人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的擴(kuò)增及向成軟骨樣細(xì)胞的誘導(dǎo)分化_圖文_第1頁(yè)
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1、人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的擴(kuò)增及向成軟骨樣細(xì)胞的誘導(dǎo)分化邱麗燕,王金福(浙江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 浙江杭州 310012摘要 從人骨髓中分離和培養(yǎng)間充質(zhì)干細(xì)胞,在原代和傳代培養(yǎng)中其形態(tài)學(xué)上均為貼壁、纖維狀的細(xì)胞,隨著代次的增加細(xì)胞形態(tài)更加趨于一致。流式細(xì)胞儀鑒定CD45、CD34、CD117、HLA-DR 陰性,CD29、CD166陽(yáng)性,并隨著培養(yǎng)的MSCs 代次的增加,陽(yáng)性比率和陰性比率出現(xiàn)相應(yīng)的上升和降低,說明細(xì)胞純度增加。第三代的MSCs 大約有80%處于G 0/G 1期,S+G 2+M 期約20%左右,說明MSCs 有強(qiáng)大的增殖潛能。MSCs 在傳代培養(yǎng)中的最適接種密度約為5.0×10

2、3/cm 2 左右。MSCs 在體外經(jīng)歷了滯緩期、對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期、平穩(wěn)期三個(gè)時(shí)期,傳代培養(yǎng)的MSCs 生長(zhǎng)速度比原代的MSCs 明顯快很多。采用程序降溫法對(duì)MSCs 進(jìn)行凍存,6090天后對(duì)凍存的MSCs 進(jìn)行復(fù)蘇,發(fā)現(xiàn)MSCs 仍可在體外良好生長(zhǎng)46代,特定的MSCs 樣本可以擴(kuò)增10代,說明經(jīng)過凍存的細(xì)胞仍具有良好的增殖能力。對(duì)四例標(biāo)本的前三代MSCs 在體外利用TGF 1和維生素C 誘導(dǎo)兩周后,用RT-PCR 證明MSCs 表達(dá)軟骨特異性的II 型前膠原的mRNA ,說明我們培養(yǎng)的細(xì)胞具有向成軟骨樣細(xì)胞分化的潛能,由此進(jìn)一步證實(shí)其為MSCs 。關(guān)鍵詞 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞 擴(kuò)增 成軟骨樣細(xì)胞Ex

3、pansion and Chondrogenic Induction of Human Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Qiu Liyan, Wang Jinfu(College of Life Science, Zhejiang University, Hangzhou, Zhejiang 310012Abstract MSCs from human BM were isolated by Ficoll density centrifugation and cultured expanded in DMEM-LG containing FBS. MSCs

4、 are adherent and fibroblastic, and maintained similar morphology with passaging. Flow cytometry analysis indicated that MSCs were universally positive for CD29, CD166, and negative for CD34, CD45, CD117, and HLA-DR. At passage 3, cell cycle status analysis by measuring DNA content revealed that a s

5、mall population of the cells was engaged in proliferation (S+G 2+M=20%, and more than 80% of cells were in G 0/G 1 phase. The number of cells in G 0/G 1 phase decreased with passage. In passage culture, It is proper for the cells plated at the density of 5000 cells/cm 2 to propagate. The MSCs of pas

6、sage 1 to 3 were froze in liquid nitrogen by two-step frozen procedure ,after 6090 days, we thawed the frozen MSCs and found the cells can proliferate about 46 passages in vitro ,10 passages especially for sample 17. It suggested that the frozen MSCs still have good expansion ability. At passage 1 t

7、o 3, four cases was induced by the combination of TGF-1 and Vitamine C in vitro for two weeks and expressed articular cartilage matrix-procollagen II mRNA.Key word Mesenchymal stem cells (MSCs, expansion, chondrocyte骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells ,MSCs是存在于骨髓中的一類多能干細(xì)胞。Friedenstein 等1首先發(fā)現(xiàn)MSCs 在體外可分化為

8、骨和軟骨組織,即使經(jīng)過20-30次細(xì)胞分裂后,其分化特性也不會(huì)消失。Pittenger 等2通過擴(kuò)增單個(gè)MSCs 的克隆后,在不同的條件下誘導(dǎo)其分化,結(jié)果分別分化出骨,軟骨,脂肪組織。隨后,Piersma 等人發(fā)現(xiàn)MSCs 在體外除了可以誘導(dǎo)分化為骨、軟骨、脂肪外,甚至還可以分化為肌肉組織3, 4。最近又有學(xué)者證實(shí)MSCs 可以向神經(jīng)細(xì)胞、造血細(xì)胞等多種終末分化細(xì)胞分化5-7。Friedenstein 等1建立了MSCs 分離及擴(kuò)增的方法,并多次對(duì)該方法進(jìn)行了改進(jìn)。但是,人們對(duì)這種細(xì)胞本身的認(rèn)識(shí)還遠(yuǎn)遠(yuǎn)不足。至今還未能篩選到MSCs 特異性的標(biāo)記分子,尚未能建立鑒定MSCs 的統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn),不同實(shí)驗(yàn)

9、室的數(shù)據(jù)之間的可比性較差。所以,尋求MSCs 的穩(wěn)定培養(yǎng)條件還有待進(jìn)一步的研究。本文通過分離和體外培養(yǎng)擴(kuò)增MSCs ,觀察MSCs 的形態(tài),測(cè)定細(xì)胞生長(zhǎng)動(dòng)態(tài),尋求_MSCs合適的接種密度,利用流式細(xì)胞儀對(duì)培養(yǎng)的細(xì)胞進(jìn)行表面標(biāo)記的測(cè)定和細(xì)胞周期的分析,并且通過體外誘導(dǎo)MSCs向軟骨方向分化,檢測(cè)軟骨特有的II型前膠原mRNA的表達(dá),從而研究MSCs的生物學(xué)性狀,為將來(lái)MSCs在組織工程,細(xì)胞工程,基因治療以及臨床應(yīng)用打下基礎(chǔ)。1 材料和方法1.1 MSCs的分離和培養(yǎng):取成人骨髓3-5ml,用等量的PBS洗滌后900×g離心。沉淀用含10% FBS的DMEM-LG 培養(yǎng)液重新混勻后,用

10、Ficoll分離液分離和收集單個(gè)核細(xì)胞層。調(diào)節(jié)細(xì)胞密度至5×106/ml,接種于底面積為25cm2的培養(yǎng)瓶中,放置于37,5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),48h后更換培養(yǎng)液。當(dāng)原代培養(yǎng)的細(xì)胞生長(zhǎng)到培養(yǎng)瓶底的大約90%時(shí),用消化液消化和懸浮細(xì)胞。經(jīng)離心洗滌后,重新懸浮細(xì)胞。按1:3進(jìn)行傳代培養(yǎng)。1.2流式細(xì)胞儀分析培養(yǎng)的細(xì)胞生長(zhǎng)到大約80-90%融合后,用消化液消化成單細(xì)胞懸液,400×g離心后收集細(xì)胞。分別加入熒光標(biāo)記的抗體,4孵育30min,然后PBS洗去未標(biāo)記抗體,10g/L多聚甲醛固定。用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞CD34、CD29、CD45、CD166、CD117、HLA-DR表面

11、抗原。每個(gè)樣本至少分析1×105個(gè)細(xì)胞。1.3細(xì)胞周期的測(cè)定將貼壁細(xì)胞消化,70%冷乙醇4固定24h,PBS液洗滌細(xì)胞二遍, 10mg/mlPI染液染色(4避光30min,用流式細(xì)胞儀FACScan檢測(cè),Multicycle軟件分析結(jié)果。1.4接種密度取生長(zhǎng)旺盛時(shí)期的細(xì)胞,以如下密度:1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0×103/cm2接種于12孔板中。培養(yǎng)10天后用消化液消化,并記數(shù)細(xì)胞量。以接種密度為橫坐標(biāo),細(xì)胞擴(kuò)增的倍數(shù)為縱坐標(biāo)作圖,尋找最合適的細(xì)胞接種密度.1.5生長(zhǎng)曲線的測(cè)定取生長(zhǎng)良好的MSCs的P2,P4,P6代細(xì)胞,

12、以1×104個(gè)/孔接種于24孔板中,加入含10%FBS的DMEM-LG培養(yǎng)液,每24h計(jì)數(shù)3孔細(xì)胞。以細(xì)胞數(shù)為縱坐標(biāo),天數(shù)為橫坐標(biāo)繪制細(xì)胞生長(zhǎng)曲線。1.6 MSCs的凍存將生長(zhǎng)情況良好的P1、P2、P3代的MSCs用消化液消化成單細(xì)胞懸液,400×g離心后收集細(xì)胞沉淀。用凍存液重懸細(xì)胞,使細(xì)胞密度達(dá)到1×106個(gè)/ml。于4冰箱中平衡后,放入預(yù)冷4的程序降溫儀中,用兩步降溫法:第一階段:4-40,降溫速率1/min;第二階段:-40-80,降溫速率為5/min。然后-196液氮罐內(nèi)保存。復(fù)溫時(shí)從液氮中取出樣品立即放入40水浴鍋內(nèi)搖動(dòng)凍存管,1-2min復(fù)溫完畢,

13、400×g離心后收集細(xì)胞,加入新鮮培養(yǎng)液放入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。1.7 成軟骨細(xì)胞的誘導(dǎo)選前三代生長(zhǎng)良好的MSCs,消化后制成單細(xì)胞懸液,以3×104/ml的密度接種于細(xì)胞瓶中。待細(xì)胞達(dá)到80-90%融合后,實(shí)驗(yàn)組3瓶加入成軟骨細(xì)胞的誘導(dǎo)液(DEME高糖培養(yǎng)液,10%胎牛血清,100u/ml青霉素,100g/ml鏈霉素,TGF110ng/ml,抗壞血酸50µg/ml,對(duì)照組繼續(xù)用常規(guī)培養(yǎng)液,每隔三天換液一次。14天后終止誘導(dǎo)。提取總RNA,設(shè)計(jì)II型前膠元的引物序列,COL(II上游:5-TTCAGC TATGGAGATGACAATC-3,下游:5-AGAGTCC

14、TAGAGTGACTGAG-3,產(chǎn)物片斷475bp,進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增。其產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳后觀察,檢測(cè)II型前膠元mRNA的表達(dá)。2 結(jié)果2.1 MSCs的培養(yǎng)擴(kuò)增及形態(tài)特征從骨髓中分離單個(gè)核細(xì)胞接種培養(yǎng)后,24h即可觀察到部分細(xì)胞貼壁,貼壁的細(xì)胞大部分為圓形,橢圓形,有少數(shù)伸出突起的細(xì)胞;48-72h可觀察到貼壁的細(xì)胞大部分呈纖維狀,也有少量的為寬闊、平坦的三角狀、星狀等;接種后5-7天,可見明顯的集落形成(圖1A。集落中的細(xì)胞不斷擴(kuò)增,呈放射狀向周圍擴(kuò)展,逐漸與鄰近集落相融合。大約14-17天的時(shí)間,原代培養(yǎng)的細(xì)胞相互匯合可達(dá)到90%的生長(zhǎng)表面。傳代培養(yǎng)的細(xì)胞24h之內(nèi),絕大部分細(xì)胞

15、貼壁且成纖維狀,更換培養(yǎng)液將未貼壁的造血細(xì)胞排除,約4-7天傳代培養(yǎng)的細(xì)胞達(dá)到90%的融合(圖1B。經(jīng)傳代培養(yǎng)后,細(xì)胞的形態(tài)更加趨于一致。 A B圖1 原代MSCs形成的集落(A和傳代培養(yǎng)形成貼壁細(xì)胞層的MSCs(B(10×10倍 Figure 1. MSC colonies in the first generation culture (A and the confluent MSC layer inthe passaging culture (B (10×102.2 細(xì)胞周期結(jié)果用流式細(xì)胞儀測(cè)定人MSCs內(nèi)DNA的含量,第3代細(xì)胞處于分裂期(S+G2+M的約19.5%

16、左右,處于G0/G1期的細(xì)胞的約81.5%左右(如圖2。 圖2:人MSCs細(xì)胞周期檢測(cè)Figure 2. The cell cycle of MSCs during the Log phase of growth.On the average, 81.5% of cells were at G0/G1, 12.6% at S, and 5.9% at G2/M phase of cell cycle2.3 MSCs表面標(biāo)記物的流式細(xì)胞儀分析結(jié)果經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測(cè)分析,培養(yǎng)的MSCs CD45、CD34、CD117和HLA-DR陰性,CD29、CD166陽(yáng)性(圖3。對(duì)同一標(biāo)本的第二代至第四代進(jìn)行M

17、SCs表面標(biāo)記物的檢測(cè),發(fā)現(xiàn)不但同一代細(xì)胞不同標(biāo)記物陽(yáng)性或陰性的比例不同,不同代次的細(xì)胞同一標(biāo)記物的比例也不同。隨代次的增加,其中CD166的陽(yáng)性比例由68.9%上升到93.5%,CD29的陽(yáng)性比例由48.8%上升到87.4%。 HLA-DR CD29 CD45 CD34 CD117 CD166圖3 流式細(xì)胞儀檢測(cè)MSCs表面標(biāo)記物Figure 3. Flow cytometry analysis of MSCs It indicates that MSCs were universally positive for CD29, CD166,and negative for CD34, CD4

18、5, CD117, and HLA-DR.2.4 細(xì)胞生長(zhǎng)曲線MSCs的生長(zhǎng)曲線呈S型,符合Loigistic生長(zhǎng)曲線。骨髓MSCs傳代培養(yǎng)的細(xì)胞較原代的細(xì)胞生長(zhǎng)要快,一般在接種后的第47天即可鋪滿培養(yǎng)底面;多數(shù)樣本在第710代出現(xiàn)衰老現(xiàn)象??梢园l(fā)現(xiàn)傳代培養(yǎng)具有以下特征(如圖4:(1每次傳代培養(yǎng)的生長(zhǎng)滯緩期24 36h;(2每次傳代培養(yǎng)的骨髓MSCs對(duì)數(shù)增殖期為24天;(3對(duì)數(shù)增殖期結(jié)束后,進(jìn)入平臺(tái)期。圖4是標(biāo)本15的P2、P4、P6代傳代培養(yǎng)的生長(zhǎng)曲線,隨著代次的增加,MSCs 的增殖能力開始減弱。 圖4 人骨髓MSCs 的P2、P4、P6代傳代培養(yǎng)生長(zhǎng)曲線Figure 4. Growth

19、dynamics of MSCs in P2, P4 and P6 passages2.5 最適接種密度將生長(zhǎng)旺盛的細(xì)胞以不同密度接種于12孔板中,倒置顯微鏡下進(jìn)行觀察。以13×103/cm 2的密度接種后,細(xì)胞稀疏,間距大,增殖緩慢,隨培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),細(xì)胞變得扁平,細(xì)胞內(nèi)出現(xiàn)空泡等老化特征。以密度為5.0×103/cm2接種時(shí),細(xì)胞活性好,生長(zhǎng)旺盛,形態(tài)為有規(guī)則的束狀。密度在7×103/cm 2 及其以上時(shí),細(xì)胞生長(zhǎng)擁擠,多見有非貼壁細(xì)胞,隨時(shí)間的推移,細(xì)胞老化快。從圖5可以看到,在繼代培養(yǎng)中間充質(zhì)干細(xì)胞的最適接種密度在5.0×103/cm 2左右。密

20、度高于或低于5.0×103/cm 2,細(xì)胞擴(kuò)增倍數(shù)都要減少。 圖5 接種密度對(duì)MSCs 生長(zhǎng)的影響 圖6 凍存復(fù)蘇后培養(yǎng)擴(kuò)增的細(xì)胞量Figure 5. Effect of plant density on growth of MSCs Figure 6. Expansion of frozen MSCs2.6 凍存后細(xì)胞的復(fù)蘇6090天后,將凍存的MSCs 復(fù)蘇。我們共復(fù)蘇了8份標(biāo)本,發(fā)現(xiàn)24h 內(nèi)大部分細(xì)胞貼壁,培養(yǎng)液中有少量碎片懸浮,復(fù)蘇后首次培養(yǎng)細(xì)胞達(dá)到90%的融合大約需79d 。其中7份標(biāo)本的細(xì)胞在體外繼續(xù)生長(zhǎng)46代左右才開始出現(xiàn)老化特征,另一標(biāo)本17于P1代開始凍存,大約6

21、0天后進(jìn)行復(fù)蘇,復(fù)蘇后在體外又繼續(xù)生長(zhǎng)了10代,細(xì)胞增殖一直旺盛,10代以后才開始出現(xiàn)了老化特征(圖6。2.7 向軟骨細(xì)胞方向的誘導(dǎo):誘導(dǎo)前三天未見細(xì)胞形態(tài)有明顯的變化,從第4-5天起光鏡下觀察細(xì)胞慢慢收縮,細(xì)胞_ 中國(guó)科技論文在線 變小, 細(xì)胞間隙逐漸變大, 細(xì)胞變?yōu)椴灰?guī)則的形狀。 從誘導(dǎo)后的細(xì)胞提取的總 RNA 經(jīng) RT-PCR 擴(kuò)增后, 可見在 400bp500bp 條帶間有明顯的熒光印記, 而對(duì)照組未發(fā)現(xiàn)有表達(dá) (如圖 8) 。 該實(shí)驗(yàn)共重復(fù) 4 個(gè)標(biāo)本,選前三代的細(xì)胞誘導(dǎo),均為相同的結(jié)果。 圖 7 誘導(dǎo)后 MSCs 表達(dá)前 II 型膠原 mRNA 的電泳圖(RT-PCR 檢測(cè)) A:

22、 marker; B,C,D:誘導(dǎo)組; E:對(duì)照組. Fig.8 Expression of procollagen II mRNA in MSCs after induced by TGF-1 (RT-PCR A: marker; B,C,D: the induced cells; E: The controled cells. 討論 1968 年,F(xiàn)riedenstein 等1利用自然貼壁法獲得的骨髓基質(zhì)細(xì)胞中首先證明了 MSCs 的 存在。 但到目前為止仍沒有十分完善的獲得和培養(yǎng)擴(kuò)增 MSCs 的方案, 大多數(shù)實(shí)驗(yàn)室都是根 1 據(jù) Friedenstein 等 報(bào)道的 MSCs 的貼壁性

23、來(lái)分離的。相對(duì)于骨髓中其他種類的細(xì)胞而言, MSC 在骨髓中的豐度并不高,1×1051×106 個(gè)骨髓單個(gè)核細(xì)胞中約含有 1 個(gè) MSCs8。因 此要獲得足量的 MSCs,將體內(nèi)的骨髓 MSC 在離體條件下進(jìn)行分離純化并實(shí)行體外擴(kuò)增就 顯得尤為重要。我們的實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)首先利用密度為 1.077g/ml 的 Ficoll 分離液來(lái)分離單個(gè)核細(xì) 胞,分離到的細(xì)胞接種于 DMEM-LG 培養(yǎng)液中,再利用 MSCs 黏附于培養(yǎng)板的特點(diǎn),通過 更換培養(yǎng)液以去除懸浮生長(zhǎng)的紅細(xì)胞和白細(xì)胞,從而獲得較純的 MSCs。在原代培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn) 除了有成纖維狀的細(xì)胞外, 還有許多圓型的細(xì)胞貼在培養(yǎng)瓶壁上或

24、者成纖維細(xì)胞的上面, 隨 著更換培養(yǎng)液而逐漸去除, 推測(cè)這些細(xì)胞主要為造血細(xì)胞, 所余的貼壁細(xì)胞即主要為 MSCs。 將凍存的 MSCs 復(fù)蘇后,發(fā)現(xiàn)復(fù)蘇后首次培養(yǎng)細(xì)胞潛伏期略長(zhǎng),但到細(xì)胞融合傳代后, 細(xì)胞的生長(zhǎng)情況和常規(guī)傳代培養(yǎng)的間充質(zhì)干細(xì)胞增殖情況差異不大,47 天達(dá)到 90%的融 合。至今為止,國(guó)外內(nèi)尚未有關(guān)于將人 MSCs 冷凍保存并復(fù)蘇后生長(zhǎng)動(dòng)態(tài)的報(bào)道。我們的實(shí) 驗(yàn)根據(jù)“慢凍速融”的原理,利用兩步降溫法對(duì) MSCs 進(jìn)行降溫,同時(shí)參考國(guó)外學(xué)者的研究 加大了凍存液中血清的含量, 二至三個(gè)月后復(fù)蘇了 8 份標(biāo)本。 復(fù)蘇后 MSCs 增殖的情況表明, 復(fù)蘇后的 MSCs 仍具有良好的增殖能

25、力。 MSCs 表面標(biāo)志并非單一性,它表達(dá)間質(zhì)細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和表皮細(xì)胞的表面標(biāo)志,一般 認(rèn)為整合素家族成員 CD29、粘附分子 CD44、CD166 以及 CD105 等是 MSCs 的重要標(biāo)志 物,MSCs 屬非造血類細(xì)胞,造血細(xì)胞表面抗原如造血前體細(xì)胞標(biāo)志抗原 CD34、成熟造血 細(xì)胞標(biāo)志抗原 CD38、白細(xì)胞標(biāo)志抗原 CD45、淋巴細(xì)胞表面抗原 CD11a 和單核細(xì)胞/ 巨噬 細(xì)胞表面抗原 CD14 陰性,HLA-DR(HLA II 類分子)也為陰性 9-11。本實(shí)驗(yàn)選擇了 CD34, CD45, CD166, CD117, CD29 和 HLA-DR 六種抗體, 并對(duì) 7 份生長(zhǎng)良好的

26、標(biāo)本進(jìn)行了檢測(cè), 所得結(jié)果與上述報(bào)道相似。不同代次的 MSCs 表面標(biāo)記物檢測(cè)表明,CD166、CD29 的陽(yáng)性 比例隨著代次的增加而上升,而 CD45、CD34、CD117、HLA-DR 的陽(yáng)性比例則逐漸降低, 說明隨著傳代培養(yǎng),MSCs 逐漸達(dá)到純化。 MSCs 的體外擴(kuò)增與種植密度關(guān)系很大。Bruder8等報(bào)道,人 MSCs 傳代時(shí)以 5000 個(gè) _ 中國(guó)科技論文在線 細(xì)胞/cm2 相對(duì)較低的密度接種時(shí)后,大約兩周后能擴(kuò)增 3-5 倍長(zhǎng)成單層。David 等12報(bào)道, 如果以 1.53 個(gè)細(xì)胞/cm2 的極低密度培養(yǎng), 更加有利于 MSCs 的增殖。 更低的密度接種后, 細(xì)胞在兩周內(nèi)能

27、平均擴(kuò)增 600 倍。Elisabeth 等13發(fā)現(xiàn)小鼠 MSCs 對(duì)低密度接種的反應(yīng)更加 敏感,以 2 個(gè)細(xì)胞/cm2 的密度接種以后細(xì)胞在 12 天內(nèi)平均擴(kuò)增了 400 倍,其最大擴(kuò)增倍數(shù) 大約是人 MSCs 的兩倍, 而且低密度接種 4 周以后小鼠 MSCs 形成的克隆幾乎可以匯合成單 層,但人的在 2-3 周以后即停止了生長(zhǎng),不能形成單層。我們?cè)趯?shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),高密度接種時(shí), 若接種密度過高,容易出現(xiàn)接觸抑制,使 MSCs 缺乏應(yīng)有的生存空間,非貼壁和死亡細(xì)胞增 多而密度相對(duì)較低,細(xì)胞間隙過大,細(xì)胞缺乏應(yīng)有的相互接觸而不能正常生長(zhǎng),本實(shí)驗(yàn)結(jié) 果說明 5000 個(gè)細(xì)胞/cm2 左右是最合適的

28、接種密度,這與 Bruder 的報(bào)道一致,在繼代培養(yǎng)時(shí) 可按照該接種密度進(jìn)行傳代。 我們以極低密度接種后培養(yǎng), 觀察到細(xì)胞分裂二至三次就出現(xiàn) 12 老化現(xiàn)象,未能發(fā)現(xiàn)達(dá)到 David 的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。推測(cè)原因可能是分離到的 MSCs 純度不夠, 加上接種密度低,接種的細(xì)胞可能是增殖能力相對(duì)較差的 MSCs 分化的后代。 干細(xì)胞在增殖過程中處于相對(duì)靜止?fàn)顟B(tài),由短暫擴(kuò)充細(xì)胞完成 DNA 合成和細(xì)胞擴(kuò)充的 任務(wù),以保證差錯(cuò)僅停留在短暫擴(kuò)充細(xì)胞階段12。基于這一特性,本文對(duì) MSCs 進(jìn)行細(xì)胞 周期檢測(cè),結(jié)果表明大部分細(xì)胞處于 G0/G1 期,說明在我們的培養(yǎng)條件下大部分細(xì)胞處于相 對(duì)不活躍的靜止期,只有

29、少數(shù)的細(xì)胞處于活躍的增殖狀態(tài)。 人 MSCs 的體外培養(yǎng)經(jīng)歷了生長(zhǎng)滯緩期, 對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期和生長(zhǎng)平穩(wěn)期三個(gè)時(shí)期。 我們選擇 了第二、四、六代的細(xì)胞進(jìn)行了生長(zhǎng)曲線的分析,發(fā)現(xiàn)這早中晚三代的細(xì)胞其傳代培養(yǎng)的細(xì) 胞的生長(zhǎng)曲線都有以下共同的特征: 細(xì)胞傳代后第一天細(xì)胞數(shù)沒有明顯變化, 有的甚至還有 所減少,傳代培養(yǎng)潛伏期約為 2436 h,第 23 天后細(xì)胞開始增多,細(xì)胞進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期, 46 天以后到第 89 天 MSC 生長(zhǎng)逐漸緩慢,進(jìn)入平臺(tái)期。以后細(xì)胞開始慢慢減少。這說 明當(dāng) MSCs 進(jìn)入一個(gè)新的培養(yǎng)系統(tǒng)中,首先需要細(xì)胞貼壁適應(yīng),然后才開始增殖生長(zhǎng),而當(dāng) 細(xì)胞密度增大和細(xì)胞間發(fā)生接觸后, 就會(huì)限制

30、細(xì)胞的進(jìn)一步增殖。 還發(fā)現(xiàn)早期的細(xì)胞增殖能 力要強(qiáng)于中晚期的細(xì)胞。 許多研究證實(shí)骨髓來(lái)源的 MSCs 植入體內(nèi)后,能向軟骨分化。然而在體外單層培養(yǎng)的 MSCs 向軟骨表型分化還未得到充分證明。有學(xué)者嘗試?yán)玫厝姿蓪?duì) MSCs 進(jìn)行誘導(dǎo),但 地塞米松可以誘導(dǎo) MSCs 表達(dá)堿性磷酸酶, 具有誘導(dǎo)成骨的特性, 并且還可以抑制細(xì)胞增殖 15 。我們選擇了 TGF-1 在 DMEM-HG 培養(yǎng)基中進(jìn)行誘導(dǎo)。本實(shí)驗(yàn)培養(yǎng)的 MSCs 在體外誘 導(dǎo)兩周后,RT-PCR 反應(yīng)證實(shí)該誘導(dǎo)條件下 MSCs 表達(dá)軟骨特異性的 II 型前膠原的 mRNA, 這與尹占海等的報(bào)道結(jié)果相似16。本實(shí)驗(yàn)說明,人 MSCs

31、具有向成軟骨樣細(xì)胞分化的潛能, 誘導(dǎo)后的細(xì)胞表達(dá)軟骨細(xì)胞特有的 II 型前膠原的 mRNA。 參 考 文 獻(xiàn) 1 Friendenstein AJ, Petrakova KV, Kurolesova AI, et al. Heterotopic transplants of bone marrow, Analysis of precursor cells, for osteogenic and hematotoxic tissues. Transplantation J, 1968, 6: 230-247. 2 Pittenger F, Mackay A, Beck S et al. Mult

32、ilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science J,1999, 284: 143147 3 Piersma AH, Brockbank KG, Ploemacher RE, et al. Characterization of fibroblastic stromal cells from murine bone marrow. Hematol J, 1985, 13: 237-43. 4 Wakitani S, Saito T, Caplan AJ. Myogenic cells derived from r

33、at bone marrow mesenchymal stem cells exposed to 5-aza. Muscle Nerve J, 1995, 18: 1412-1426. 5 Robert JD, Annemarie BM. Mesenchymal stem cells: Biology and potential clinical uses. Experimental Hematology J, 2000, 28: 875-884. 6 David JA, Fred HG, Irving LW. Can stem cells cross the lineage boundari

34、es? Nature Medicine _ 中國(guó)科技論文在線 J, 2001, 7: 393-395. 7 Timothy RB, Fabio MVR, Gilmor LK, et al. From marrow to brain: expression of neuronal phenotypes in adult mice. Science J, 2000, 290: 1775-1779. 8 Bruder SP, Fink DJ, Caplan AI. Mesenchymal stem cells in bone development, bone repair, and skeletal regeneration therapy. J Cell Biochem J, 1994, 56: 283-294. 9 郭子寬, 唐佩弦, 劉曉丹. 人骨髓來(lái)源的間充質(zhì)干細(xì)胞體外支持造血的研究. 中國(guó)實(shí)驗(yàn) 血液學(xué)雜志 J, 2000, 8: 93-95. 10 Prockop D J. Marrow stromal cells as stem cells for non-hematopoietic tissues. Science J,

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