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1、硒的檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展硒的檢測(cè)方法研究始于20世紀(jì)90年代,所研究和應(yīng)用的方法有比色法、熒光分光光度法、原子吸收光譜法、石墨爐原子吸收光譜法、氫化物一原子吸收光譜法、氫化物一原子熒光光譜法、催化動(dòng)力學(xué)法、高效液相一熒光法、氣相色譜法、電感耦合等離子體一質(zhì)譜法等,由于含硒樣品種類(lèi)繁多,且每種測(cè)定方法都有其優(yōu)缺點(diǎn),所以根據(jù)不同的分析樣品,選擇合適的測(cè)定方法,有著非常重要的意義。硒在生物體中的存在形式分為有機(jī)態(tài)和無(wú)機(jī)態(tài),其檢測(cè)方法的研究和發(fā)展也分為兩個(gè)方面:一類(lèi)總硒的檢測(cè),另一類(lèi)是有機(jī)硒的形態(tài)分析檢測(cè),現(xiàn)將各種方法分別簡(jiǎn)述如下:1總硒的測(cè)定1.1比色法3,3一二氨基聯(lián)苯胺(3,3 - Diaminob

2、enzidine)在酸性條件下與四價(jià)硒反應(yīng)生成黃色化合物,在pH7左右時(shí)能被甲苯萃取,進(jìn)行比色定量。水樣需要經(jīng)酸混合液消解后,將四價(jià)以下的無(wú)機(jī)和有機(jī)硒氧化成四價(jià)硒,再與鹽酸反應(yīng)將六價(jià)硒還原至四價(jià)硒,然后再測(cè)定總硒含量。該法樣品中若存在大量鐵、銅、鉬及釩等重金屬離子時(shí),可用Na2 - EDTA消除干擾,強(qiáng)氧化劑能將3,3一二氨基聯(lián)苯胺試劑氧化產(chǎn)生棕紅色,因此水樣用混合酸消解時(shí)一定要加熱至大量酸被趕掉,少量的強(qiáng)氧化劑可用鹽酸羥胺消除。本法最低檢出限為2.5 g.L-1,測(cè)定上限為50 g.L-1,靈敏度較低。1.2熒光分光光度法2,3一二氨基萘(2,3 - diaminonaphthalene,縮

3、寫(xiě)為DAN)在pill.5 -2.0的酸性溶液中,選擇性地與四價(jià)硒離子反應(yīng)生成4,5一苯并苤硒腦(4,5一ben- zopiaselenol)綠色熒光物質(zhì),被環(huán)已烷萃取后,以368 nm為激發(fā)波長(zhǎng),在520 nm處測(cè)定,所產(chǎn)生的熒光強(qiáng)度與四價(jià)硒含量成正比。水樣經(jīng)硝酸一高氯酸混合酸液消解,將四價(jià)以下的無(wú)機(jī)和有機(jī)硒氧化為四價(jià)硒,再經(jīng)鹽酸消解將六價(jià)硒還原為四價(jià)硒,然后測(cè)定總硒含量,本法最低檢出量為0. 005 g,取20 mL水樣測(cè)定,硒的最低檢出濃度為0.25 g.L-1,現(xiàn)為國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法第二法。1.3氫化物一原子熒光法樣品消解后,將溶液中的硒還原成四價(jià)硒,用硼氫化鉀( KBH4)作為還原劑,將四

4、價(jià)硒在鹽酸介質(zhì)中還原成硒化氫( Sell4),由載氣(氬氣)帶入原子化器中進(jìn)行原子化,在硒空心陰極燈照射下,基態(tài)硒原子被激發(fā)至高能態(tài),再去活化回到基態(tài)時(shí),發(fā)射出特征波長(zhǎng)的熒光,其熒光強(qiáng)度與硒的含量成正比,與標(biāo)準(zhǔn)系列比較定量。該法在最佳條件下,方法檢出限為每毫升0. 22 ng,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.7%,樣品測(cè)定硒的加標(biāo)回收率為97.7%一100.9%。該方法操作簡(jiǎn)單,結(jié)果準(zhǔn)確,能滿(mǎn)足日常對(duì)硒樣品的檢驗(yàn)要求,現(xiàn)為國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法第一法。1.4火焰原子吸收法消解樣品中的硒元素被載氣吸入火焰中,處于原子狀態(tài),讓硒空心陰極燈發(fā)出的特定波長(zhǎng)的光從其中通過(guò),因原子數(shù)目的多少可以影響光被吸收的程度,所以測(cè)定吸光度

5、可以度量出被分析元素的濃度。該法操作簡(jiǎn)單,但因硒空心陰極燈發(fā)射的特征譜線(xiàn)在196.0 nm處,接近真空范圍,因此信號(hào)不穩(wěn)定,易產(chǎn)生波動(dòng),靈敏度不高,現(xiàn)已被氫化物一原子吸收法代替。1.5氫化物一原子吸收法樣品經(jīng)硝酸一高氯酸消化后,加入鹽酸將六價(jià)態(tài)硒還原為四價(jià)態(tài)硒,以稀鹽酸作載流液載帶試樣溶液,試樣溶液在反應(yīng)管中與硼氫化鉀溶液混合并發(fā)生化學(xué)反應(yīng),四價(jià)態(tài)硒被還原為硒化氫氣體,被載氣帶入電加熱石英管原子化器中,硒被原子化成基態(tài)原子蒸氣。當(dāng)硒空心陰極燈發(fā)射的特征譜線(xiàn)( 196.0 nm)通過(guò)石英管時(shí),被基態(tài)原子所吸收。在一定實(shí)驗(yàn)條件下,其吸光度與試樣溶液中硒濃度呈正比,與標(biāo)準(zhǔn)系列比較定量。其分析線(xiàn)波長(zhǎng)1

6、96.0 nm,光譜通帶0.4 nm,燈電流5.0 mA,測(cè)量方式為峰高,硼氫化鉀濃度5g.L-1,鹽酸載液濃度0.5 mol. L-1,載氣流速200 ml/min,石英管加熱電壓120v。該法檢出限為每毫升0.19 ng,線(xiàn)性范圍為每毫升0.8 -28.0 ng,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.0% -4.1%,樣品加標(biāo)回收率為89.9% - 99.3%。方法具有靈敏度高,選擇性好,簡(jiǎn)便快速,試劑和樣品用量少,精密度和準(zhǔn)確度均較高等優(yōu)點(diǎn),能夠滿(mǎn)足常規(guī)樣品的分析。1.6石墨爐一原子吸收法將試樣或消解處理過(guò)的試樣直接注入石墨爐,在石墨爐中形成的基態(tài)原子對(duì)特征電磁輻射產(chǎn)生吸收,將測(cè)定的試樣吸光度與標(biāo)準(zhǔn)溶液的吸

7、光度進(jìn)行比較,確定試樣中被測(cè)元素的濃度。該方法檢測(cè)限為0. 003 mgL-1,測(cè)定范圍為0.015-0.2 mgL-1,但在金屬離子和非金屬離子達(dá)到一定濃度時(shí)均會(huì)對(duì)硒的測(cè)定產(chǎn)生干擾。1.7催化動(dòng)力學(xué)光度法在鹽酸介質(zhì)中痕量Se()能催化H202氧化甲基紅退色,由此建立了一種測(cè)定痕量硒的催化動(dòng)力學(xué)新方法。該方法的最大吸收波長(zhǎng)為520 nm,線(xiàn)性范圍為0 -52tg.L-1,檢出限為1.6 g.L-1。該法用于茶葉等樣品中硒的測(cè)定,結(jié)果滿(mǎn)意。1.8高效液相色譜法四價(jià)硒離子與2,3一二氨基萘反應(yīng)生成4,5一苯并苤硒腦綠色熒光物質(zhì),被環(huán)已烷萃取后,在乙腈一水體系中的熒光強(qiáng)度比在甲醇一水體系中的熒光強(qiáng)度

8、強(qiáng),在100%乙腈中熒光強(qiáng)度最強(qiáng),且峰分離最好,靈敏度最高,所以選用100%乙腈為流動(dòng)相,選用適當(dāng)?shù)臋z測(cè)波長(zhǎng),硒含量在0 -20 g范圍內(nèi)與峰高呈線(xiàn)性關(guān)系,加樣回收率為94. 3% - 103%。采用該法的優(yōu)勢(shì)在于:通過(guò)色譜柱能夠?qū)?,5一苯并苤硒腦與其它雜質(zhì)產(chǎn)生的熒光物質(zhì)分離,消除了雜質(zhì)與2,3一二氨基萘形成的熒光物質(zhì)的干擾,從而使檢測(cè)結(jié)果更準(zhǔn)確。其次,有研究者采用微波消解法對(duì)試驗(yàn)樣品進(jìn)行消解,分別通過(guò)ICP - MS法、HPLC/熒光法和3,3一二氨基聯(lián)苯胺比色法三種方法測(cè)定了富硒蛹蟲(chóng)草菌絲體中硒的含量,對(duì)上述幾種硒含量測(cè)定方法的工作條件、檢出限和精確度進(jìn)行了對(duì)比研究。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:ICP

9、 - MS法、HPLC/熒光法和3,3一二氨基聯(lián)苯胺比色法的檢出限分別為0. 2607,0.1821和10.4859 g.L-1ICP - MS法的檢出限最低,3,3一二氨基聯(lián)苯胺比色法的檢出限最高。在精密度方面,對(duì)同一樣品以ICP - MS法測(cè)硒的標(biāo)準(zhǔn)差為最低,以3,3一二氨基聯(lián)苯胺比色法測(cè)硒為最高。建議當(dāng)分析樣品中硒含量很低時(shí),可選用HPLC/熒光法和ICP - MS法,如分析樣品含硒量相對(duì)較大,可采用3,3一二氨基聯(lián)苯胺比色法。2有機(jī)硒的檢測(cè)方法硒在生物體內(nèi)主要以有機(jī)硒化合物的形態(tài)存在,主要包括硒氨基酸、硒蛋白、硒核酸和硒多糖等。硒代氨基酸最主要的是硒代胱氨酸( Se - Cys)和硒代

10、蛋氨酸( Se - Met),其次是硒甲基半胱氨酸,其檢測(cè)方法發(fā)展很快,主要進(jìn)展如下:2.1高效液相色譜(HPLC)法硒代氨基酸也是氨基酸,能夠與6一氨基喹啉-N-羥基琥珀酰亞胺基一氨基甲酸酯(AQC)、鄰苯二甲醛(OPA)、異硫氰酸苯酯(PICT)等多種衍生劑反應(yīng)生成具有紫外吸收和熒光的衍生物,通過(guò)高效液相色譜儀分離,利用紫外或熒光檢測(cè)器進(jìn)行檢測(cè)。利用該方法我實(shí)驗(yàn)室也做了大量的研究工作,發(fā)現(xiàn)存在的主要問(wèn)題是樣品水解后會(huì)產(chǎn)生大量的非含硒氨基酸,不論是采用柱前衍生還是柱后衍生的方法,都無(wú)法消除其它氨基酸的干擾,其它氨基酸的大峰會(huì)使實(shí)際樣品中的含硒氨基酸無(wú)法檢測(cè),盡管有研究者采用電磁消解的方法來(lái)增

11、強(qiáng)含硒氨基酸的檢測(cè)信號(hào),因此,該法適合于硒代氨基酸原料藥的檢測(cè),在農(nóng)副產(chǎn)品中應(yīng)用依然十分困難。2.2液質(zhì)聯(lián)用(LC - MS)法2.2.1高效液相色譜一電感耦合等離子體質(zhì)譜(RP- IPHPLC)法用反相離子對(duì)高效液相色譜( RP - IPHPLC)分離含硒化合物,用電感耦合等離子體質(zhì)譜( ICP - MS)在線(xiàn)分析硒含量,與標(biāo)準(zhǔn)化合物的色譜圖和工作曲線(xiàn)對(duì)照進(jìn)行定性和定量分析,可以實(shí)現(xiàn)對(duì)硒酸鈉、亞硒酸鈉、硒代胱氨酸、硒代胱胺、硒代蛋氨酸、硒代尿素和三甲基硒離子等7種生物體常見(jiàn)的含硒小分子的分析,檢出限為0.11.5g.L-1;線(xiàn)性范圍為1-100g.L-1,應(yīng)用于人血清、尿、肝組織細(xì)胞質(zhì)溶膠等

12、樣品中含硒小分子的形態(tài)分析,所需進(jìn)樣量?jī)H50 L,各含硒化合物加標(biāo)回收率在93%-117%。本方法操作簡(jiǎn)便,靈敏度高,重現(xiàn)性好,適合于各種生物樣品中含硒小分子的形態(tài)分析。也有研究者采用反相離子對(duì)緩沖鹽3個(gè)色譜系統(tǒng)的高效液相色譜與電感耦合等離子質(zhì)譜聯(lián)用( RP - HPLC - ICP - MS)法,研究了海帶對(duì)硒的富集總量及硒化學(xué)形態(tài)轉(zhuǎn)變,測(cè)定了亞硒酸鈉、硒甲基半胱氨酸(MeSeCys)、硒代蛋氨酸(SeMet)三種硒形態(tài)。2.2.2液相色譜一串聯(lián)質(zhì)譜法(LC - MS MS) 以反相C18色譜柱為分離柱,甲醇+0.1%七氟丁酸水溶液(35 +65)流動(dòng)相,流速為500L/min;以氮?dú)鉃榕鲎?/p>

13、氣,利用多反應(yīng)離子監(jiān)測(cè)方式測(cè)定SeMet (MRM m/z 198.1 181.0,198.1152.0)和SeCys (MRM m/z 337.0 248.0,337.088.2)信號(hào)。SeCys和SeMet檢出限分別為每毫升2.0 ng和0.5 ng,該方法能夠使2種含硒化合物在一次進(jìn)樣中實(shí)現(xiàn)完全分離和在線(xiàn)測(cè)定,能夠滿(mǎn)足快速準(zhǔn)確檢測(cè)SeCys和SeMet含量要求。2.3液相色譜一雙通道原子熒光聯(lián)用法以10 mmolL-1 NH4H2P04溶液(pH 5.6,添加2.5%的甲醇)為流動(dòng)相,以高效液相色譜對(duì)樣品中的硒代胱氨酸(SeCys)、硒代蛋氨酸(SeMet)和四價(jià)硒Se()分離后,用雙通

14、道原子熒光進(jìn)行檢測(cè),檢出限分別為4、18和3g.L-1,可用于尿樣及藥品中硒形態(tài)的日常分析。2.4氣相色譜(GC)法將硒半胱氨酸(SeCysH)甲基化,硒胱氨酸(Se- Cys)還原后再甲基化。它們生成的甲基硒半胱氨酸( CH3 SeCysH)能與溴化氰(CNBr)發(fā)生專(zhuān)一性反應(yīng),定量生成的硒氰酸甲酯( CH3 SeCN)可用氣相色譜法(GC)測(cè)定。此法簡(jiǎn)稱(chēng)CNBr - GC法,檢測(cè)限410-8g SeCys,準(zhǔn)確度89.5%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差2.1%,非含硒氨基酸不干擾。此法適于樣品中微量硒氨基酸(SeMet,SeCysH和seCys)的測(cè)定。2.5氣一質(zhì)聯(lián)用(GC - MS)法將提取的蛋白樣品在

15、6 molL-1HC1溶液中,超聲處理20 min,離心分離后,以丁醇及三氟乙酸酐為衍生化試劑對(duì)硒蛋氨酸進(jìn)行衍生化,采用選擇離子監(jiān)測(cè)模式對(duì)衍生物進(jìn)行GC - MS測(cè)定,硒蛋氨酸的回收率為97.6% - 105.2%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.7% -3.6%,檢出限為0.3 mg- L-1,該法樣品前處理簡(jiǎn)單,測(cè)定快速,結(jié)果準(zhǔn)確,靈敏度高,可用于植物樣品中硒蛋氨酸含量的測(cè)定。另有研究者以氯甲酸乙酯作衍生化試劑,利用串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù)在多離子監(jiān)測(cè)模式下對(duì)硒甲基硒半胱氨酸和硒蛋氨酸衍生物進(jìn)行GC - MS/MS測(cè)定,方法的線(xiàn)性范圍為0.01 -25 mgL-1,線(xiàn)性相關(guān)系數(shù)rO. 998 8;方法檢出限分別為硒

16、甲基硒半胱氨酸(Met-Se-cys)4g.L-1、硒蛋氨酸(Se-Met)2g.L-1; Met-Se- Cys的方法回收率為82% -97%,RSD小于6.3%,Se - met的方法回收率為100% - 109%,RSD小于7.5%。該方法簡(jiǎn)單、快速、準(zhǔn)確,并能有效排除基質(zhì)的干擾,適合于食品中硒甲基硒半胱氨酸和硒蛋氨酸的定性定量分析。3結(jié)語(yǔ)有機(jī)硒的分析近來(lái)得到了很大的發(fā)展,但均以總硒和硒代氨基酸的檢測(cè)方法為主,有機(jī)硒主要以硒蛋白、硒氨基酸的形式存在外,還以硒多糖、硒甲醚等其它形式存在,難以分離提取或完全提取,單獨(dú)檢測(cè)其中的某一種或幾種成分,不能代表有機(jī)硒的含量。因此,現(xiàn)仍以采用總硒減去無(wú)

17、機(jī)硒的方法得到有機(jī)硒的含量較為合理,但采用該法不能檢測(cè)有機(jī)硒的形態(tài)。各實(shí)驗(yàn)室應(yīng)根據(jù)自己研究和企業(yè)產(chǎn)品開(kāi)發(fā)的需要,選擇適合的檢測(cè)方法。氨基酸和生物資源2010.2食用茵病毒脫毒方法的比較張朝輝,劉映淼,戚元成,高玉千,申進(jìn)文,邱立友(河南農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,鄭州450002)摘要:應(yīng)用dsRNA技術(shù)從平菇天達(dá)300(Pleurotus ostreatus TD300)菌絲中提取到4條dsRNA條帶,大小分別是8.2、2.5、2.1和1.lkb。采用菌絲尖端脫毒法、原生質(zhì)體再生法、冷凍真空干燥法和單孢雜交法進(jìn)行脫毒,各得到一株脫毒菌株,分別是HTC8、PR15、FL01和SSHll。脫毒菌株HT

18、C8僅殘留有低含量的8.2kb dsRNA,PR15和SSH11完全脫去dsRNA,而FL01仍殘留有低濃度的8.2kb和2.5 kb dsRNA。該4株脫毒菌株的菌絲生長(zhǎng)速度和漆酶活力均比出發(fā)菌種有不同程度的提高,尤其是HTC8和PR15,菌絲生長(zhǎng)速度比出發(fā)菌種分別提高22.73%和18.18%,漆酶活力比出發(fā)菌種分別提高145.83%和134.38%o。綜合比較此4種脫毒方法,菌絲尖端脫毒法和原生質(zhì)體再生脫毒法比冷凍真空干燥法和單孢雜交法脫毒效果好,制備脫毒菌株用時(shí)短、效率高。關(guān)鍵詞:平菇;脫毒;菌絲生長(zhǎng)速度;漆酶1948年,美國(guó)賓夕法尼亞州La Franch兄弟,在雙孢蘑菇(Agaric

19、us bisporus)菇床上發(fā)現(xiàn)了一種菌柄有黑色斑點(diǎn)和水漬狀的蘑菇病害,這就是著名的法蘭西蘑菇病。1960年Holling第一次從病蘑菇的子實(shí)體中分離出并在電鏡下發(fā)現(xiàn)了3種類(lèi)型的病毒顆粒。此后,在香菇(Lentinus edodes)、平菇(Pleurotus ostreatus)、金針菇(Flammulina velutipes)等多種食用菌中發(fā)現(xiàn)病毒。食用菌感染病毒嚴(yán)重影響其產(chǎn)量和質(zhì)量。雙孢蘑菇罹患法蘭西病導(dǎo)致菌絲退化、生長(zhǎng)緩慢,菌絲體褐色,子實(shí)體畸形、質(zhì)地改變、腐爛,孢子變小、萌發(fā)快等。罹患蘑菇病毒X (MVX)病導(dǎo)致床層中出現(xiàn)一些區(qū)域沒(méi)有子實(shí)體形成,或子實(shí)體畸形、呈褐色等。平菇感染病

20、毒同樣導(dǎo)致菌絲生長(zhǎng)緩慢,出菇延遲,子實(shí)體畸形,嚴(yán)重減產(chǎn)。防治食用菌病毒病的最有效的方法是預(yù)防,在生產(chǎn)的全過(guò)程做好清潔衛(wèi)生工作,制備和應(yīng)用脫毒菌種也是防治食用菌病毒病的有效措施。制備脫毒菌種的方法已報(bào)道的有菌絲尖端脫毒法和原基組織脫毒法。菌絲尖端脫毒法是切取尖端菌絲進(jìn)行繼代培養(yǎng),如此反復(fù)45次進(jìn)行脫毒,電鏡觀察沒(méi)有發(fā)現(xiàn)菌絲中含有病毒粒子。原基組織脫毒法是取原基組織進(jìn)行分離培養(yǎng)得到脫毒菌種,但脫毒效果沒(méi)有檢測(cè)。周素靜應(yīng)用該方法制備平菇新931和豫6脫毒菌種,用dsRNA技術(shù)檢測(cè)發(fā)現(xiàn)只能脫去部分dsRNA條帶。Mdrquez等采用冷凍真空干燥法可完全脫去植物共生菌管突彎孢(Curvulzzria p

21、rotuberate)所含的dsRNA,方法是將菌絲先經(jīng)-80冷凍30 min,然后真空干燥過(guò)夜,得到的菌絲片段液體培養(yǎng)后進(jìn)行平板分離,對(duì)單菌落進(jìn)行dsRNA檢測(cè),從中選擇不含dsRNA的菌株。該方法是否適用于食用菌菌種的脫毒尚未見(jiàn)報(bào)道。van der Lende等報(bào)道在制備的平菇原生質(zhì)體再生菌株中有少數(shù)菌株不含有dsRNA,且生長(zhǎng)速度顯著高于出發(fā)菌種和含有dsRNA的菌株。因此,從原生質(zhì)體再生菌株中也可以得到脫毒菌株進(jìn)行菌種脫毒。一般認(rèn)為食用菌的孢子帶有病毒,是病毒的主要傳播者,但平菇Shin-Nong菌株的擔(dān)孢子萌發(fā)形成的單核菌絲經(jīng)檢測(cè)僅26%含有病毒。所以,利用不帶病毒的擔(dān)孢子形成的單核

22、菌絲經(jīng)單孢雜交亦可能制備脫毒菌種。本文分別應(yīng)用菌絲尖端脫毒法、原生質(zhì)體再生法、冷凍真空干燥法和單孢雜交法制備了平菇天達(dá)300的脫毒菌種,并對(duì)脫毒菌種的生物學(xué)特性進(jìn)行了比較。材料與方法1菌株平菇天達(dá)300(Pleurotus ostreatus TD300),河南農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室保存。2培養(yǎng)基PDA加富培養(yǎng)基:馬鈴薯2009(馬鈴薯加水煮沸0.5h,雙層紗布過(guò)濾,取汁),蛋白胨19,葡萄糖209,酵母膏19,硫酸鎂29,磷酸二氫鉀29,瓊脂209,補(bǔ)加蒸餾水至1 000ml。馬鈴薯液體培養(yǎng)基:馬鈴薯2009(馬鈴薯加水煮沸0.5h,雙層紗布過(guò)濾,取汁),葡萄糖209,補(bǔ)加蒸餾水至

23、1000ml。RCM再生培養(yǎng)基:蛋白胨29,酵母膏2.0g,硫酸鎂0. 5g,磷酸二氫鉀0.46g,磷酸氫二鉀19,葡萄糖209,瓊脂209,甘露醇109.3g,蒸餾水1 000ml。試管固體培養(yǎng)基:棉籽殼909,麩皮109,水110ml,pH6.5。3脫毒菌種的制備3.1菌絲尖端脫毒平菇天達(dá)300斜面菌種接種在PDA加富培養(yǎng)基平板中,25培養(yǎng)5d,切取菌落最邊緣的尖端2 mm幼嫩菌絲,接種在相同培養(yǎng)基的乎板中,25培養(yǎng)5d后再切取尖端菌絲進(jìn)行繼代培養(yǎng),如此連續(xù)8次,移接PDA斜面培養(yǎng)、4保存,檢測(cè)是否含有病毒dsRNA。3.2原生質(zhì)體再生脫毒采用李成等的方法制備平菇天達(dá)300的原生質(zhì)體,將原

24、生質(zhì)體涂布在RCM再生培養(yǎng)基平板中,25培養(yǎng)7d,挑取再生菌落接種于PDA平板中,25培養(yǎng)5d,選擇生長(zhǎng)快、鏡檢菌絲具鎖狀聯(lián)合的菌落移接PDA斜面培養(yǎng)、保存,檢測(cè)是否含有病毒dsRNA。3.3單孢雜交法按趙柏葉等的方法采集平菇天達(dá)300擔(dān)孢子,用無(wú)菌水洗滌收集器,得到的孢子懸液進(jìn)行梯度稀釋后涂PDA平板,25培養(yǎng)7d,挑取單菌落移接至PDA試管,25培養(yǎng),鏡檢無(wú)鎖狀聯(lián)合者即為單核菌株。將檢測(cè)不含病毒dsRNA的單核菌株兩兩對(duì)峙接種在PDA平板中,取交接的菌絲鏡檢,移接存在鎖狀聯(lián)合者至PDA斜面中培養(yǎng)、4保存,檢測(cè)是否含有病毒dsRNA。3.4冷凍真空干燥法參考Mdrquez等的方法。將平菇天達(dá)

25、300菌絲接種到馬鈴薯液體培養(yǎng)基中,25靜置培養(yǎng)57d,用無(wú)菌鑷子取少量表層邊緣的菌絲,轉(zhuǎn)移到一只無(wú)菌的50ml三角瓶中,加入500ul10%脫脂牛奶,80冷凍30min,然后放人冷凍真空干燥器中干燥,至水分基本抽干,一般46h。將干燥的菌絲稍打碎,先接種馬鈴薯液體培基進(jìn)行培養(yǎng),在觀察到菌絲開(kāi)始生長(zhǎng)時(shí)即轉(zhuǎn)移到PDA平板上,25培養(yǎng)35d,隨后轉(zhuǎn)移至PDA斜面試管上培養(yǎng)、4保存,并檢測(cè)所得的菌株是否含有病毒dsRNA。4dsRNA技術(shù)檢測(cè)菌絲體中的dsRNA按Morris和Dodds21和邱立友等方法。取3.0g平菇天達(dá)300菌絲,加入3ml提取緩沖液(0.2 mol/L甘氨酸,0.lmol/L

26、 Na2 P04,0.6mol/L NaC1,pH 9.5),在研缽中充分研磨后,加入3ml飽和酚、1.5ml氯仿異五醇(25:1)、0.03rnl 10%的SDS和0.03ml B一巰基乙醇,研磨成勻漿,在冰上放30min,偶爾輕輕搖動(dòng)以形成乳濁液。研磨的混合物在8 000 g/min(4),離心20min,保留淡黃色的上層水相,加入無(wú)水乙醇至終濃度為15%(v/v)。稱(chēng)取1.5gCF-11纖維素粉末(Sigma),添加至上述混和物中,混勻后倒入10 ml注射器內(nèi)(注射器乳頭頂部墊有玻璃纖維);用150ml含15%乙醇的1STE緩沖液(0.2 mol/LNaC1、0.1 mol/L Tris

27、、0.002 mol/L EDTA,pH 7.0)進(jìn)行洗脫(直到260 nm吸光值為零),棄去洗脫液,再用10ml 1STE緩沖液洗脫,收集洗脫液,加入2倍體積無(wú)水乙醇和1/10體積的2 mol/L乙酸鈉(pH6.0)溶液,20過(guò)夜析出dsRNA。12 000 r/min,4,離心20 min,收集核酸沉淀,室溫下干燥,然后重懸于100ul雙蒸水中。用1%瓊脂糖凝膠電泳(恒壓60V),至溴酚藍(lán)前沿接近膠板下邊緣為止。然后用0.5g/ml溴化乙錠溶液染色1030min,觀察dsRNA帶型。DNA分子量標(biāo)記是 Hind III digest DNA Marker(TaKaRa).5菌絲生長(zhǎng)速度的測(cè)

28、定分別取源自不同脫毒菌株的直徑lcm的菌塊接入PDA加富平板中心,25培養(yǎng),從第3d起通過(guò)每天劃線(xiàn)測(cè)定平板中菌絲生長(zhǎng)速度,設(shè)置未脫毒的出發(fā)菌種作為對(duì)照。各菌株重復(fù)3板。6脫毒菌株漆酶活力的比較分別取取源自不同脫毒菌株的直徑1 cm的菌塊接入含有100 ml馬鈴薯液體培養(yǎng)基的500ml三角瓶中,25以200 r/min振蕩培養(yǎng)9d,取培養(yǎng)液上清,按胡平平等的方法測(cè)定漆酶活力。各菌株重復(fù)3瓶。7統(tǒng)計(jì)分析脫毒菌株及其出發(fā)菌株的菌絲生長(zhǎng)速度和漆酶活力值均為三次重復(fù)的平均值,差異顯著性分析采用t測(cè)驗(yàn)。結(jié)果1四種脫毒方法得到的脫毒菌種中dsRNA檢測(cè)結(jié)果食用菌和真菌病毒絕大多數(shù)屬于dsRNA病毒。正常真菌

29、細(xì)胞中并不含有大分子dsRNA,如檢測(cè)出含有dsRNA就表明受到了病毒感染。應(yīng)用dsRNA技術(shù)檢測(cè),并經(jīng)DNase和RNase A酶切驗(yàn)證,平菇天達(dá)300出發(fā)菌種含有4個(gè)dsRNA條帶,根據(jù)BioCaptMW軟件計(jì)算,其大小分別是8.2kb、2.5kb、2,lkb和1.lkb。其中1.lkb條帶的量很少,是否出現(xiàn)有較大的偶然性。8.2kh條帶為雙線(xiàn)(doublet),也就是有兩個(gè)大小非常相近的片段,在瓊脂糖凝膠電泳中不易分開(kāi)(圖1)。應(yīng)用菌絲尖端脫毒經(jīng)過(guò)58代,菌絲中dsR- NA的含量明顯減少,尤其是8.2kb條帶,但并不能完全脫去(圖2)。通過(guò)原生質(zhì)體再生法得到多個(gè)再生菌株,有的菌株完全脫

30、去8.2kb條帶(如PR09),有的菌株完全脫去8. 2kb條帶和2.lkb條帶(如PR22),有的菌株則完全脫去8.2kb、2.5kb和2. lkb三條帶(如PR15)(圖3)。所以,該方法為我們進(jìn)一步研究不同dsRNA條帶對(duì)菌株的影響創(chuàng)造了條件,從中可能尋找出導(dǎo)致病毒病暴發(fā)的關(guān)鍵dsRNA條帶。用dsRNA技術(shù)檢測(cè)了平菇天達(dá)300的23株擔(dān)孢子萌發(fā)形成的單核菌絲,發(fā)現(xiàn)僅有2株帶有dsRNA條帶。將不含dsRNA的單核菌絲兩兩配對(duì),得到2株雙核菌株SSH06和SSH11,經(jīng)檢測(cè)該2菌株不含任何dsRNA條帶(圖4),但這種方法制備的脫毒菌株要進(jìn)一步進(jìn)行出菇實(shí)驗(yàn)才能得到可以用于生產(chǎn)的菌株。采用

31、冷凍真空干燥法得到4株脫毒菌株,菌株FL04含有3條dsRNA條帶,F(xiàn)L01、2脫毒菌種菌絲生長(zhǎng)速度的比較在PDA加富平板中培養(yǎng)采用不同脫毒方法制備的脫毒菌種,其生長(zhǎng)速度測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖6。從圖6可以看出,菌絲尖端脫毒菌株HTC8、原生質(zhì)體再生脫毒菌株P(guān)R15和單孢雜交脫毒菌株SSH11生長(zhǎng)速度顯著高于出發(fā)菌種(P0.01),分別比出發(fā)菌種提高22.73%、18.18%和17.27%,而冷凍真空干燥脫毒菌株FL01生長(zhǎng)速度與出發(fā)菌種沒(méi)有差異。另外,脫毒菌株HTC8生長(zhǎng)速度顯著高于PR15和SSHll(P0.01),后二者之間則沒(méi)有差異。3脫毒菌種漆酶活力的比較漆酶是食用菌主要的胞外蛋白,與菌絲生物

32、量和子實(shí)體產(chǎn)量呈顯著正相關(guān)。4株脫毒菌株的漆酶活力均顯著高于出發(fā)菌種(P0.01或P0.05),比出發(fā)菌種分別提高145.83%、134.38%、32.64%和17.71%。4株脫毒菌株之間漆酶活力相比較,尖端脫毒菌株HTC8最高,顯著高于另3株脫毒菌株(P0.01),其次是原生質(zhì)體再生脫毒菌株P(guān)R15,酶活力顯著高于單孢雜交脫毒菌株SSHI1和冷凍真空干燥脫毒菌株FL01 (P%0.01)(圖7)。討論平菇病毒病和平菇病毒主要存在于中國(guó)和韓國(guó)。周素靜在平菇豫6和新831中均發(fā)現(xiàn)含有8.2kb、2.5kb和1.lkb的3個(gè)dsRNA條帶,比我們從平菇天達(dá)300中提取的dsRNA條帶僅少l條。從

33、韓國(guó)平菇佛羅里達(dá)菌株(Postreatusvar. florida)中提取得到5個(gè)dsRNA條帶,大小分別是8 kb、2.4 kb、2.1 kb、1.9 kb和1.7kb。從另一來(lái)自韓國(guó)的平菇菌株ASI2596中分離得到2個(gè)dsRNA條帶,大小分別是2.3kb和2.2kb。另一韓國(guó)的平菇菌株ASI 2504中含有3個(gè)dsRNA條帶,大小分別是2.0 kb、1.84 kb和1.82 kb。對(duì)平菇天達(dá)300所含3個(gè)dsRNA條帶8.2kb、2.5kb和2.lkb的堿基序列分析表明,已測(cè)定的8.2kb條帶的部分序列與平菇球狀ssRNA病毒(OMSV)的核酸同源性最高,達(dá)95%;已測(cè)定的2.5kb和2.lkb條帶的部分序列分別與平菇dsR- NA病毒PoVI的RNA1和CP蛋白基因序列的核酸同源性最高,分別是83%和73%。由于真菌病毒主要是通

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