同，固定時間應有所不同，組織越大越厚，固定時間應越長，反之。一般4-12小時或更長。在溫箱內將固定液稍加溫，可使固定作用加快而縮短固定時間。足量的固定液固定組織時，應該使用足量的固定液，多比少好，一般應為組織體積的5-10倍，最少也不應于五倍。標本最好懸浮于固定液之中。如標本塊多時，固定時不應重疊。不要先將標本塊放入容器后再注入固定液，以免標本貼付于器皿。第31頁,共46頁，2024年2月25日，星期天標本如不能及時制片，應改換適當?shù)谋４嬉骸Ｔ谂渲苹旌弦簳r，氧化劑不能與還原劑混合，以免引起化學反應，失去固定作用。對于某些需要制作神經染色和酶反應等組織的固定，要求較一般嚴格，組織的大小，固定的時間，溫度的適當都應慎重考慮，尤其是對于酶反應的固定液，一般都要置于冰箱，在低溫的條件下進行固定。固定不好，是得不到滿意的切片和合乎標準的反應效果的。任何固定液對人體都有損害作用，因此固定液的容器必須密閉，以防揮發(fā)損傷器官和眼睛，忌用手與固定劑直接接觸，以免損傷皮膚。第32頁,共46頁，2024年2月25日，星期天四、固定劑的選擇理想的固定劑應該具備下列幾種性能：1、滲透性強：固定劑必須能迅速滲入組織，這樣組織內各種成分才能盡快地被固定在原位置，而不致彌散。2、組織在固定液的作用下，不應發(fā)生顯著的收縮和膨脹現(xiàn)象3、固定劑應該有利組織切片和染色，這其中含有兩種意義；（1）固定劑對固定后的組織應有利于染色劑的染色。例如：重鉻酸鉀對于類脂質具有一定媒染作用（2）固定劑能將組織或細胞中某些必須觀察的成分予充分固定而保存下來，以便染色。例如：酸可以滲入脂類物質使其固定下來而不至在制片過程中為酒精和二甲苯溶解或較少地溶解

4、固定液應該同時也是一種較好的保存液。對標本的固定應根據(jù)組織的制片目的和要求去選擇適當?shù)墓潭▌┑?3頁,共46頁，2024年2月25日，星期天五、固定劑的種類組織制片技術上所使用的固定劑種類繁多，性能各有不同，有的為氧化劑，有的為還原劑；有的呈酸性，有的呈堿性；有的滲透力強，有的滲透力弱；有些易使組織收縮，有些則使組織發(fā)生輕微膨脹現(xiàn)象。一般地說，單一固定劑要想使組織固定后達到某種特殊染色要求是比較困難的。因此，在標本固定中常使用兩種以上成分（固定劑）的混合固定液。第34頁,共46頁，2024年2月25日，星期天單一固定劑

甲醛(H·CHO)

甲醛是一種氣體，約有40%重量溶于水。這是一種還原劑，頗易揮發(fā)，這種飽和溶液稱為甲醛溶液；其商品名叫福爾馬林。10%福爾馬林的組成系甲醛溶液（福爾馬林）10ml

水90ml第35頁,共46頁，2024年2月25日，星期天甲醛是一種使用廣泛、簡便的固定劑，同時又是一種良好別的標本保存液。經它固定的標本，可適應一些特殊染色。它的滲透性較強，固定均勻，能增加組織的韌性，組織收縮輕微，硬性大于酒精。福爾馬林主要是由甲醛的聚合形式構成，然而聚合形式的固定效果低于單體形式構成的10%福爾馬林，為阻止在放置一定時間的重聚作用，一般將溶液的PH值調節(jié)至中性或偏堿性。甲醛與蛋白質是在分子間的交聯(lián)上起反應，最終產生一種不溶性產物。它經過絡合交聯(lián)，使蛋白質固定，能較好地保存脂類；對肝糖也有固定作用，但必須及時固定及時處理，以免產生水解。第36頁,共46頁，2024年2月25日，星期天酒精（C2H5OH）酒精為常用的有機溶劑，高濃度酒精能凝固白蛋白，球蛋白和核蛋白，對肝糖有固定作用，核蛋白和肝糖經酒精固定成水溶性狀態(tài)，因此，經酒精固定的標本如果固定后用水洗滌，則核著色欠佳，肝糖也將被水解。作為一種脂溶劑，濃度在50%以上的酒精可溶解脂肪和類酯體，因此，對脂類的證明，高爾基氏體，線粒體等染色不宜使用酒精作固定劑。酒精還可溶解血紅蛋白和損害多數(shù)其他色素，因此，如果證明組織蛋白的色素時也不宜以酒精作為固定劑第37頁,共46頁，2024年2月25日，星期天濃酒精有較大的收縮力，被它固定的組織收縮顯著，表面發(fā)硬，因而酒精較難滲入到組織中去，組織必須用酒精固定時宜先用80%的酒精固定數(shù)小時，然后再換95%酒精，這樣可以避免組織過度收縮，因此它的穿透力緩慢且與組織長期接觸能使之硬化，如需要證明尿酸結晶和保存糖類，則須用100%酒精固定。酒精既有固定作用，又有脫水作用，經酒精固定的標本不需洗滌，可用較高濃度酒精直接進行脫水，也可暫存于70%酒精中。第38頁,共46頁，2024年2月25日，星期天

(3)乙酸(醋酸、冰醋酸)

是具有刺激氣味的無色液體，可與水、乙醇以各種比例混溶，用于固定的濃度為0.3％～5％。醋酸穿透力強，染色質固定快，一般大小的組織只需固定30~60mi即可，但可使組織膨脹，一般不單獨使用，常與乙醇配制成混合固定液，以抵消乙醇所致的組織收縮和硬化。醋酸可抑制細菌和酶的活性，防止自溶。對糖、脂肪、類脂無固定(保存)作用，但可使核蛋白沉淀，細胞核顯示清晰，是染色體最佳固定液。用醋酸固定的組織不必水洗，可直接移人50％或70％乙醇中。第39頁,共46頁，2024年2月25日，星期天混合固定劑(1)中性甲醛液

具有滲透力強、組織收縮小、染色效果好的特點?？捎米鞒Ｒ?guī)固定液或標本保存液，脂肪染色常用此液固定。中性甲醛液還能保存大多數(shù)抗原物質，提高免疫組化檢測的陽性率，因此，是免疫組化最常用的固定液。固定時間一般為6～24h。此液中甲醛的濃度為6％～8％配方：40％甲醛150～200mL磷酸二氫鈉4g磷酸氫二鈉13g蒸餾水800～850mI第40頁,共46頁，2024年2月25日，星期天(2)乙醇-醋酸-甲醛液(AAF液)AAF液由對組織滲透速度快的乙醇(alcohol，A)、醋酸(aceticacid，A)和甲醛(formalin，F(xiàn))三種固定液混合而成，其特點是固定快速，對脂質、糖類、蛋白質等物質有很好的固定作用，避免了三種固定液單獨使用引起的組織收縮或膨脹，是一種優(yōu)良的混合固定液。AAF液兼有固定和脫水的作用，經過AAF液固定后的組織塊可直接移入95％乙醇進行脫水。配方：95％或無水乙醇85mL

醋酸5mL40％甲醛10mL第41頁,共46頁，2024年2月25日，星期天(3)乙醇-甲醛液(AF液)

由(alcohol，A)和甲醛(formalin，F(xiàn))混合而成，兼有固定及脫水作用，適用于皮下組織中肥大細胞的固定。固定后的組織塊不