《藥理學實驗課》PPT課件

藥理學實驗課 藥理教研室 藥學專業(yè)實驗課程安排 1 實驗基本技能 2 不同給藥途徑對藥物的影響 4 藥物對家兔離體腸平滑肌的作用 5 嗎啡鎮(zhèn)痛實驗 3 藥物抗炎實驗 足腫脹法 耳片法 熱板法 扭體法 臨床醫(yī)學 本 實驗課程 1 實驗基本技能 2 不同給藥途徑對藥物的影響 5 藥物對家兔離體腸平滑肌的作用 7 藥物對腸推進實驗的影響 4 嗎啡鎮(zhèn)痛實驗 3 藥物抗炎實驗 8 藥物對家兔心電圖的影響 6 藥物對家兔動脈血壓的影響 實驗課程學習要求 實驗課程學習目的 藥理學實驗一 基本實驗操作看短片 實驗報告 標題實驗目的 實驗原理 實驗器材 實驗方法 結果 討論 結論 二 不同給藥途徑對藥物的影響 實驗目的 掌握小鼠給藥的基本方法 比較不同給藥途徑藥物起效的時間快慢實驗原理 不同的給藥途徑藥物吸收不同 1 實驗動物 小鼠實驗器材 0 4 戊巴比妥鈉 1ml注射器 1ml灌胃器 2 取6只小鼠 稱重 分組 標記給0 4 戊巴比妥鈉 腹腔 皮下 灌胃 0 1ml 10g 觀察小鼠翻正反射消失及恢復的時間分析 比較實驗結果 計時 1 注意給藥途徑的正確操作 2 注意小鼠翻正反射消失時間判定 1min 4 仔細觀察記錄實驗結果 結合藥理學總論知識思考 何種給藥途徑起效最快 為什么 藥理學實驗二 抗炎實驗1 大鼠足腫脹法2 小鼠耳片法 1 大鼠足腫脹法 1 1實驗目的 學習利用雞蛋清制急性炎癥動物模型方法 觀察糖皮質激素的抗炎作用 1 2實驗原理 雞蛋清為異性蛋白 可致動物急性炎癥 出現(xiàn)局部腫脹 容積增加 比較給藥組與對照組動物局部容積的變化 從而觀察到藥物的抗炎作用 1 和 實驗動物 大鼠 雄性 實驗藥物 0 5 氫化可的松 10 雞蛋清 生理鹽水主要儀器 PV 200足趾腫脹測定儀 大鼠兩只 稱重 標記 甲 乙二鼠右踝關節(jié)的突起點處用筆劃線作為測量標志 測定大鼠正常足容積 見后圖 動物 給藥30min 從右后足掌心向掌跖關節(jié)方向進針 皮下注射10 新鮮蛋清0 1ml 見后圖 注射蛋清后15min 30min 45min 測量右后足的體積 記錄數(shù)據(jù) 計算腫脹率 藥后 藥前體積 藥前體積 100 甲 給藥組 腹腔注射0 5 氫化可的松溶液0 3ml 100g體重乙 對照組 腹腔注射生理鹽水0 3ml 100g體重 計時 皮下注射新鮮蛋清 抗炎實驗中動物性別的選擇 雄性測定大鼠足體積時 選定統(tǒng)一測量位置 大鼠足外踝關節(jié)突起 注意測量時別把鼠足插得過深 避免測量杯中水溢出 影響準確性 大鼠捉拿時別捉得過緊 避免其窒息死亡 雞蛋清現(xiàn)配現(xiàn)用 2 小鼠耳片法 2 1實驗目的 學習利用化學藥物刺激制急性炎癥動物模型方法 觀察糖皮質激素的抗炎作用 2 2實驗原理 化學刺激物 可致動物急性炎癥 出現(xiàn)局部腫脹 重量改變 比較給予藥物前后動物局部腫脹程度的變化從而觀察到藥物的抗炎作用 和 實驗動物 小鼠 雄性 實驗藥物 0 1 地塞米松 二甲苯 生理鹽水主要儀器 分析天平 打孔器 手術剪等 小鼠4只 稱重 標記 四只分二組 30min后用二甲苯0 05ml均勻涂抹每只鼠的右耳 涂抹45min后小鼠脫臼處死 分別用打孔器取相同部位左右耳片 電子天平稱重 計算 右耳 左耳 腫脹度 腫脹率 右耳 左耳 左耳 100 給藥組 腹腔注射0 1 地塞米松0 1ml 10g體重對照組 腹腔注射生理鹽水0 1ml 10g體重 計時 抗炎實驗中動物性別的選擇 雄性小鼠耳廓滴加二甲苯時 正反面均勻涂抹 避免滴入耳廓內 小鼠左右耳打耳片位置統(tǒng)一 耳廓中間部位 使用打孔器注意 1 安全 2 別打硬物 注意時間合理分配 4 本實驗中選擇雄性動物的原因 藥理學實驗四 藥物對家兔離體腸平滑肌的作用 藥物對家兔離體腸平滑肌的作用 浴槽實驗前準備 預熱 1 領取器材 2 浴槽內加水 3 測定筒內加液 4 接通電源 5 按壓溫度調節(jié)旋鈕 6 調溫為37 1 1實驗目的 學習離體平滑肌器官的實驗方法 觀察擬膽堿藥和抗膽堿藥對離體家兔腸平滑肌的作用 1 2實驗原理 乙酰膽堿通過激動M受體興奮胃腸平滑肌 阿托平可阻斷M受體 氯化鋇直接興奮胃腸平滑肌 1 和 實驗動物 家兔實驗藥物 乙酰膽堿溶液 1 10萬 0 1 硫酸阿托品溶液 1 氯化鋇溶液實驗試劑 臺氏液主要儀器 離體平滑肌槽 浴槽 在浴槽 大試管 中 加入臺氏液70ml 標線處 加熱 維持水37 0 5 3 3 斜角在上 取家兔一只 頸椎脫臼處死 立即打開腹腔 找到幽門部 分離十二指腸 以2cm左右穿線 分段結扎 剪取腸段 一只兔取三段 每組取一腸段 在上下結扎線內側邊緣各剪一小口 腸段貫通 3 將腸段 一端連結通氣鉤 置測定管 麥氏浴槽 中 另一端連結張力換能器彈簧片上 上下調節(jié)雙凹夾 控制張力的大小 3 打開氣量調節(jié)旋鈕 讓氣泡緩慢通入 1 2個氣泡 秒即可 打開電腦 點擊桌面中BL 420圖標 進入主菜單 點擊工具欄上的 實驗項目 消化道實驗 消化道平滑肌生理特性 2 雙擊 正常曲線 乙酰膽堿 阿托品 乙酰膽堿 1 腸管穩(wěn)定10分鐘 記錄一段正?；顒忧€ 2 加入1 10萬乙酰膽堿溶液0 2ml 記錄其收縮幅度 待收縮明顯后 3 立即加入0 05 硫酸阿托品0 2ml 觀察結果 4 平滑肌收縮曲線穩(wěn)定后 再次加入1 10萬乙酰膽堿溶液0 2ml 結果與 1 相比較 觀察結果有何不同 3 5 加入1 氯化鋇溶液0 2ml 觀察實驗結果 3 6 待作用明顯后 加入0 05 硫酸阿托品溶液0 2ml 再次觀察結果 反演窗口及剪輯 1拖 2點擊 剪輯板 同時復制 沖洗和分離腸管時動作應輕柔 盡量避免牽拉腸管 如需換液 臺氏液液面高度及溫度應與以前保持一致 加藥時不要把藥液直接加到標本上 以免影響結果 浴溫和腸肌的張力均可影響實驗結果 應注意調節(jié) 4 實驗中能影響離體腸肌收縮活性的必要條件有哪些 藥理學實驗三 嗎啡鎮(zhèn)痛實驗 實驗目的 掌握鎮(zhèn)痛藥的實驗方法 熱板法 扭體法 觀察藥物的鎮(zhèn)痛作用實驗原理 熱刺激或者化學刺激物使小鼠產生不同的疼痛反應 觀察給藥前后小鼠疼痛反應的變化 痛閾值 扭體次數(shù) 1 實驗動物 小鼠 熱板法中小鼠為雌性 實驗藥物 0 1 嗎啡實驗試劑 0 1酒石酸銻鉀 或0 7 冰醋酸 生理鹽水主要儀器 熱板測痛儀 RB 200智能熱板儀 2 打開實驗儀器 設定溫度 55 動物初篩 選出四只 稱重 合格動物分二組 測定藥前痛閾值 給藥組 腹腔注射0 1 嗎啡0 1ml 10g體重對照組 腹腔注射生理鹽水0 1ml 10g體重 給藥后15min 30min 45min再次測定各組小鼠痛閾值1次 實驗數(shù)據(jù)記錄 整理 分析 二組 痛閾值 即小鼠出現(xiàn)疼痛反應的時間 以小鼠添后足作為出現(xiàn)疼痛觀察指標 篩選指標 以痛閾值大于5秒 小于30秒 做為篩選合格動物 藥前痛閾值 測定2次痛閾值 2次間隔時間5min 取平均值 為給藥前正常痛閾值 返回 嗎啡熱板法鎮(zhèn)痛結果 用藥后平均痛閾值 用藥前平均痛閾值用藥前平均痛閾值組別劑量 mg kg 動物數(shù)藥前痛閾值 s 藥后痛閾值 s 藥后痛閾值提高百分率 15min30min45min15min30min45min生理鹽水組0 1ml 10g20 1 嗎啡組0 1ml 10g2 痛閾值提高百分率 100 b 四只小鼠隨機分二組 給藥組 腹腔注射0 1 嗎啡0 1ml 10g體重對照組 腹腔注射生理鹽水0 1ml 10g體重 各組小鼠均腹腔注射0 7 冰醋酸 0 1 酒石酸銻鉀 0 2ml 只 記錄各組小鼠潛伏期 15min內的扭體次數(shù) 小鼠扭體反應 給藥 出現(xiàn)扭體時間 30min后 嗎啡對小鼠的鎮(zhèn)痛作用 扭體法 注 疼痛潛伏期超過15mim 以15mim 900s 計 熱板儀溫度設定 55 0 5 室溫 以15 20 C為宜熱板法中動物性別的選擇 雌性痛閾值判定指標 添后足初篩 5s 痛閾值時間 30s 超過60s動物未添足 將動物取出 痛閾值以60s計算實驗中保持小鼠足底及熱板內干凈 干燥 熱板儀測量中注意 及時蓋鼠盒蓋 避免溫度散失 扭體法實驗中觀察 潛伏期 以注射刺激物到出現(xiàn)疼痛反應 開始腹部凹陷或扭體 計時 扭體次數(shù) 只數(shù)扭體反應的次數(shù) 酒石酸銻鉀 冰醋酸現(xiàn)用現(xiàn)配 4 藥理學實驗八 藥物對家兔動脈血壓的影響 1 1實驗目的 學習麻醉動物急性血壓實驗的方法 觀察傳出神經藥物對動物血壓的影響 1 2實驗原理 鹽酸腎上腺素溶液 酚妥拉明溶液等藥物能與心肌或者血管平滑肌上的相應受體結合 從而影響家兔的血壓 1 和 實驗動物 家兔實驗藥物 肝素生理鹽水液 500ml生理鹽水加肝素12ml 1 5 戊巴比妥鈉溶液 0 01 腎上腺素溶液 0 1 酚妥拉明溶液 和 主要儀器 壓力換能器1臺 BL 420生物機能實驗系統(tǒng)1套 手術刀1把 手術剪1把 止血鉗2把 眼科剪1把 三通2個 氣管插管1個 動脈插管 留置針 1根 動脈夾1個 輸液針1根 20ml注射器1個 5ml注射器1個 1ml注射器3個 燒杯1個 紗布1塊 絲線等 家兔稱重 找到耳緣靜脈 用輸液針 耳緣靜脈注射1 5 戊巴比妥鈉2ml kg 麻醉 固定輸液針 建立靜脈輸液通道 注入適量肝素生理鹽水液 沖洗管道并防凝血 將動物背位固定于手術臺上 剪去頸部的毛 頸正中切口 分離氣管 作一倒 T 形切口 插入氣管插管 結扎固定 據(jù)情況可免 3 分離氣管氣管插管 留置針管與壓力換能器相連 充滿肝素生理鹽水 并連接在生物信號采集系統(tǒng)一通道上 在氣管一側的頸動脈鞘內分離頸總動脈 注意有迷走神經伴行 應將其與頸總動脈分離 頸總動脈近心 遠心端各穿一根線 遠心端結扎 然后用動脈夾夾住近心端 在靠近遠心結扎處 向心方向 剪一V字型口 插入充滿肝素生理鹽水液動脈插管 結扎近心端 固定于動脈插管小叉上 慢慢松開頸總動脈夾 描記正常血壓曲線 3 在氣管一側的頸動脈鞘內分離頸總動脈 進行頸總動脈插管 分離得到頸總動脈 頸總動脈插管 連接壓力換能器后 打開電腦 點擊桌面上的BL 420圖標 進入血壓實驗系統(tǒng) 3 描記正常血壓曲線靜脈注射0 01 腎上腺素0 15ml kg 描記血壓曲線 恢復正常后 靜脈注射0 1 酚妥拉明 0 15ml kg 描記血壓曲線 恢復正常后 再次靜脈注射0 01 腎上腺素0 15ml kg 描記血壓曲線 注 每次注射藥物后都需推注適量肝素生理鹽水液沖洗 作用于 受體的藥物 3 建立靜脈通道時 輸液針一定要固定好 防止動物掙扎時滑脫 每次給藥后都藥用適量肝素生理鹽水液沖洗 隨時注意插管位置 特別在掙扎時 避免扭轉而阻塞血流或刺破血管 兩次給藥之間須等待血壓恢復正常 4 3 先加入酚妥拉明再加入腎上腺素 血壓的變化情況與第一次加入腎上腺素有何變化 為什么 五 傳出神經系統(tǒng)藥物對小鼠胃腸推進實驗的影響 實驗目的 掌握小鼠胃腸推進實驗基本方法 比較擬膽堿藥 抗膽堿藥的作用 實驗原理 胃腸興奮 蠕動增強 小腸中的碳墨運行長 反之運行短 1 實驗動物 小鼠 各半 實驗藥品 器材 0 05 阿托品 0 001 新斯的明 10 活性炭混懸液 生理鹽水 1ml注射器3支 灌胃針1支 直尺1把 手術剪1把 培養(yǎng)皿1個 苦味酸及棉簽 2 取6只小鼠 各半 稱重 標記 分三組甲組 ip0 05 阿托品0 2ml 只乙組 ip0 001 新斯的明0 2ml 只丙組 ip生理鹽水0 2ml 只灌胃10 活性炭懸液0 2ml 只處死動物 打開腹腔 取出小腸測量小腸全長和碳末運行距離 10min后 15min后 幽門 碳末運行率 幽門至遠端碳末處距離 小腸全長 100 結果 1 碳末灌胃量 小鼠處死時間必須準確 2 取出小腸后 先用水浸濕 平鋪在桌上可免與臺面粘連 3 剪取腸道時必須避免強行牽拉 否則將影響長度的準確性 藥理學實驗 六 利多卡因抗氯化鋇誘發(fā)家兔心律失常 1 1實驗目的 家兔心電圖 導聯(lián)的實驗方法 觀察利多卡因的抗心律失常作用 1 2實驗原理 氯化鋇具有加速鈉離子內流的作用 自律性 引起心律失常 利多卡因抑制鈉離子內流 自律性 抗心律失常 1 和 實驗動物 家兔 體重2 3kg實驗藥物 20 烏拉坦 0 2 利多卡因 0 5 氯化鋇 150U ml肝素生理鹽水 主要儀器 電腦 BL 420E生物機能實驗系統(tǒng) 三心線 三通1個 輸液針1根 5ml注射器2支 20ml10ml注射器各1支 膠布 1 取家兔1只 稱重 用輸液針經耳緣靜脈注射20 烏拉坦6ml kg 并推注適量肝素生理鹽水液 麻醉 固定在兔板上 3 2 用三線心電連線 分別在右前肢 白色 左后肢 紅色 右后肢 黑色 皮下插入針形電極 肢體 導聯(lián) 3 在1通道插口連接計算機 并開機 選擇輸入信號 通道1 動物心電 G 1000T 0 1SF 300HZ 4 描記正常心電圖 作藥物 利多卡因 的準備 4 5 由靜脈注射0 5 氯化鋇0 5ml kg 立即描記心電圖 心律失常出現(xiàn)后 立即靜脈注射0 2 利多卡因1ml kg 描記心電圖的變化 記錄 分析結果 5 附 常見心電圖表現(xiàn) 1 正常竇性心律 2 陣發(fā)性室性心動過速 3 扭轉性室性心動過速 4 房室完全傳導阻滯 5 心室撲動與心室顫動 1 每次給藥后 用適量肝素生理鹽水液沖洗 并防凝血堵塞針頭 2 針形電極不能插入肌肉 否則肌電干擾 6 九 藥物對動物自發(fā)活動的影響 目的 1 觀察安定對小白鼠自發(fā)活動的影響 2 掌握小白鼠自發(fā)活動的實驗方法 材料 1 同性別小白鼠4只2 1ml注射器2支3 ZZ 6小白鼠自發(fā)活動測試儀1臺4 藥品 0 05 安定 生理鹽水 苦味酸溶液 ZZ 6小白鼠自發(fā)活動測試儀 測試儀使用 方法 1 取同性別 活動度相近小鼠4只 稱重 編號 分成甲乙2組 2 分別放入自發(fā)活動測試儀反應箱的4個格內 使其適應5min 按 定時 按鈕 設為5min 按 啟動 按鈕 測試給藥前正常小鼠5min內活動值 3 取出小鼠 甲組 ip0 05 安定0 2ml 10g 乙組 ip等量生理鹽水 4 再放回自發(fā)活動測試儀反應箱格內 同樣方法每隔5min一次 測試5min內活動次數(shù) 連續(xù)觀察5次 5 記錄結果 注意事項 1 測試過程中保持安靜 別震動臺面 2 各組測試中記住每次的數(shù)據(jù) 3 統(tǒng)計數(shù)據(jù)時 可以算出減少或增加的百分率 4 實驗完成后 打掃衛(wèi)生的同學 將測試儀的反應箱取出 洗凈 擦干 放回機內 5 實驗環(huán)境要求安靜 有條件可在隔音室內進行 6 動物活動與飲食條件 晝夜及生活環(huán)境等有密切關系 觀察自發(fā)活動最好各方面條件相近 7 動物宜事先禁食12小時 以增加覓食活動 十 動物鹽酸腎上腺素半數(shù)致死量 LD50 測定 寇氏改良法 實驗目的 通過實驗 學習測定藥物LD50的方法 步驟和計算方法 實驗原理 藥物的致死量的對數(shù)值在50 致死量的上下形成正態(tài)分布 因此通過藥物的對數(shù)劑量 動物的死亡率可求出LD50 從而反應藥物的安全性 實驗材料 動物 小鼠藥品 0 1 鹽酸腎上腺素器材 注射器 天平 量筒 刻度吸管 實驗內容 1 預試驗 以一個實驗小組為單位完成 約10只小鼠 1 劑量范圍 找出0 和100 死亡率的劑量范圍 全死量Dmax 30 內 每次取2只小鼠 用0 1 腎上腺素腹腔注射 全死參考劑量0 14ml 10g 如全死 劑量減小1 2倍直到不全死 則上一劑量為Dmax 如非全死 劑量增加1 2倍直到全死 此劑量為Dmax 全活量Dmin 30 內 每次取2只小鼠 用0 1 腎上腺素腹腔注射 全活參考劑量0 05ml 10g 如全活 劑量增加1 2倍直到非全活 則上一劑量為Dmin 如非全活 劑量減小1 2倍 直到全活 此劑量為Dmin 取本實驗室6個組的全死量 全活量的平均值為最后值 實驗內容 確定公比 公比 Dmax 最大劑量 Dmin 最小劑量 n 動物組數(shù) 6 Dmax Dmin 1 n 1 配制等比稀釋液 C母液 Dmax 藥的容積數(shù) ml 按公比 逐級稀釋成n組 6 實驗內容 2 正式試驗 以實驗室為單位 每小組完成一個劑量組 每組取小鼠10只 各半 腹腔注射腎上腺素各稀釋液 藥的容積數(shù) ml 10g 記錄30分鐘內小鼠死亡數(shù) 完成后 各實驗室統(tǒng)計全實驗室各組的數(shù)據(jù)繪表 按公式計算 LD50的計算 LD50 P 用小數(shù)表示的死亡率 Xm 最大劑量對數(shù)值 相鄰兩組劑量對數(shù)值之差 P 各組動物死亡率之和 LD50的標準誤Sx50 n 為每組動物數(shù) LD50的95 可信限 LD50 4 5LD50 Sx50 修正計算 當最小劑量組的死亡率大于0 而又小于30 或最大劑量組的死亡率小于100 而又大于70 時 可按下列校正公式計算 式中Pm 最大劑量組的死亡率 Pn 最小劑量組的死亡率 LD50的標準誤Sx50 n 為每組動物數(shù) LD50的95 可信限 LD50 4 5LD50 Sx50 perfusionoffrog sheart 十一 強心苷對離體蛙心活動的影響 實驗目的 1 學習離體蛙心的灌流方法 2 觀察強心苷對離體蛙心的作用 實驗原理 青蛙的心臟離體后 把含有任氏液的蛙心套管插入心室 用這種人工灌流的方法保持心臟新陳代謝的順利進行 以維持蛙心有節(jié)律地收縮和舒張 通過生物信號處理系統(tǒng) 記錄心臟搏動情況 本實驗采用離體蛙心 觀察強心苷的強心作用 實驗材料 420生物機能實驗系統(tǒng) 張力換能器 蛙類手術器械 蛙心插管 試管夾 縫合線 蛙心夾 鐵支架 滴管 實驗藥品 任氏液 低鈣任氏液 所含CaCl2量為一般任氏液的1 4 其它成分不變 0 02 去乙酰毛花苷 西地蘭 1 CaCl2 實驗方法 一 離體蛙心臟標本制備1 破壞腦和脊髓 仰位固定于蛙板上 2 剪開胸廓 心包膜 暴露心臟3 蛙心插管 1 觀察心臟的解剖結構 腹面 背面 3 1分離主A干 在其下穿二條線 一條準備結扎A和蛙心插管 另一條準備結扎后腔靜脈 3 2用蛙心夾夾住心尖 向上翻起 結扎后腔靜脈 盡量向下結扎 避免扎著靜脈竇 否則心臟停搏 扎完 恢復心臟原位 蛙心插管 3 3在主動脈根部剪一 V 斜口 將插管插入動脈圓錐 在心室收縮時將插管插入心室 結扎固定 成功 管內液面會上下波動 分離周圍組織 在結扎處遠端剪斷血管及組織 使心臟離體 并用任氏液連續(xù)換洗 至無血色 蛙心插管 1 用試管夾將蛙心管固定在鐵支架上 2 把張力換能器固定鐵支架支臺上 蛙心夾上的線如圖繞過滑輪連于換能器彈簧片上 上下移動換能器或蛙心插管 調整線的松緊程度 換能器的信號線連于420生物機能實驗系統(tǒng)1通道上 開機 描記曲線 二 連接儀器和裝置 三 儀器的使用 1 打開420生物機能實驗系統(tǒng)后面的電源開關 指示燈亮 2 打開電腦 在桌面雙擊420生物機能實驗系統(tǒng)圖標 在工具欄中點擊 輸入信號 選擇1通道 在子菜單中選擇 張力 再點擊記錄 四 描記及給藥 1 穩(wěn)定5 10分鐘 描記正常蛙心收縮曲線 2 用低鈣任氏液換洗插管內任氏液兩次 描記曲線的變化 3 當蛙心收縮明顯減弱時 向插管內加入0 02 去乙酰毛花苷0 04ml 描記曲線的變化 4 當作用明顯時 再向套管內加入1 氯化鈣溶液2 3滴 描記曲線的變化 實驗結果 注意 1 測定時 插管內液面保持相同高度 以保證心臟的固定負荷 2 隨時滴加任氏液于心臟表面使之保持濕潤 3 蛙心套管一定要插入心室 切勿用力過大 插入過深 損傷心肌 4 結扎靜脈時 要遠離靜脈竇 起博點 藥理學實驗 七 藥物的利尿作用 1 1實驗目的 學習學習利尿的實驗方法 觀察利尿藥對尿量的影響 1 2實驗原理 呋塞米屬高效利尿藥 通過抑制髓袢升枝粗段對氯化鈉的重吸收而達到利尿作用 與尿液生成生理過程相聯(lián)系 1 和 實驗動物 家兔 體重2 3kg實驗藥物 1 5 戊巴比妥鈉 1 呋噻米 實驗試劑 生理鹽水主要儀器 燒杯 膀胱漏斗 10ml量筒 1 取家兔1只 稱重 清水灌胃30ml kg 3 2 30min后 用1 5 戊巴比妥鈉2ml kg經耳緣靜脈注射麻醉 3 家兔背位固定于兔臺上 恥骨聯(lián)合前正中切開腹部皮膚4 6cm 暴露膀胱 4 分離輸尿管 結扎尿道內口 在膀胱游離部作荷包縫合 然后剪開小口插入膀胱漏斗并固定 5 膀胱內注入生理鹽水 或清水 使其充盈 記錄10分鐘正常尿量 6 耳緣靜脈注入藥物 呋噻米0 5ml kg 觀察并記錄各藥給藥后10min尿液滴數(shù)及尿量 家兔麻醉過程中 控制麻醉藥推注速度 密切觀察實驗過程中家兔情況 手術過程中 動作輕柔 以免損傷膀胱 準確找到輸尿管 注意輸尿管的生理比鄰位置 4 考試軟件的使用說明 分二種題型1 單選題2 判斷題 雙擊 輸入01 30 單擊 選擇 點擊 點擊 1 2 3 4 點擊 判斷題 單選題 答題完成 點擊 1 2 3 4 氯丙嗪加強麻醉藥的麻醉作用 實驗目的 觀察氯丙嗪加強麻醉藥的麻醉作用 并聯(lián)系其臨床意義 實驗材料 5ml注射器2支 兔固定盒 苦味酸 棉簽 1 戊巴比妥鈉溶液 0 25 鹽酸氯丙嗪溶液 家兔2只 實驗方法 1 取家兔2只 稱重 標記分成甲乙兩只 2 觀察正?；顒忧闆r 角膜反射 肌肉緊張度 呼吸頻率及深度 心率等 3 甲兔耳緣靜脈注射0 25 氯丙嗪1ml kg 乙兔耳緣靜脈注射生理鹽水1ml kg 觀察注射氯丙嗪后家兔的情況 4 10分鐘后 甲乙兩兔分別耳緣靜脈注射1 戊巴比妥鈉1 5ml kg 觀察兩兔的麻醉情況有何差異 實驗結果 擬膽堿藥與抗膽堿藥對兔眼瞳孔的作用 實驗目的 觀察擬膽堿藥 抗膽堿藥對瞳孔的作用并分析其作用機制 原理 M受體激動藥通過激動瞳孔括約肌上分布的M受體 使括約肌向中心方向收縮 開大肌 瞳孔輻射肌 張力不變 故瞳孔縮小 M受體阻斷藥通過阻斷瞳孔括約肌上分布的M受體 使括約肌松弛 開大肌 瞳孔輻射肌 張力不變 故瞳孔散大 實驗材料 器材 兔固定箱 1ml注射器 測瞳尺 剪刀 藥品 1 硫酸阿托品溶液 0 2 硝酸毛果蕓香堿溶液 動物 家兔 實驗方法 1 取家兔1只 放入兔固定箱內 剪去眼睫毛 在自然光線下測量并記錄兩眼正常瞳孔直徑 然后按下列順序給藥 每眼4滴 左眼滴1 硫酸阿托品溶液 右眼滴0 2 硝酸毛果蕓香堿溶液 2 滴藥10min后 在同樣強度的光線下 再分別測量并記錄家兔左右眼瞳孔大小 如滴0 2 硝酸毛果蕓香堿溶液的瞳孔已明顯縮小 則再滴硫酸阿托品 10min后再觀測瞳孔變化 實驗結果 將結果記錄于下表中 注意事項 1 測量瞳孔勿刺激角膜 光照強度及角度須前后一致 否則將影響測瞳結果 2 各眼滴藥量要準確 在眼內停留時間要一致 以確保藥液充分作用 3 實驗動物應為一周內未用過眼藥者 思考題 通過實驗結果分析阿托品與毛果蕓香堿對眼瞳孔的作用有何不同 氯丙嗪對阿撲嗎啡引起激怒反應的影響 實驗目的 1 激怒實驗中激怒模型的建立 2 氯丙嗪的抗精神病作用 實驗材料 鐘罩或鼠盒 1ml注射器 氯丙嗪 阿撲嗎啡 實驗方法 1 取分籠 大鼠4只 稱重 標記 分成甲乙兩組 2 甲組兩只腹腔注射1 氯丙嗪1 5ml 100g 15mg kg 3 乙組兩只腹腔注射等劑量生理鹽水 4 30 后分別給每只大鼠皮下注射0 01 阿撲嗎啡0 1ml 100g 0 1mg Kg 同組同籠 5 15 后刺激兩組 造成斗毆 比較兩組斗毆情況 實驗結果 藥理學實驗藥物對大鼠動脈血壓的影響 1 1實驗目的 學習麻醉大鼠急性動脈血壓實驗的方法觀察腎上腺素對大鼠血壓的翻轉作用并與家兔血壓實驗比較 有何區(qū)別 了解動物種屬差異1 2實驗原理 腎上腺素 受體激動劑 酚妥拉明 受體阻斷劑 酚妥拉明能阻斷腎上腺素的 作用 1 和 實驗動物 大鼠 體重300g左右 實驗藥物 肝素生理鹽水液 1 5 戊巴比妥鈉溶液 0 001 腎上腺素溶液 0 1 酚妥拉明溶液 和 主要儀器 壓力換能器 BL 420生物機能實驗系統(tǒng) 心電導線 手術刀 手術剪 止血鉗 動脈插管 留置針 動脈夾 頭皮靜脈注射針頭等 充滿肝素生理鹽水液 大鼠稱重 腹腔注射1 5 戊巴比妥鈉0 2ml 100g 麻醉后 將動物背位固定于手術臺上 在后肢內側手術 分離股靜脈 做靜脈插管 注入肝素生理鹽水液 建立通道 剪去頸部的毛 頸正中切口 分離氣管 尋找頸總動脈 做頸總動脈插管 3 建立心電肢體 導聯(lián) 右前 白 左后 紅 右后 黑 分離氣管 在氣管一側的頸動脈鞘內分離頸總動脈 注意有迷走神經伴行 應將其與頸總動脈分離 頸總動脈近 遠心端各穿一根線 遠心端結扎 然后用動脈夾夾住近心端 在靠近遠端結扎處 向心方向插入裝有肝素生理鹽水溶液的動脈插管 留置針 結扎近心端線 同時抽出內心 慢慢松開頸總動脈夾 留置針繼續(xù)深插 線結扎并固定于留置針分叉處 壓力傳感器連接在420E 或F 生物機能實驗系統(tǒng)1通道上 試測正常血壓曲線 后暫停 2通道接入心電三心線 在氣管一側的頸動脈鞘內分離頸總動脈 進行頸總動脈插管 分離得到頸總動脈 頸總動脈插管 測定血壓及心電圖 1 選擇輸入信號 通道1 CH1 血壓通道2 CH2 心電圖2 描記正常血壓及心電圖 注意打上標記 10 5腎上腺素0 1ml 100g 適量肝素生理鹽水液沖洗 描記曲線 0 1 酚妥拉明0 1ml 100g 適量肝素生理鹽水液沖洗 描記曲線 10 5腎上腺素0 1ml 100g 適量肝素生理鹽水液沖洗 描記曲線 作用于 受體的藥物 V V V 觀察每步的血壓及心電變化情況 動脈插管過程容易發(fā)生出血 操作應仔細 小心 每次給藥后 都要輸入1ml左右肝素生理鹽水 將藥物完全沖入血管內 隨時注意動 靜脈插管位置 特別在掙扎時 避免扭轉而阻塞血流或刺破血管 兩次給藥之間須等待血壓恢復正常 藥物對豚鼠氣管的作用 豚鼠氣管鏈法 實驗目的 掌握平喘藥物的測定方法之一 氣管鏈法 實驗原理 不同的藥物通過直接或間接激動不同的受體使離體氣管條產生收縮或松弛作用 本實驗觀察組胺 腎上腺素 等藥物對豚鼠離體氣管條的作用 實驗材料 豚鼠 平滑肌槽 生物機能實驗系統(tǒng) 張力換能器 手術