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(完整word版)考馬斯亮藍(lán)法測蛋白質(zhì)含量(完整word版)考馬斯亮藍(lán)法測蛋白質(zhì)含量(完整word版)考馬斯亮藍(lán)法測蛋白質(zhì)含量標(biāo)準(zhǔn)曲線制作—考馬斯亮藍(lán)法測蛋白質(zhì)含量標(biāo)準(zhǔn)曲線一般用分光光度法測物質(zhì)的含量,先要制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,然后根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線查出所測物質(zhì)的含量。因此,制作標(biāo)準(zhǔn)曲線是生物檢測分析的一項(xiàng)基本技術(shù)。蛋白質(zhì)含量測定方法凱氏定氮法雙縮脲法Folin—酚試劑法紫外吸收法考馬斯亮藍(lán)法考馬斯亮藍(lán)法測定蛋白質(zhì)含量-標(biāo)準(zhǔn)曲線制作(一)、試劑:考馬斯亮藍(lán)試劑:考馬斯亮藍(lán)G—250100mg溶于50ml95%乙醇,加入100ml85%H3PO4,用蒸餾水稀釋至1000ml,濾紙過濾。最終試劑中含0。01%(W/V)考馬斯亮藍(lán)G—250,4.7%(W/V)乙醇,8.5%(W/V)H3PO4。標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液:純的牛血清血蛋白,預(yù)先經(jīng)微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,根據(jù)其純度同0.15mol/LNaCl配制成100ug/ml蛋白溶液.(二)、器材:1、722S型分光光度計(jì)使用及原理()。2、移液管使用().(三)、標(biāo)準(zhǔn)曲線制作:試管編號0123456100ug/ml標(biāo)準(zhǔn)蛋白(ml)0。00。10.20。30.40.50.60.15mol/LNaCl(ml)10.90。80.70.60。50.4考馬斯亮藍(lán)試劑(ml)5555555搖勻,1h內(nèi)以1號管為空白對照,在595nm處比色A595nm1、2、以A595nm為縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)蛋白含量為橫坐標(biāo)(六個(gè)點(diǎn)為10ug、20ug、30ug、40ug、50ug、60ug),在坐標(biāo)軸上繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。1)、利用標(biāo)準(zhǔn)曲線查出回歸方程。2)、用公式計(jì)算回歸方程。3)、或用origin作圖,測出回歸線性方程。即A595nm=a×X()+6一般相關(guān)系數(shù)應(yīng)過0。999以上,至少2個(gè)9以上。4)、繪圖時(shí)近兩使點(diǎn)在一條直線上,在直線上的點(diǎn)應(yīng)該在直線兩側(cè).(四)、蛋白質(zhì)含量的測定:樣品即所測蛋白質(zhì)含量樣品(含量應(yīng)處理在所測范圍內(nèi)),依照操作步驟1操作,測出樣品的A595nm,然后利用標(biāo)準(zhǔn)曲線或回歸方程求出樣品蛋白質(zhì)含量。一般被測樣品的A595nm值在0。1—0.05之間,所以上述樣品如果A595nm值太大,可以稀釋后再測A595nm值,然后再計(jì)算。(五)、注意事項(xiàng):玻璃儀器要洗滌干凈。取量要準(zhǔn)確。玻璃儀器要干燥,避免溫度變化.對照:用被測物質(zhì)以外的物質(zhì)作空白對照。藥品的配制(磷酸緩沖液的配制)一、藥品的配制步驟(一)、實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備:準(zhǔn)備所需的藥品和玻璃儀器。洗滌。(怎樣洗滌算干凈?)(二)、計(jì)算:1、百分比濃度計(jì)算:1)、G/V比例如配1%NaCl,稱1gNaCl溶于100ml水。2)、V/V比:例如配75%乙醇100ml,75%×100%=100%×X,X=75ml。取75ml無水乙醇,加25ml蒸餾水。乙醇:乙醚:丙酮=2:1:2配500ml,各取200ml,100ml,200ml混合.3)G/V比:用的較少,如計(jì)算灰分中某種元素如Fe的含量。2、摩爾濃度計(jì)算:注:藥品的分子量一般在標(biāo)簽中注明。1)、0.1M或0.1mol/LNaCl配100ml。M=質(zhì)量/體積(L)稱取NaCl0。1×0.1×40=0.4g摩爾數(shù)=G(g)/摩爾質(zhì)量2)、0.1mMNaCl配100mlmM=毫摩爾數(shù)/體積(L)稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4g毫摩爾數(shù)=G(mg)/摩爾質(zhì)量3)、0.1uNaCl配100mlmM=微摩爾數(shù)/體積(L)稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4mg微摩爾數(shù)=G(ug)/摩爾質(zhì)量稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4ug混合溶液配制的計(jì)算:如配3uMEDTA,2。25mMNBT以及60uM溶液100ml,用50mM磷酸緩沖液配制。注意:1、分別標(biāo)定體積計(jì)算2、分別配制再混合,但總體積不能為100ml(三)、標(biāo)量:根據(jù)需要選擇不同量程的天平根據(jù)要求去不同精度的測量器,如量筒或移液管。電子分析天平的使用。(四)、溶解:根據(jù)藥品配置要求選擇溶劑.蒸餾水,雙蒸水,無離子水等。只能用燒杯溶解。注意加入溶劑只能加入總體積的2/3左右,剩余溶劑洗滌燒杯三次左右,直到洗滌干凈。小常識:藥品標(biāo)簽中一般標(biāo)識有藥品的溶解性能和分子式,可根據(jù)分子式和所學(xué)的常識判斷藥品的結(jié)構(gòu)和性質(zhì)特點(diǎn)(包括溶解性質(zhì))。如酸堿兩性物質(zhì)的配制(AA、蛋白質(zhì)、核苷酸等)如果溶解性能不好可以用稀酸或稀堿促進(jìn)溶解,但pH應(yīng)在被要求的范圍內(nèi)。加熱促進(jìn)溶解,但注意應(yīng)在配制的范圍內(nèi)有的藥品還需水溶加熱較好。如:配0。1%的淀粉,水裕加熱(溫度在80—90。C),過量會糊化。(五)、定容:用容量瓶定容;用玻璃棒引流或用小漏斗;用溶劑加入到接近刻度,然后用滴管加入到刻度。要求刻度與液體凹面相切為止(眼睛可視);上下窯洞容量瓶幾次,混合均勻即可.(注意不再定容了,防止溶液漏掉。)(六)、裝入試劑瓶,貼上標(biāo)簽。標(biāo)簽應(yīng)注明以下內(nèi)容:藥品濃度、名稱、配制人、配制日期等。(七)、清理實(shí)驗(yàn)場所.二、磷酸緩沖液的配制。(一)、配制0。2mol/L即0。2MpH=6.8的磷酸緩沖液。用磷酸氫二鈉—磷酸二氫鈉做緩沖液。選用藥品:Na2HPO4·12H2O(堿)和NaH2PO4·12H2O(酸)配緩沖液100ml.書中說明。(二)、計(jì)算:注:書中有注明配置的量.計(jì)算:Na2HPO4·12H2O稱取71.64×0.1=7.164gNaH2PO4·12H2O稱取31.21×0.1=3.121g含有不同結(jié)晶水的換算.書中配1/15mol/L的緩沖液配1L,書中用Na2HPO4·2H2O需要11。87g/L但用Na2HPO4·12H2O需多少g?11。87=(178/358)×X,X=23。87g。(三)、分別配制緩沖液各100ml(根據(jù)需要確定配制的量).即:0.2MNa2HPO4·2H2O和NaH2PO4·2H2O100ml。(四)、按書中的量配制取量再混合。如:pH=6。8,分別去緩沖對49ml和51ml。(五)、用pH試紙ceni

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