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文檔簡介
1、免疫學(xué)質(zhì)量控制流程目的】保證 ELISA 檢測結(jié)果準(zhǔn)確可 *, 充分發(fā)揮其方法學(xué)的優(yōu)點(diǎn)?!驹?SOP變動程序】本標(biāo)準(zhǔn)操作程序的變動, 可由任一使用本 SOP的工作人員提出, 并報經(jīng)下述人員批準(zhǔn)簽字:專業(yè) 主管、科主任?!痉椒ā俊痉治銮百|(zhì)控】1. 人員培訓(xùn)實驗是人操作的,因此檢驗人員需經(jīng)過培訓(xùn),熟練掌握本專業(yè)如下幾方面的技術(shù)知識:1 檢驗項目的基本原理 (ELISA 原理);2 臨床意義;3 熟悉檢測技巧,了解易出差錯的環(huán)節(jié)及難點(diǎn);4 熟悉檢測試劑性能(包括試劑盒組成,包被片段及其組成);5 熟悉檢測儀器的原理及性能;掌握數(shù)據(jù)處理的能力和質(zhì)量控制知識。6 某些特殊項目的檢測如抗 HIV 等需經(jīng)有
2、關(guān)部門組織的專門培訓(xùn)班,考試合格后持證上崗。試劑盒選擇】衛(wèi)生部規(guī)定乙肝試劑,丙肝試劑,必須使用經(jīng)衛(wèi)生部生物制品檢定所檢定合格,并貼有防偽標(biāo)簽 的產(chǎn)品?!驹噭┖性u價】試劑評價需要有權(quán)威的血清考核盤( Panel )進(jìn)行檢測,價格昂貴,操作繁瑣,一般實驗室不易 開展,可以通過以下信息,了解試劑質(zhì)量。1. 根據(jù)該試劑生物制品鑒定所的批批檢定報告, 了解其質(zhì)量水平, 按照質(zhì)量計劃選擇靈敏度高的 或特異性高的試劑;2. 通過詢問試劑包被物的組成,如原料來源(基因工程或合成多肽),片段的組合(按比例混合 或化學(xué)合成),片段的長短等判斷試劑的優(yōu)劣;3. 參考室間質(zhì)評報告中對試劑的評價結(jié)果,了解不同試劑的質(zhì)控
3、成績。4. 根據(jù)權(quán)威部門發(fā)布的試劑評價結(jié)果,了解市場上試劑的質(zhì)量優(yōu)劣。【儀器質(zhì)控】為使儀器保持最佳工作狀態(tài)應(yīng)建立維護(hù)和校正儀器的標(biāo)準(zhǔn)操作程序(SOP),所要控制的儀器包括移液器(加樣槍),水浴箱(溫箱),洗板機(jī)和酶標(biāo)儀。1. 移液器: ELISA加樣量小( 5-100 l ),其準(zhǔn)確性直接影響實驗結(jié)果,利用稱重法檢查:吸取 刻度指示量的水,萬分之一天平稱重后計算吸量是否準(zhǔn)確,一般應(yīng)在±10%以內(nèi);2. 水浴箱:經(jīng)常檢查水浴箱溫度計所示的溫度和水中(或溫箱內(nèi))實測溫度是否一致,允許有± 1的誤差;3. 洗板機(jī):每個廠家設(shè)置洗板后的殘留液有各自的規(guī)定一般不超過 2ul ,人工扣
4、板時,墊紙不 濕,定期檢查管孔是否堵塞;4. 酶標(biāo)儀:經(jīng)常維護(hù)其光學(xué)部分,防止濾光片霉變,定期檢測校正,使其保持良好的工作性能。酶標(biāo)儀的主要性能指標(biāo)有:測讀速度、讀數(shù)的準(zhǔn)確性、重復(fù)性、精確度和可測范圍、線性等等。優(yōu)良 的酶標(biāo)儀的讀數(shù)一般可精確到 0.001 ,準(zhǔn)確性為± 1%,重復(fù)性達(dá) 0.5%。酶標(biāo)儀的可測范圍視各酶標(biāo)儀的性能而不同。普通的酶標(biāo)儀在 0.0002.000 ,新型號的酶標(biāo)儀上 限拓寬達(dá) 2.900 ,甚至更高。 超出可測上限的 A值常以 "*" 或"over" 或其它符號表示。 應(yīng)注意可測范圍 與線性范圍的不同,線性范圍常小于可
5、測范圍,比如某一酶標(biāo)儀的可測范圍為 0.0002.900 ,而其線 性范圍僅 0.0002.000 ,這在定量 ELISA 中制作標(biāo)準(zhǔn)曲線時應(yīng)予注意?!久笜?biāo)儀校正程序】1. 濾光片波長精度檢查:將不同波長的濾光片從酶標(biāo)儀上卸下,用 UV-2201型紫外 -可見分光光 度計(波長精度± 0.3nm)于可見光區(qū)對每個濾光片進(jìn)行掃描,其檢測值與標(biāo)定值之差為濾光片波長 精度。一般酶標(biāo)儀無 585nm濾光片,可選用 550nm或 630nm濾光片。 450nm 濾光片的檢定選用普魯蘭 溶液(校正波長為 630nm)。2. 通道差與孔間差檢測:通道差檢測是取一只酶標(biāo)板小孔杯(杯底須光滑,透明,無
6、污染以酶標(biāo) 板架作載體,將其(內(nèi)含 200ul 甲基橙溶液吸光度調(diào)至 0.500A 左右)置于 8 個通道的相應(yīng)位置,蒸 溜水調(diào)零,于 490nm處連續(xù)測三次 , 觀察其不同通道的檢測器測量結(jié)果的一致性,可用極差值來表示。 孔間差的測量是選擇同一廠家,同一批號酶標(biāo)2板條(8條共 96 孔)分別加入 200ul 甲基橙溶液(吸光度調(diào)至 0.100A 左右)先后置于同一通道,蒸溜水調(diào)零 , 于 490nm處檢測,其誤差大小用± 1.96s 衡 量。3. 零點(diǎn)飄移(穩(wěn)定性觀察):取 8 只小孔杯分別置于 8 個通道的相應(yīng)位置,均加入 200ul 蒸餾 水并調(diào)零,于 490nm處每隔 30
7、分鐘測一次,觀察各個通道 4 小時內(nèi)吸光度的變化。4. 精密度評價: 每個通道 3只小杯分別加入 200ul 高中低 3 種不同濃度的甲基橙溶解, 蒸餾水調(diào)零,于 490nm作雙份平行測定,每日測二次(上下午各一次),連續(xù)測定20 天。分別計算其批內(nèi)精密度,日內(nèi)批精密度 , 日間精密度和總精密度及相應(yīng)的 CV值。5. 線性測定:用電子天平精確稱取甲基橙配制 5個系列的溶液,于490nm平行測 8次,取其均值。 計算其回歸方程,相關(guān)系數(shù)及標(biāo)準(zhǔn)估計誤差 s,并用± 1.96s 表示樣品測量的誤差范圍 . 雙波長測定評 價:取一分甲基橙溶液,分別加入 3 種不同濃度的溶血液(測定波長為 4
8、90nm,校正波長為 585nm), 先后于 8個通道檢測,每個通道測 3 次,比較各組之間是否具有統(tǒng)計學(xué)差異,以考察雙波長消除干擾 組分的效果。【標(biāo)本的采集和保存】1. 標(biāo)本采集時應(yīng)盡量避免溶血,因紅細(xì)胞破裂可釋放過氧化物酶活性物質(zhì)干擾立可讀方法的結(jié) 果,以 HRP為標(biāo)記的 ELISA 測定中,溶血標(biāo)本會增加非特異性顯色造成假陽性。2. 長菌的標(biāo)本同樣的道理也易產(chǎn)生假陽性,因菌體中可能含有內(nèi)源性HRP也會產(chǎn)生假陽性反應(yīng)。3. 抗凝不完全的標(biāo)本因纖維蛋白元的干擾而造成假陽性, 建議盡量不用抗凝血尤其是不使用用肝 素抗凝劑。4. 標(biāo)本在冰箱中保存時間過長易導(dǎo)致血清 IgG 聚合,使間接法的試劑本
9、底加深,一般血清置4冰箱 5 天內(nèi)完成測試。如需保存一周以上則要 - 20冰凍保存,凍結(jié)血清融解后,蛋白質(zhì)局部濃縮, 分布不均, 融解時應(yīng)上下顛倒充分混勻, 同時避免氣泡。 可上下顛倒混和, 不要在混勻器上強(qiáng)烈振蕩。 反復(fù)凍融會使抗體效價跌落,如需保存作多次檢測,宜少量分裝冰存。5. ELISA 的靈敏度1ng/ml 水平上,標(biāo)本間的污染要盡量避免,尤其不應(yīng)與生化試驗用同一管標(biāo) 本。分析中質(zhì)控】ELISA 實驗的結(jié)果受操作影響很大,每個步驟包括加樣,溫育,洗滌,顯色,酶標(biāo)儀讀數(shù)均應(yīng)認(rèn) 真負(fù)責(zé)才能充分發(fā)揮 ELISA的高靈敏,強(qiáng)特異的優(yōu)點(diǎn)。因此 , 應(yīng)建立實驗項目的標(biāo)準(zhǔn)操作程序 (SOP)。1.
10、 加樣1 加樣應(yīng)用微量移液器 (加樣槍) 按規(guī)定的量加入微孔板底部, 避免加在孔壁上部, 不可濺出, 不可產(chǎn)生氣泡。2 每次加樣應(yīng)更換吸嘴,做到一人一吸頭,以免發(fā)生交*污染; 干吸頭預(yù)先在血清中抽吸三次。3 樣本稀釋, 目的是為了減少非特異性反應(yīng),所以一定要先加稀釋液后加樣本, 特別注意加樣 后要在微量振蕩器上振蕩 30 秒鐘,同時注意防止液體溢出。如后面操作步驟中加二種以上試劑時均 需振蕩混勻。4 如用滴瓶滴加試劑應(yīng)先將滴瓶搖勻并擠去第一滴有氣泡的試劑后加樣。2. 溫育1 抗原抗體反應(yīng)需要在一定溫度下( 37°C),經(jīng)過一定的時間才能達(dá)到反應(yīng)的平衡點(diǎn)2 ELISA 邊緣效應(yīng)是由溫育
11、形成的。 所以溫育一般采用能使反應(yīng)液溫度迅速達(dá)到平衡的水浴法。 水要浸至板條的 1/3 處。3 反應(yīng)板不宜疊放, 注意溫育的溫度和時間應(yīng)按規(guī)定控制,一個人操作時,一次不宜多于兩塊 板同時測定。3. 洗滌1 手工洗滌一般采用浸泡方法: 1)甩去孔內(nèi)反應(yīng)液; 2 )用洗滌液過洗一遍(即注滿孔后即 甩去); 3)微孔重新注滿洗液后浸泡 2-3 分鐘,間歇搖動; 4)甩去孔內(nèi)液體,拍板,用紙吸干。重復(fù)以上操作至少 5 次。注意各種試劑盒的洗滌液盡量不要混用2 洗板機(jī)洗板一定要預(yù)先把板架放平,使洗板機(jī)上的每個放液和吸液纖孔都能一致地插入孔 底,將孔內(nèi)液體全部吸干,同時要設(shè)置一定的浸泡時間。如出現(xiàn)機(jī)洗后拍
12、板有較多殘留液時應(yīng)再用手 工洗 2 次以上。關(guān)機(jī)前要用蒸溜水沖洗管道,避免堵孔。4. 顯色1 HRP 催化底物的一步呈色反應(yīng),同樣需要一定的時間和溫度,2 一定要按照說明書規(guī)定的時間溫度(一般為37°C, 10-15 分鐘)恒定反應(yīng)后終止3 或根據(jù)臨界值質(zhì)控血清吸光度值達(dá) 0.2 左右使的時間而恒定反應(yīng)時間 .5. 酶標(biāo)儀判讀結(jié)果1. 顯色反應(yīng)終止后應(yīng)立刻比色( 30 分鐘內(nèi))。2. 常見的顯色系統(tǒng)有 OPD和 TMB二種,以后者最為常見, 而 TMB酸不易終止因此必須盡快比色以 免影響結(jié)果。 OPD終止后顯棕色,測定波長為 490nm;TMB終止后顯黃色,測定波長為 450nm,二
13、種底 物的校正波長均用 630nm。3. 使用雙波長的優(yōu)點(diǎn)可以消除反應(yīng)板條上的劃痕手印的干擾。 同時要注意反應(yīng)板應(yīng)用紙吸干后才 能置酶標(biāo)儀中比色,否則吸光度易出現(xiàn)負(fù)值或損壞濾光片?!痉治龊筚|(zhì)控】【報告方式】1. 定性試驗:國內(nèi)外為便于統(tǒng)一計算,一律按S/COV方式報告, S為標(biāo)本 A值, COV即 Cut Off值(或 COV)1 夾心法和間接法以 S/COV1為陽性;競爭法與中和法以 S/COV 1 為陽性2 COV 的計算公式以試劑盒說明書的為準(zhǔn)常見的有:A)COV=2.1×N(當(dāng) N 不足 0.05 時按 0.05 計),此公式由 P/N>2.1 換算而來,常用于夾心法。
14、B)COV=0.5×N,從抑止率公式換算而來,常用于競爭,中和法。C)COV=N+C( C為常數(shù)),用于間接法。D)COV=C×P+N( C為常數(shù)),用于間接法。此公式最客觀,但對廠家要求很高,陰陽性對照測 定值要基本恒定。2. 定量分析:嚴(yán)禁用定性試劑盒做定量分析。1 用已知量的系列標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果以絕對量或單位表示。ELISA 的標(biāo)準(zhǔn)曲線每次都要和待測標(biāo)本做在同一塊板上。2 現(xiàn)有的 ELISA 定量試劑盒標(biāo)準(zhǔn)曲線只有在較窄的濃度范圍內(nèi)成直線, 要得到精確的結(jié)果實屬 不易?!居涗洝? 所有實驗的原始資料均應(yīng)存檔; 所有的記錄均應(yīng)規(guī)范登記在冊; 原始登記表應(yīng)記錄試
15、劑來源、 批號;質(zhì)控血清的來源及測定值并注明是否在控;簽上實驗者姓名及審核者姓名。2 如試驗結(jié)果對臨床診斷有決定意義,其樣本應(yīng)保留,至少與病歷保存期一致【定性試驗】ELISA 定性試驗的臨床意義在于是否檢出病原體,與檢出量無關(guān),因此QC要保證試驗的靈敏度和特異性。生化的質(zhì)控圖方法僅能觀察靈敏度而無法監(jiān)控特異性。建議使用臨界值血清界定法:將試 劑盒所設(shè)的陰陽性對照作為內(nèi)對照指示反應(yīng);另設(shè)臨界值、高值質(zhì)控血清,正常人血清作為外對照,與標(biāo)本同時檢測,臨界值 S/C.O1,高值質(zhì)控血清 S/C.O10,正常人血清 A 值在 0.050.07 之間陽性質(zhì)控血清失控(臨界值為靈敏度,高值為 "HOOK"效應(yīng)監(jiān)控)應(yīng)重做陰性標(biāo)本;陰性對照失控應(yīng)重 做陽性標(biāo)本。以表格式記錄每塊板的外對照實驗結(jié)果,作為QC資料存檔?!径吭囼灐縀LISA 定量試驗常見于腫瘤因子(如 AFP, CEA,CA系列),激素類,免疫球蛋白類,這些物質(zhì) 在體內(nèi)有一定的量(正常范圍),超出這個量才呈病理情況,故需
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