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文檔簡介

實驗三 血清蛋白醋酸纖維素薄膜電泳,主講:姜婧怡 生物化學教研室,實驗目的:,掌握電泳的基本原理,加深對蛋白質(zhì)兩性解離性質(zhì)的理解。 掌握血清醋酸纖維薄膜電泳分離血清蛋白質(zhì)的基本操作。,實 驗 原 理,電泳技術(shù)(Electrophoresis),電泳的概念:帶電物質(zhì)在電場中向相反電極移動的現(xiàn)象稱為電泳.,背景:電泳現(xiàn)象早在十九世紀初就已發(fā)現(xiàn)(1808年俄國物理學家Ress進行了世界上第一次電泳實驗)。但電泳技術(shù)的廣泛應用,則是在1937年用濾紙作為支持介質(zhì)成功地進行紙電泳以后,是近幾十年以來,電泳技術(shù)發(fā)展很快,各種類型的電泳技術(shù)相繼誕生,在生物化學、醫(yī)學、免疫學等領(lǐng)域得到了廣泛應用。,為了克服溶液對電泳離子的影響,一般在電泳體系中加入不流動的固體支持物。 (一)按支持物的物理性狀不同,可分為: 1濾紙及其它纖維(如玻璃纖維、聚氯乙烯纖維薄膜、醋酸纖維)電泳 2粉末電泳:如纖維素粉、淀粉電泳; 3凝膠電泳:如瓊脂、瓊脂糖、聚丙烯酰胺凝膠電泳; 4絲線電泳:尼龍絲、人造絲電泳。,電泳的分類,(二)按支持物的裝置形式不同,可分為:,1平板式電泳:支持物水平放置;,2垂直板式電泳:聚丙烯酰胺凝膠可做成垂直板式電泳;,3垂直柱式電泳:聚丙烯酰胺盤狀電泳,(三)按pH 的連續(xù)性不同,區(qū)帶電泳可分為: 1連續(xù)pH 電泳:即整個電泳過程pH 保持不變,如常用的紙電泳、醋酸纖維薄膜電泳等。 2非連續(xù)pH 電泳:緩沖液和電泳支持物間有不同的pH 的電泳,如聚丙烯酰胺凝膠盤狀電脈,等電聚焦電泳等。,電泳速度:帶電粒子在電場中運動時,單位電場強度內(nèi)粒子運動的速度,以u表示,即,V粒子運動的速度 X電場強度 Q粒子所帶電荷 r粒子的半徑 介質(zhì)的粘度,影響電泳速度的主要因素,1.樣品本身: 分子帶電量:Q越多,u越大; 分子大小: 分子小,r越小,u越大; 分子形狀:形狀越小,與支持物介質(zhì)摩擦 越小,u越大。 形狀越規(guī)則,u越大, 反之則越 小。 球形分子 纖維狀分子,2.緩沖溶液:,A.pH值:(pH-pI)越大,Q越多,u越大,B.離子強度(I): 離子強度代表所有類型的離子所產(chǎn)生的靜電力,也就是全部的離子效應,它取決于離子電荷的總數(shù),而與溶液中鹽類的性質(zhì)無關(guān)。溶液的離子強度越高,帶電質(zhì)點的泳動速度越慢;離子強度越低,質(zhì)點泳動的速度越快。,一般離子強度的選擇范圍在0.020.2之間。,3.電場強度(X):,電場強度:電泳支持物上每厘米的電位降,也稱電勢梯度。,X越大,u越快。 支持物越短, X越大, u越快。,注意:電場強度越大或支持物越短,電流將隨之增加,產(chǎn)熱也增加,影響分離效果。 在進行高壓電泳的時候必須用冷卻裝置,否則可引起蛋白質(zhì)等樣品發(fā)生熱變性而無法分離。,電泳緩沖液相對于固體支持物的移動稱電滲。如紙電泳時,濾紙吸附OH-帶負電荷,與紙接觸的緩沖液帶正電荷向負極移動,會對顆粒的移動造成不良影響,故電泳時,電滲小些為好。,4電滲現(xiàn)象,醋酸纖維薄膜電泳,醋酸纖維是纖維素的醋酸酯,由纖維素的羥基經(jīng) 乙?;?。涂抹成均勻的薄膜則成為醋酸纖維素薄膜。該膜具有均一的泡沫狀的結(jié)構(gòu),有強滲透性,厚度約為120微米。 醋酸纖維素薄膜電泳有以下優(yōu)點: 微量、快速、簡便、分辨力高、 對樣品無拖尾和吸附現(xiàn)象,實驗原理,以蛋白質(zhì)為例:,pHpI pH=pI pHpI,H,H,OH,OH,蛋白質(zhì)兼性離子,蛋白質(zhì)陽離子,蛋白質(zhì)陰離子,(等電點),實驗原理,以蛋白質(zhì)為例:,實驗原理,人血清中幾種主要蛋白組分,緩沖液pH=8.6,pHpI,血清蛋白帶負電荷,在電場中向正極移動。,經(jīng)醋酸纖維素薄膜電泳可將血清蛋白按電泳速度分為5條區(qū)帶,染色和定量,膜條經(jīng)過氨基黑10B染色后顯出清晰色帶。,各色帶蛋白質(zhì)含量與染料結(jié)合量基本成正比。,可將各色帶剪開,分別溶于堿性溶液中。,用分光光度法計算各種蛋白質(zhì)的百分數(shù)。,實驗步驟:,1準備與點樣:,取一條2.58cm的膜條,充分浸透在巴比妥緩沖液中,取出膜條,濾紙吸去多余的緩沖液,無光面距一端1.5cm處作點樣線,點樣器下端粘上薄層血清,垂 直 點 樣,(注意:在薄膜負極端寫好學號或者做好標記),2電泳,放 置 膜 條,點樣端置于陰極,點樣面向下,膜條貼 緊濾紙,拉直膜條,平衡10 分鐘,通 電,電壓:160v,時間:50 min,關(guān)閉 電源,3染色、脫色,通電 完畢,取出 膜條,浸于染色液(氨基黑10B)中,3min,取出 膜條,依次浸于漂洗液、,各5min,直至 漂凈,濾紙吸 干薄膜,.定量 (兩人的膜條共用),取試管6支,編號16,充分振蕩、脫凈染料,比 色、定 量,15min,實驗結(jié)果:,原始數(shù)據(jù):,各樣品吸光度值,儀器型號: 吸收波長:,650nm,光密度總和 T2A12,1計算出各部分蛋白質(zhì)占總蛋白質(zhì)的百分數(shù)。 清蛋白(2A / T)100 1球蛋白( 1 / T)100 2球蛋白( 2 / T)100 球蛋白(/ T)100 球蛋白(/ T)100,2計算出清蛋白與球蛋白之比值(2A/G) G=12,血清蛋白電泳結(jié)果的臨床意義:,臨床上還可用A/G比來表示清球蛋白的量的關(guān)系: 正常人A/G1.52.5,注意事項:,1、點樣時,應將薄膜表面多余的緩沖液用濾紙吸去,吸水量以不干不濕為宜。 2、點樣時,動作要輕、穩(wěn),用力不能太大,以免損壞膜 片或印出凹陷影響電泳區(qū)帶分離效果。 3、點樣應點在薄膜的毛面上,點樣量要適量,不宜過多或過少。,4、電泳時應將薄膜的點樣端置于電泳槽的負極端,且點樣面向下。 5、應控制染色時間。時間長,薄膜底色不易脫去;時間太短,著色不易區(qū)分,或造成條帶染色不均勻。,下次實驗: 血清-球蛋白的提純,預習要點: 1.鹽析、凝膠層析、透析法分離純化蛋白 質(zhì)的基本原理及操作 2.蛋白質(zhì)定性檢測的方法。 3.離心機的原理及操作。,后面內(nèi)容直接刪除就行 資料可以編輯修改使用 資料可以編輯修改使用 資料僅供參考,實際情況實際分析,主要經(jīng)營:課件設(shè)計,文檔制作,網(wǎng)絡(luò)軟件設(shè)計、圖文設(shè)計制作、發(fā)布廣告等 秉著以優(yōu)質(zhì)的服務對待每一位客戶,做到讓客戶滿意! 致力于數(shù)據(jù)挖掘,合同簡歷、論文寫作、PPT設(shè)計、計劃書、策劃案、學習課件、各類模板等方方面面,打造全網(wǎng)一站式需求,感謝您的觀看

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