基因工程制胰島素生工PPT課件

1、2022-2-7胰島素是由胰島胰島素是由胰島B B細胞受內源性或外細胞受內源性或外源性物質如葡萄糖、乳糖、核糖、精源性物質如葡萄糖、乳糖、核糖、精氨酸、胰高血糖素等的刺激而分泌的氨酸、胰高血糖素等的刺激而分泌的一種蛋白質激素。胰島素是機體內唯一種蛋白質激素。胰島素是機體內唯一降低血糖的激素，同時促進糖原、一降低血糖的激素，同時促進糖原、脂肪、蛋白質合成。外源性胰島素主脂肪、蛋白質合成。外源性胰島素主要用來糖尿病治療。胰島素這類活性要用來糖尿病治療。胰島素這類活性蛋白多肽和細胞因子具有高度生物活蛋白多肽和細胞因子具有高度生物活性，分子量很大，立體結構異常復雜，性，分子量很大，立體結構異常復雜，體

2、外難以人工合成。所以過去糖尿病體外難以人工合成。所以過去糖尿病患者只能服用從牛、豬體中提取的胰患者只能服用從牛、豬體中提取的胰島素來治療；但牛、豬胰島素結構上島素來治療；但牛、豬胰島素結構上與人胰島素有差別，如與豬胰島素與人胰島素有差別，如與豬胰島素B B鏈第鏈第3030個氨基酸殘基不同，長期服用個氨基酸殘基不同，長期服用會引起腎和眼的疾病，故必需要用基會引起腎和眼的疾病，故必需要用基因工程方法獲得重組人胰島素進行治因工程方法獲得重組人胰島素進行治療。療。1第1頁/共120頁2022-2-72基因工程制胰島素三種方法基因工程制胰島素三種方法一、A鏈和B鏈分別表達法化學合成A鏈和B鏈的編碼序列第

3、2頁/共120頁2022-2-73基因工程制胰島素三種方法一、A鏈和B鏈分別表達法表達產(chǎn)物的后期處理路線：第3頁/共120頁2022-2-74基因工程制胰島素三種方法二、人胰島素原表達法基因工程菌的構建戰(zhàn)略：第4頁/共120頁2022-2-75基因工程制胰島素三種方法二、人胰島素原表達法表達產(chǎn)物的后期處理路線：第5頁/共120頁2022-2-76基因工程制胰島素三種方法三、A鏈和B鏈同時表達法第6頁/共120頁2022-2-77方法一：方法一： 由于由于A A鏈和鏈和B B鏈上共存在六個半胱氨酸殘基，體外二鏈上共存在六個半胱氨酸殘基，體外二硫鍵的正確配對率較低，通常只有硫鍵的正確配對率較低，通

4、常只有10% - 20%10% - 20%，因此成，因此成本高。本高。方法二：方法二： 胰島素原能形成良好的空間構象，三對二硫鍵的正胰島素原能形成良好的空間構象，三對二硫鍵的正確配對率提高，折疊率高。工藝路線依然繁瑣。確配對率提高，折疊率高。工藝路線依然繁瑣。方法三：方法三： 需體外折疊。需體外折疊?；蚬こ讨埔葝u素三種方法三種方法比較：第7頁/共120頁2022-2-7基因工程獲取胰島素的步驟基因工程獲取胰島素的步驟一、獲取外源目的基因片段二、選擇與獲取表達載體三、重組目的DNA片段與表達載體四、選擇與獲取表達細胞五、重組體導入表達細胞六、對重組體細胞進行篩選純化鑒定七、工程菌產(chǎn)物鑒定和保存

5、八、發(fā)酵培養(yǎng)8第8頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段1選擇實驗材料2提取RNA，分離RNA3逆轉錄mRNA,得cDNA第一鏈4得雙鏈DNA5DNA序列糾錯6. 目的基因通過細胞克隆擴增7. 目的基因回收及DNA測序，最終目的基因獲取9第9頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段1選擇實驗材料胰島素是一種蛋白質類激素，體內胰島素是胰島B細胞（即胰島細胞）受內源性或外源性物質如葡萄糖、乳糖、核糖、精氨酸、胰高血糖素等的刺激而分泌的。胰島素基因只有在胰島B細胞中才能轉錄出信使RNA，所以用基因工程方法生產(chǎn)胰島素時，選用

6、胰島B細胞為獲取目的基因的實驗材料。10第10頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段2提取RNA，分離RNA 21 總RNA的提取 22 mRNA的純化 23 mRNA的保存11第11頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段21 總RNA的提取 總RNA的抽提方法有多種，TRIzol試劑是使用組廣泛的RNA抽提試劑，主要由苯酚和異硫氰酸胍組成，可以迅速破壞細胞結構，使存在于細胞質及核內的RNA釋放出來，并使核糖體蛋白與RNA分子分離。苯酚雖可有效地變性蛋白質，但不能完全抑制RNA酶活性，因此TRIzol中還加入了8羥

7、基喹啉、異硫氰酸胍、-巰基乙醇等來抑制內源和外源RNase（RNA酶）。TRIzol是從細胞和組織中提取總RNA的即用型試劑，在樣品裂解或勻漿過程中，TRIzol能保持RNA完整性。提取RNA時，首先用液氮研磨材料，勻漿，加入TRIzol試劑，進一步破碎細胞并溶解細胞成分。然后加入氯仿抽提，離心，分離水相和有機相，收集含有RNA的水相，通過異丙醇沉淀，可獲得比較純的總RNA，用于下一步mRNA的純化。12第12頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段211 TRIzol法提取流程（1）樣品處理 培養(yǎng)細胞：收獲細胞1-5*107，移入1.5ml離心管中，加入

8、1ml TRIzol，混勻，室溫靜置5min。 組織：取50-100mg組織（新鮮或-70及液氮中保存的組織均可）置1.5ml離心管中，加入1ml TRIzol充分勻漿，室溫靜置5min。（2）加入0.2ml氯仿，振蕩15s，靜置2min。（3）4離心，12000g*15min，取上清液。（4）加入0.5ml異丙醇，將管中液體輕輕混勻，室溫靜置10min。（5）4離心，12000g*10min，棄上清液。（6）加入1ml 75%乙醇，輕輕洗滌沉淀。4，7500g*5min，棄上清液。（7）晾干，加入適量的DEPCH2O溶解（65促溶10-15min）。13第13頁/共120頁2022-2-7一

9、、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段211 TRIzol法提取流程圖14第14頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段22 mRNA的純化該方法利用mRNA3端含有PolyA（多聚腺苷酸）的特點，當RNA流經(jīng)寡聚dT纖維素柱時，在高鹽緩沖液的作用下，mRNA被特異性的結合在柱上，再用低鹽溶液或蒸餾水洗脫mRNA。經(jīng)過兩次寡聚纖維柱后可得到較高純度的mRNA。15第15頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段2 22 21 1 寡聚（寡聚（dTdT）纖維素柱純化）纖維素柱純化mRNAmRNA（1 1）試劑準備：

10、）試劑準備： 3M3M醋酸鈉（醋酸鈉（pH5.2pH5.2）；）； 0.1M NaOH0.1M NaOH； 上樣緩沖液：上樣緩沖液：20mM Tris-HCl20mM Tris-HCl（pH7.6pH7.6）,0.5M ,0.5M NaCl,1M EDTA (pH8.0),0.1%SLS(NaCl,1M EDTA (pH8.0),0.1%SLS(十二烷基氨酸鈉十二烷基氨酸鈉) )。配。配制時可先配制制時可先配制Tris-HClTris-HCl（pH7.6pH7.6）、）、NaClNaCl、EDTAEDTA（pH8.0pH8.0）的母液，經(jīng)高壓消毒后按各成分確切含量，經(jīng)混合后再高的母液，經(jīng)高壓消

11、毒后按各成分確切含量，經(jīng)混合后再高壓消毒，冷卻至壓消毒，冷卻至6565，加入經(jīng)，加入經(jīng)6565溫育（溫育（30min30min）的）的10%SLS10%SLS至終濃度為至終濃度為0.1%0.1%； 洗脫緩沖液：洗脫緩沖液：10mM Tris-HCl10mM Tris-HCl（pH7.6pH7.6），），1mM EDTA1mM EDTA（pH8.0pH8.0），），0.05%SDS0.05%SDS； 無水乙醇、無水乙醇、70%70%乙醇；乙醇； DEPCDEPC（0.1%0.1%焦炭酸二乙酯）焦炭酸二乙酯） 16第16頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段

12、221 寡聚（dT）纖維素柱純化mRNA（2 2）操作步驟：）操作步驟： 將將0.5-1.0g0.5-1.0g寡聚（寡聚（dTdT）纖維懸浮于）纖維懸浮于0.1M0.1M的的NaOHNaOH溶液中。溶液中。 用用DEPCDEPC處理的處理的1ml 1ml 注射器或適當?shù)募毠?，將寡聚（注射器或適當?shù)募毠?，將寡聚（dTdT）纖維素裝柱）纖維素裝柱0.5-0.5-1ml1ml，用，用3 3倍柱床體積的倍柱床體積的DEPCH2ODEPCH2O洗柱。洗柱。 使用使用1 1* *上樣緩沖液洗柱，直至洗出液上樣緩沖液洗柱，直至洗出液pHpH值小于值小于8.08.0。 將將RNARNA溶解于溶解于DEPCH2

13、ODEPCH2O中，在中，在6565中溫育中溫育10min10min左右，冷卻至室溫后加入等左右，冷卻至室溫后加入等體體2 2* *上樣緩沖液，混勻后上柱，立即收集流出液。當上樣緩沖液，混勻后上柱，立即收集流出液。當RNARNA上樣液全部進入柱床上樣液全部進入柱床后，再用后，再用1 1* *上樣緩沖液洗柱，繼續(xù)收集流出液。上樣緩沖液洗柱，繼續(xù)收集流出液。 將所有流出液于將所有流出液于6565加熱加熱5min5min，冷卻至室溫后再次上柱，收集流出液。，冷卻至室溫后再次上柱，收集流出液。 用用5-105-10倍柱床體積的倍柱床體積的1 1* *上樣緩沖液洗柱，每管上樣緩沖液洗柱，每管1ml1ml

14、分步收集，分步收集，OD260OD260測定測定RNARNA含量。前部分收集管中流出液的含量。前部分收集管中流出液的OD260OD260值很高，其內含物為無值很高，其內含物為無polyApolyA尾的尾的RNARNA。后部分收集管中流出液的。后部分收集管中流出液的OD260OD260值很低或無吸收。值很低或無吸收。 用用2-32-3倍柱容積的洗脫緩沖液洗脫倍柱容積的洗脫緩沖液洗脫polypoly（A+A+）RNARNA，分步收集，每部分為，分步收集，每部分為1/3-1/21/3-1/2柱體積。柱體積。 OD260OD260測定測定polypoly（A+A+）RNARNA分布，合并含分布，合并含

15、polypoly（A+A+）RNARNA的收集管，加入的收集管，加入1/101/10體積體積3M NaAc3M NaAc（pH5.2pH5.2）、）、2.52.5倍體積的預冷無水乙醇，混勻，倍體積的預冷無水乙醇，混勻，-20-20放置放置30min30min。 44離心，離心，10000g10000g* *15min15min，小心吸棄上清。用，小心吸棄上清。用70%70%乙醇洗滌沉淀。乙醇洗滌沉淀。44離心，離心，10000g10000g* *5min5min，棄上清，室溫晾干。，棄上清，室溫晾干。 用適量的用適量的DEPCH2ODEPCH2O溶解溶解RNARNA。17第17頁/共120頁2

16、022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段221 寡聚（dT）纖維素柱純化mRNA（3 3）注意事項）注意事項 整個實驗過程必須防止整個實驗過程必須防止RnaseRnase的污染。的污染。 步驟中將步驟中將RNARNA溶液置溶液置6565中溫育然后冷卻至室溫再上樣的目中溫育然后冷卻至室溫再上樣的目的有兩個，一個是破壞的有兩個，一個是破壞RNARNA的二級結構，尤其是的二級結構，尤其是mRNA polymRNA poly（A+A+）尾處的二級結構，使尾處的二級結構，使polypoly（A+A+）尾充分暴露，從而提高）尾充分暴露，從而提高polypoly（A+A+）RNARNA

17、的回收率；另一個目的是能解離的回收率；另一個目的是能解離mRNAmRNA與與rRNArRNA的結合，否則會的結合，否則會導致導致rRNArRNA的污染。所以此步驟不能省略。的污染。所以此步驟不能省略。 十二烷基肌氨酸鈉鹽在十二烷基肌氨酸鈉鹽在1818以下溶解度下降，會阻礙柱內液以下溶解度下降，會阻礙柱內液體流動，若室溫低于體流動，若室溫低于1818最好用最好用LiClLiCl替代替代NaClNaCl。 寡聚（寡聚（dTdT）纖維素柱可在）纖維素柱可在44貯存，反復使用。每次使用前應貯存，反復使用。每次使用前應該依次用該依次用NaOHNaOH、滅菌、滅菌ddH2OddH2O、上樣緩沖液洗柱。、上

18、樣緩沖液洗柱。 一般而言，一般而言，107107哺乳動物培養(yǎng)細胞能提取哺乳動物培養(yǎng)細胞能提取1-5g poly1-5g poly（A+A+）RNARNA，約相當于上柱總，約相當于上柱總RNARNA量的量的1%-2%1%-2%。18第18頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段23 mRNA的保存用少量水溶解mRNA，即可用于cDNA合成或保存在70%乙醇中并于-70下貯存。19第19頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段胰島素基因胰島素基因mRNAmRNA序列序列20第20頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段胰島素基因胰島

19、素基因mRNAmRNA序列序列NCBINCBI中搜索得21第21頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段3逆轉錄mRNA,得cDNA第一鏈 mRNAmRNA在反轉錄酶的作用下由引物引導合成在反轉錄酶的作用下由引物引導合成cDNAcDNA。加入高濃度的加入高濃度的 OligoOligo（dTdT）引物，）引物， ，OligoOligo（dTdT）引物與引物與 mRNAmRNA 的的 33 末端的末端的 polypoly（A A）配對，引導）配對，引導反轉錄酶以反轉錄酶以 mRNAmRNA 為模板合成第一鏈為模板合成第一鏈 cDNAcDNA 。這種這種 cDN

20、AcDNA 合成的方法在合成的方法在 cDNAcDNA 文庫構建中應用極文庫構建中應用極為普遍，其缺點主要是由于為普遍，其缺點主要是由于 cDNAcDNA 末端存在較長末端存在較長的的 polypoly（A A）而影響）而影響 cDNAcDNA 測序。（原因：測序。（原因：oligo oligo （ dT dT ）結合在）結合在 mRNA mRNA 的的 3 3 端，因此合成全端，因此合成全長的長的 cDNA cDNA 需要反轉錄酶從需要反轉錄酶從 mRNA mRNA 分子的一端移分子的一端移動到另一端，有時這種全合成難以達到）動到另一端，有時這種全合成難以達到）22第22頁/共120頁202

21、2-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段4得雙鏈DNA 4.1合成cDNA第二鏈得雙鏈DNA 4.2將DNA雙鏈通過PCR技術進行擴增 23第23頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段4.1合成cDNA第二鏈得雙鏈DNA mRNAmRNAcDNAcDNA 雜合雙鏈中的雜合雙鏈中的 mRNAmRNA 鏈在鏈在 RNARNA 酶酶 H H 作用下先形成很多作用下先形成很多切口，切口， mRNAmRNA 鏈就被切割成很多的小片段，這些小片段為大腸桿鏈就被切割成很多的小片段，這些小片段為大腸桿菌菌 DNADNA 聚合酶聚合酶 提供了合成第二鏈的

22、引物。大腸桿菌提供了合成第二鏈的引物。大腸桿菌 DNADNA 聚合聚合酶酶 以第一鏈以第一鏈 cDNAcDNA 為模板合成一段段互補的為模板合成一段段互補的 cDNAcDNA 片段。這片段。這些些 cDNAcDNA 片段進而在片段進而在 DNADNA 連接酶的作用下連接成一條鏈，即連接酶的作用下連接成一條鏈，即 cDNAcDNA 的第二鏈。遺留在的第二鏈。遺留在 5-5-末端的一段很小的末端的一段很小的 mRNAmRNA 也被大腸桿菌也被大腸桿菌 DNADNA 聚合酶聚合酶 的的 5533 核酸外切酶和核酸外切酶和 RNARNA 酶酶 H H 降解，暴露出與第降解，暴露出與第一鏈一鏈 cDNA

23、cDNA 對應的對應的 3-3-端部分序列。同時，大腸桿菌端部分序列。同時，大腸桿菌 DNADNA 聚合酶聚合酶 的的 3-53-5 核酸外切酶的活性可將暴露出的第一鏈核酸外切酶的活性可將暴露出的第一鏈 cDNAcDNA 的的 3-3-端部端部分消化掉，形成平端或差不多的平端分消化掉，形成平端或差不多的平端優(yōu)點優(yōu)點: : a) a)合成合成cDNAcDNA的效率高的效率高 b)b)直接利用第一鏈的反應產(chǎn)物直接利用第一鏈的反應產(chǎn)物, ,不需純化不需純化 c)c)避免使用避免使用S1S1核酸酶來切割雙鏈核酸酶來切割雙鏈cDNAcDNA24第24頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段

24、一、獲取外源目的基因片段4.1合成cDNA第二鏈得雙鏈DNA 25第25頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段4.2將DNA雙鏈通過PCR技術進行擴增 模板模板DNADNA的變性的變性向離心管加入模板、引物、耐熱的向離心管加入模板、引物、耐熱的DNADNA聚合酶、聚合酶、PCRPCR緩沖液（緩沖液（ 500mm01500mm01L L KClKCl；100mmol100mmolL TrisL Tris一一HCl(pH8.4)HCl(pH8.4)，150mmol150mmolL MgCl2L MgCl2，lmglmgm1m1明膠）、明膠）、5mmo15mm

25、o1L dNTPL dNTP貯備液，然后加熱至貯備液，然后加熱至9393左右一定時間后，使模板左右一定時間后，使模板DNADNA雙鏈或經(jīng)雙鏈或經(jīng)PCRPCR擴增形成的雙鏈擴增形成的雙鏈DNADNA解離，使之成為單鏈，解離，使之成為單鏈，以便它與引物結合，為下輪反應作準備以便它與引物結合，為下輪反應作準備26第26頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段4.2將DNA雙鏈通過PCR技術進行擴增 模板模板DNADNA與引物的退火與引物的退火( (復性復性) )模板模板DNADNA經(jīng)加熱變性成單鏈后，溫度降至經(jīng)加熱變性成單鏈后，溫度降至5555左右，引物與模板左

26、右，引物與模板DNADNA單鏈的互補序列單鏈的互補序列配對結合配對結合；27第27頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段4.2將DNA雙鏈通過PCR技術進行擴增 引物的延伸引物的延伸DNADNA模板模板-引物結合引物結合 物在物在TaqDNATaqDNA聚合酶的聚合酶的作用下，以作用下，以dNTPdNTP為反應原料，靶序列為模為反應原料，靶序列為模板，按堿基配對與半保留復制原理，合成板，按堿基配對與半保留復制原理，合成一條新的與模板一條新的與模板DNA DNA 鏈互補的半保留復制鏈互補的半保留復制鏈，重復循環(huán)變性鏈，重復循環(huán)變性-退火退火-延伸三過程，延

27、伸三過程，就可獲得更多的就可獲得更多的“半保留復制鏈半保留復制鏈”，而且，而且這種新鏈又可成為下次循環(huán)的模板。每完這種新鏈又可成為下次循環(huán)的模板。每完成一個循環(huán)需成一個循環(huán)需 2 24 4分鐘，分鐘，2 23 3小時就能將小時就能將待擴目的基因擴增放大幾百萬倍。待擴目的基因擴增放大幾百萬倍。28第28頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段5.目的基因回收純化及DNA測序糾錯 5.1 將目的基因進行回收純化 5.2 對目的基因進行測序 5.3 DNA序列糾錯29第29頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段 5.1 將

28、目的基因進行回收純化1) 1) 在在PCRPCR試管中加入凝膠緩沖液進行瓊脂糖凝膠電泳電試管中加入凝膠緩沖液進行瓊脂糖凝膠電泳電泳到適當位置后在目的泳到適當位置后在目的DNADNA條帶的前端挖一長方形槽，條帶的前端挖一長方形槽，向槽中加入融化的低熔點膠，待凝固后進行電泳。向槽中加入融化的低熔點膠，待凝固后進行電泳。2 2）當）當DNADNA進入低熔點膠中心時停止電泳。紫外燈下切下進入低熔點膠中心時停止電泳。紫外燈下切下目的條帶的低熔點膠。目的條帶的低熔點膠。 3) 3) 將切下的膠放到離心管中，加入將切下的膠放到離心管中，加入200200的緩沖的緩沖液，液，6565溫浴溫浴3 3分鐘以融化低熔

29、點膠。分鐘以融化低熔點膠。4) 4) 然后分別用酚然后分別用酚/ /氯仿，氯仿抽提一次。取上清，加入氯仿，氯仿抽提一次。取上清，加入2 2倍體積的無水乙醇，倍體積的無水乙醇，-20-20沉淀沉淀DNA 2hDNA 2h以上，以上，12 12 000rpm000rpm離心離心15min15min，棄上清，用，棄上清，用70%70%乙醇洗滌，吹干后乙醇洗滌，吹干后溶于溶于10l10l無菌水中。無菌水中。注意事項：在紫外燈下切出含有目的注意事項：在紫外燈下切出含有目的DNA DNA 片段的瓊脂糖片段的瓊脂糖凝膠時應注意要快速操作，以免損傷。凝膠時應注意要快速操作，以免損傷。30第30頁/共120頁2

30、022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段 5.2 對目的基因進行測序利用利用DNADNA聚合酶，以待測單鏈聚合酶，以待測單鏈DNADNA為模板，以為模板，以dNTPdNTP為底為底物，設立四種相互獨立的測序反應體系，在每個反應物，設立四種相互獨立的測序反應體系，在每個反應體系中加入不同的體系中加入不同的ddNTPddNTP作為鏈延伸終止劑。在測序作為鏈延伸終止劑。在測序引物引導下，按照堿基配對原則，每個反應體系中合引物引導下，按照堿基配對原則，每個反應體系中合成一系列長短不一的引物延伸鏈，通過高分辨率的變成一系列長短不一的引物延伸鏈，通過高分辨率的變性聚丙烯酰胺凝膠電泳分

31、離，放射自顯影檢測后，從性聚丙烯酰胺凝膠電泳分離，放射自顯影檢測后，從凝膠底部到頂部按凝膠底部到頂部按55至至33方向讀出新合成鏈序列，方向讀出新合成鏈序列，由此推知待測模板鏈的序列。由此推知待測模板鏈的序列。31第31頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段 5.2 對目的基因進行測序32第32頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段 5.3 DNA序列糾錯1 1、將待突變基因克隆到突變載體上；、將待突變基因克隆到突變載體上；2 2、制備含突變基因的單鏈模板；、制備含突變基因的單鏈模板；3 3、人工合成一段改變了堿基

32、順序的寡核苷酸片段，以、人工合成一段改變了堿基順序的寡核苷酸片段，以此作為引物，在體外合成互補鏈，獲得含有錯配堿基此作為引物，在體外合成互補鏈，獲得含有錯配堿基的完整雙鏈的完整雙鏈M13DNAM13DNA4 4、轉化和初步篩選異源雙鏈、轉化和初步篩選異源雙鏈DNADNA分子轉化大腸桿菌后，分子轉化大腸桿菌后，產(chǎn)生野生型、突變型的同源雙鏈產(chǎn)生野生型、突變型的同源雙鏈DNADNA分子。分子。5 5、用誘變的寡核苷酸引物作為探針，通過雜交即可鑒、用誘變的寡核苷酸引物作為探針，通過雜交即可鑒定出突變體定出突變體 33第33頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段6

33、、目的基因通過細胞克隆擴增6.1 目的基因與運載體結合6.2 將目的基因導入受體細胞并使之擴增6.3 篩選獲得了重組DNA分子的受體細胞克隆34第34頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段6.1 目的基因與運載體結合用與提取目的基因相同的限制酶切割質粒使之出用與提取目的基因相同的限制酶切割質粒使之出現(xiàn)一個切口；將目的基因插入切口處，讓目的基現(xiàn)一個切口；將目的基因插入切口處，讓目的基因的黏性末端與切口上的黏性末端互補配對；在因的黏性末端與切口上的黏性末端互補配對；在連接酶的作用下連接形成重組連接酶的作用下連接形成重組DNADNA分子。分子。35第35頁/共

34、120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段6.2 將目的基因導入受體細胞并使之擴增要讓目的基因表達，必須將它導入受體細胞并進行擴要讓目的基因表達，必須將它導入受體細胞并進行擴增。為獲得目的基因的表達產(chǎn)物時，通常以大腸桿菌增。為獲得目的基因的表達產(chǎn)物時，通常以大腸桿菌等無害易得的細菌為受體。等無害易得的細菌為受體。注意：注意：為改進某種生物時，將欲改進的生物細胞為受為改進某種生物時，將欲改進的生物細胞為受體。為使重組的體。為使重組的DNADNA分子更容易進入受體細胞，通常還分子更容易進入受體細胞，通常還要用一些物質對受體細胞進行處理，使受體細胞具有要用一些物質對受體

35、細胞進行處理，使受體細胞具有更大的通透性，例如改變更大的通透性，例如改變PHPH值，加入氯化鈣等。值，加入氯化鈣等。36第36頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段6.3 篩選獲得重組DNA分子的受體細胞克隆前幾步的處理十分繁鎖，為保證目的基因得到有效利前幾步的處理十分繁鎖，為保證目的基因得到有效利用，通常用大量的受體細胞來接受不多的目的基因。用，通常用大量的受體細胞來接受不多的目的基因。這樣，處理的受體細胞中真正攝入了目的基因的很少，這樣，處理的受體細胞中真正攝入了目的基因的很少，必須將它從中檢測出來。細菌的檢測，將每個受體細必須將它從中檢測出來。細菌

36、的檢測，將每個受體細胞單獨培養(yǎng)形成菌落，檢測菌落中是否有目的基因的胞單獨培養(yǎng)形成菌落，檢測菌落中是否有目的基因的表達產(chǎn)物。淘汰無表達產(chǎn)物的菌落，保留有表達產(chǎn)物表達產(chǎn)物。淘汰無表達產(chǎn)物的菌落，保留有表達產(chǎn)物的進一步培養(yǎng)、研究。多細胞生物的檢測，將每個受的進一步培養(yǎng)、研究。多細胞生物的檢測，將每個受體細胞單獨培養(yǎng)并誘導發(fā)育成完整個體，檢測這些個體細胞單獨培養(yǎng)并誘導發(fā)育成完整個體，檢測這些個體是否攝入目的基因，攝入的基因是否表達（是否表體是否攝入目的基因，攝入的基因是否表達（是否表現(xiàn)出相應的性狀）?，F(xiàn)出相應的性狀）。37第37頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因

37、片段7、目的基因回收及DNA測序，最終目的基因獲取7.1 7.1 內容物釋放內容物釋放將培養(yǎng)物加入試管，加入將培養(yǎng)物加入試管，加入EDTAEDTA及去污劑（及去污劑（），用堿處理細菌，使細菌的細胞壁破裂，釋），用堿處理細菌，使細菌的細胞壁破裂，釋放出細胞內容物（在強堿環(huán)境下，宿主菌的線性放出細胞內容物（在強堿環(huán)境下，宿主菌的線性雙鏈雙鏈DNADNA片段中的氫鍵斷裂，雙鏈解離變性，而質片段中的氫鍵斷裂，雙鏈解離變性，而質粒粒DNADNA共價閉合環(huán)狀的雙鏈并不完全分離）。共價閉合環(huán)狀的雙鏈并不完全分離）。38第38頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段7、目

38、的基因回收及DNA測序，最終目的基因獲取7.2 7.2 加酸、離心加酸、離心然后加入高濃度酸性鹽，然后加入高濃度酸性鹽，PHPH恢復至中性（變性的恢復至中性（變性的染色體染色體DNADNA與變性的蛋白質以及細胞碎片凝聚成網(wǎng)與變性的蛋白質以及細胞碎片凝聚成網(wǎng)絡狀大分子不溶性沉淀物，而質粒絡狀大分子不溶性沉淀物，而質粒DNADNA又恢復天然又恢復天然構型，能溶解在上清液中），通過離心把染色體構型，能溶解在上清液中），通過離心把染色體DNADNA，蛋白質，蛋白質-SDS-SDS復合物等一起除去。復合物等一起除去。39第39頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段

39、7、目的基因回收及DNA測序，最終目的基因獲取7.3 7.3 切割、電泳切割、電泳利用限制性內切酶特異的識別利用限制性內切酶特異的識別DNADNA特異的核苷酸序特異的核苷酸序列，并切割列，并切割DNADNA，產(chǎn)生一定長度的，產(chǎn)生一定長度的DNADNA片段，通過片段，通過電泳對酶切前后產(chǎn)物分析可以鑒別目的基因電泳對酶切前后產(chǎn)物分析可以鑒別目的基因40第40頁/共120頁2022-2-7一、獲取外源目的基因片段一、獲取外源目的基因片段7、目的基因回收及DNA測序，最終目的基因獲取7.4 7.4 回收純化、測序回收純化、測序對目的基因進行回收純化，再測序對目的基因進行回收純化，再測序41第41頁/共

40、120頁2022-2-7二二. .表達載體的構建表達載體的構建pET28apET28a（含有T7噬菌體啟動子、乳糖操縱子、核糖體結合位點、His6標簽序列、凝血酶切割位點、多克隆位點、T7噬菌體終止子、乳糖阻遏序列、pBR322復制子ori、fl噬菌體復制子、卡那霉素篩選標記序列等。）42第42頁/共120頁2022-2-7二二. .表達載體的構建表達載體的構建43第43頁/共120頁原因： 1.T7噬菌體啟動子、核糖體結合位點等引導目的基因高效轉錄和翻譯。 2.乳糖操縱子和乳糖阻遏序列存在的意義主要在于，當目的蛋白對大腸桿菌有毒性的時候，可以通過添加阻遏物，控制目的蛋白以較低水平表達。 3.

41、His6標簽序列、凝血酶切割位點存在的意義主要在于方便利用針對His6的整合層析分離純化蛋白、然后利用凝血酶去除切割標簽蛋白。 4.卡那霉素抗性基因編碼的氨基糖苷磷酸轉移酶，對卡那霉素進行修飾，阻斷其與核糖體結合作用。2022-2-7二.表達載體的構建44第44頁/共120頁2022-2-7三三. .重組目的重組目的DNADNA片段和表達載體片段和表達載體 用用T7T7噬菌體噬菌體DNADNA連接酶將質粒連接酶將質粒載體載體pET28apET28a經(jīng)經(jīng)EcoREcoR和和BamHBamH 酶切的片段與目的基因經(jīng)酶切的片段與目的基因經(jīng)EcoREcoR和和BamHBamH 酶切的片段酶切的片段連接

42、起來，構成重組連接起來，構成重組DNADNA分子。分子。 使用雙酶切：使用雙酶切：DNADNA分子重組時分子重組時為了保證目的片段以正確的為了保證目的片段以正確的方向連接進入載體，往往盡方向連接進入載體，往往盡可能選擇兩種具有不同黏性可能選擇兩種具有不同黏性末端的酶分別酶切目的末端的酶分別酶切目的DNADNA分分子和載體，這種雙酶切雖然子和載體，這種雙酶切雖然使載體和目的使載體和目的DNADNA都產(chǎn)生兩種都產(chǎn)生兩種不同的黏性末端，但是連接不同的黏性末端，但是連接酶會選擇把相同的黏性末端酶會選擇把相同的黏性末端連接起來，從而保證目的基連接起來，從而保證目的基因只以一個方向連接入載體。因只以一個方

43、向連接入載體。45第45頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞四、選擇與獲取表達細胞1、選擇大腸桿菌2、培養(yǎng)大腸桿菌2022-2-746第46頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞1、選擇大腸桿菌原因：1）繁殖迅速、培養(yǎng)簡單、操作方便、遺傳穩(wěn)定2）基因克隆及表達系統(tǒng)成熟完善3）全基因組測序完成，共有4405個開放性閱讀框架4）被美國FDA批準為安全的基因工程受體生物2022-2-747第47頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞四、選擇與獲取表達細胞 開放閱讀框（ORF）是生物個體的基因組中，可能是蛋白質編碼序列的部分。基因中的ORF包含并位于開始編碼與終止編碼之間。由于一段DNA或RNA序列有多種

44、不同讀取方式，因此可能同時存在許多不同的開放閱讀框架。開放閱讀框包含一段可以編碼蛋白的堿基序列，不能被終止子打斷。2022-2-748第48頁/共120頁2、大腸桿菌的培養(yǎng)（1）LB（Luria-Bertain)液體培養(yǎng)基配制精解蛋白胨(bacto-tryptone)1.0%酵母浸出粉(bacto-extract)0.5%氯化鈉1.0%攪拌使之完全溶解，用5molNaOH(about0.2ml/1000ml培養(yǎng)基）調pH至7.0，如用進口試劑可不必調， 高壓滅菌20min(120 0.1Mpa) 四、選擇與獲取表達細胞2022-2-749第49頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞2022-2-

45、750（2）牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基 組成成分：牛肉膏 3g,蛋白胨 10g,Nacl 5g,瓊脂 1520g,水1000mL,PH7.47.6。具體配置步驟： 1.稱藥品 按實際用量計算后,按配方稱取各種藥品放入大燒杯中.牛肉膏可放在小燒杯或表面皿中稱量,用熱水溶解后倒入大燒杯;也可放在稱量紙上稱量,隨后放入熱水中,牛肉膏使與稱量紙分離,立即取出紙片.蛋白胨極易吸潮,故稱量時要迅速。第50頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞2022-2-751具體配置步驟： 2.加熱溶解 在燒杯中加入少于所需要的水量,然后放在石棉網(wǎng)上,小火加熱,并用玻棒攪拌,待藥品完全溶解后再補充水分至所需量.若配制固體培養(yǎng)基,

46、則將稱好的瓊脂放入己溶解的藥品中,再加熱融化,此過程中,需不斷攪拌,以防瓊脂糊底或溢出,最后補足所失的水分。 3. 調pH 檢測培養(yǎng)基的pH,若pH偏酸,可滴加lmol/L NaOH,邊加邊攪拌,并隨時用pH試紙檢測,直至達到所需pH范圍.若偏堿,則用lmol/L HCl進行調節(jié).pH的調節(jié)通常放在加瓊脂之前.應注意pH值不要調過頭,以免回調而影響培養(yǎng)基內各離子的濃度。第51頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞2022-2-752具體配置步驟： 4.過濾 液體培養(yǎng)基可用濾紙過濾,固體培養(yǎng)基可用4層紗布趁熱過濾,以利培養(yǎng)的觀察.但是供一般使用的培養(yǎng)基,這步可省略。5.分裝 按實驗要求,可將配制的

47、培養(yǎng)基分裝入試管或三角瓶內.分裝時可用漏斗以免使培養(yǎng)基沾在管口或瓶口上而造成污染. 分裝量:固體培養(yǎng)基約為試管高度的l/5,滅菌后制成斜面.分裝入三角瓶內以不超過其容積的一半為宜.半固體培養(yǎng)基以試管高度的1/3為宜,滅菌后垂直待凝。第52頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞2022-2-753具體配置步驟： 6.加棉塞 試管口和三角瓶口塞上用普通棉花(非脫脂棉)制作的棉塞.棉塞的形狀,大小和松緊度要合適,四周緊貼管壁,不留縫隙,才能起到防止雜菌侵入和有利通氣的作用.要使棉塞總長約3/5塞入試管口或瓶口內,以防棉塞脫落.有些微生物需要更好的通氣,則可用8層紗布制成通氣塞.有時也可用試管帽或塑料塞

48、代替棉塞。 7.包扎 加塞后,將三角瓶的棉塞外包一層牛皮紙或雙層報紙,以防滅菌時冷凝水沾濕棉塞.若培養(yǎng)基分裝于試管中,則應以5支或7支在一起,再于棉塞外包一層牛皮紙,用繩扎好.然后用記號筆注明,培養(yǎng)基名稱,組別,日期。 第53頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞2022-2-754具體配置步驟： 8.滅菌 將上述培養(yǎng)基于121.3濕熱滅菌20min.如因特殊情況不能及時滅菌,則應故人冰箱內暫存。 9.無菌檢查 將滅菌的培養(yǎng)基放入37溫箱中培養(yǎng)2448h,無菌生長即可使用,或貯存于冰箱或清潔的櫥內,備用。 第54頁/共120頁四、選擇與獲取表達細胞2022-2-755大腸桿菌培養(yǎng)：采用劃痕接種法

49、。用接種環(huán)從菌種中沾取少量菌液，劃線。37攝氏度，恒溫培養(yǎng)48到72小時，因為接種時和具體培養(yǎng)條件的不同，其生長一般都在2天外才能長出明顯的菌落。 菌落特征：乳白色，圓形，菌落邊緣整齊，表面光滑，表面和背面顏色一致。 第55頁/共120頁五、重組DNA導入表達細胞 氯化鈣轉化法氯化鈣轉化法 對數(shù)生長期的大腸桿菌經(jīng)冰浴的氯化鈣低滲溶液處理，其細胞膜通透性增加，成為感受態(tài)細胞（感受態(tài)是指受體細胞處于容易吸收外源DNA的一種生理狀態(tài)），加入重組質粒，重組質粒與鈣離子形成復合物并粘附于細菌細胞膜表面，經(jīng)42熱休克處理，細胞膜通透性增加，重組質粒DNA進入感受態(tài)細胞（導入重組體）。細菌在不含抗生素的培養(yǎng)

50、基中培養(yǎng)一定時間，使含有重組質粒的細胞復原并表達抗生素抗性基因，涂布于含有抗生素的培養(yǎng)板上，生長得到轉化子。2022-2-756第56頁/共120頁氯化鈣法轉化的原理機制：氯化鈣法轉化的原理機制：在0 的CaCl2 低滲溶液中，細菌細胞發(fā)生膨脹， Ca2+ 使細胞膜磷脂層形成液晶結構，促使細胞外膜與內膜間隙中部分核酸酶解離，誘導形成感受態(tài)。此外，Ca 2+ 能與加入的DNA分子結合，形成抗脫氧核糖核酸酶的羥基磷酸鈣復合物，黏附在胞膜的外表面；42 熱激處理，細胞膜的液晶結構發(fā)生擾動，出現(xiàn)間隙。五、重組DNA導入表達細胞2022-2-757第57頁/共120頁氯化鈣轉化法要點：氯化鈣轉化法要點：

51、1. 氯化鈣（二價鈣離子）的作用：提高細胞壁（膜）的通透性；2. 熱激后迅速轉移到冰上：促使質粒DNA轉移進入胞內；3. 這種轉化方法適用于雙鏈環(huán)狀DNA（質粒），線型DNA不能采用此法。（在自然界自然發(fā)生的轉化過程中，進入細菌細胞中的為單鏈DNA。）五、重組DNA導入表達細胞2022-2-758第58頁/共120頁標準質粒DNA、重組質粒DNA、大腸桿菌JM109、離心機、0.1mol/L CaCl2 、LB培養(yǎng)基、微量移液器、微量離心管、抗生素、20mmol/L MgSO4、微孔濾膜及濾器、培養(yǎng)皿、三角瓶、恒溫水浴箱 、恒溫搖床 、超凈工作臺 、玻璃涂布棒、95% 乙醇 實驗材料：實驗材料

52、：五、重組DNA導入表達細胞2022-2-759第59頁/共120頁注意事項：注意事項：質粒的質量和濃度。用于轉化的質粒DNA應主要是超螺旋DNA。轉化效率與外源DNA的濃度在一定范圍內成正比，但當加入的外源DNA的量過多或體積過大時，轉化效率就會降低。試劑的質量。所用試劑均需要最高純度的，并用超純水新鮮配制，滅菌備用。防止雜菌和雜DNA的污染。五、重組DNA導入表達細胞2022-2-760第60頁/共120頁二價鈣離子對轉化效率的影響熱激溫度對轉化效率的影響五、重組DNA導入表達細胞2022-2-761第61頁/共120頁感受態(tài)細胞的制備感受態(tài)細胞的制備：1、從新活化的E.coli DH5平

53、板上挑取一單菌落，接種于35ml LB液體培養(yǎng)中，37振蕩培養(yǎng)至對數(shù)生長期(12h左右)；2、將該菌懸液以1:1001:50轉接于100ml LB液體培養(yǎng)基中，37振蕩擴大培養(yǎng)，當培養(yǎng)液開始出現(xiàn)混濁后，每隔2030min測一次OD600，至OD600為0.30.5時停止培養(yǎng)，并轉裝到1.5 mL離心管中；3、培養(yǎng)物于冰上放置20min；4、 04，4000g離心10min，棄去上清液，加入1 mL冰冷的0.1mo1L CaCl2溶液，小心懸浮細胞, 冰浴20分鐘；五、重組DNA導入表達細胞2022-2-762第62頁/共120頁5、04， 4000g離心10min，倒凈上清培養(yǎng)液，再用1.0

54、mL冰冷的0.1mo1L CaCl2溶液輕輕懸浮細胞，冰浴20min；6、 04， 4000g離心10min，棄去上清液，加入100 L冰冷的0.1mo1L CaCl2溶液，小心懸浮細胞，冰上放置片刻后，即制成了感受態(tài)細胞懸液； 制備好的感受態(tài)細胞懸液可直接用于轉化實驗，如果在4放置1224h，其轉化效率可以增高46倍；也可加入占總體積15左右高壓滅菌過的甘油，混勻后分裝于1.5ml離心管中，置于-70條件下，可保存半年至一年。五、重組DNA導入表達細胞2022-2-763第63頁/共120頁2022-2-7六、六、重組體細胞重組體細胞的的篩選純化鑒定篩選純化鑒定 在重組DNA導入受體細胞的實

55、驗中，由于重組率很低，因此需要從這些細胞中篩選出期望重組子，將轉化后的細胞涂布于特定的固體培養(yǎng)板，生長出的單菌落或噬菌斑進一步篩選和鑒定。64第64頁/共120頁2022-2-7 1、載體遺傳標記法載體遺傳標記法（抗生素抗性篩選法、營養(yǎng)缺陷型篩選法、噬菌斑篩選法、互補篩選法） 2、核酸分子雜交法核酸分子雜交法 菌落原位雜交：制備與目的基因某一區(qū)域同源的探針序列，根據(jù)核酸雜交原理，探針序列特異性的雜交目的基因，并通過放射性同位素或熒光基團進行定位檢測。六、六、重組體細胞重組體細胞的的篩選純化鑒定篩選純化鑒定65第65頁/共120頁2022-2-7 3、目的基因表達產(chǎn)物測定法目的基因表達產(chǎn)物測定法

56、 如果重組DNA的目的基因能在宿主細胞中編碼蛋白質，且宿主細胞本身不含該蛋白質，那么可以通過檢測蛋白質的生物功能或結構來篩選和鑒定重組子。六、六、重組體細胞重組體細胞的的篩選純化鑒定篩選純化鑒定66第66頁/共120頁 用熒光原位標記篩選重組體 1、制備核酸探針，通過數(shù)據(jù)庫查詢所需的寡核苷酸探針的資料，用合成儀合成，然后用熒光素進行標記。 、將樣品進行打碎、離心、清洗等步驟，使微生物細胞與雜質進行分離，同時增大細胞壁的通透性，保證探針算例進入與雜交。 、配置雜交液，其中雜交液中的甲酰胺的濃度直接影響雜交的特異性，將雜交液與樣品之一雜交爐（避光、密封），雜交完成后用洗脫液（或）將多余的探針除去。

57、 、加少量的苯二胺甘油溶液覆蓋樣品，防止熒光淬滅，再封片，用熒光顯微鏡觀察、照相進行分析。六、六、重組體細胞重組體細胞的的篩選純化鑒定篩選純化鑒定2022-2-767第67頁/共120頁熒光原位雜交技術熒光原位雜交技術 熒光原位雜交是一種非放射性原位雜交方法，將熒光標記的探針與待測序列進行雜交，根據(jù)雜交信號的有無及類型達到診斷的目的。 原理：基于堿基互補配對的原則，用熒光素標記的已知外源DNA或RNA作探針，與載玻片上的組織切片等雜交，與待測核酸的靶序列專一性結合，通過檢測雜交位點熒光來顯示特定核苷酸序列的存在、數(shù)目和定位。六、重組體細胞的篩選純化鑒定2022-2-768第68頁/共120頁2

58、022-2-7產(chǎn)物產(chǎn)物1 1. .菌種菌種RRhPIZpQE-40 Ecoli M15菌株69七、工程菌產(chǎn)物鑒定和保存第69頁/共120頁2022-2-72 2. .材料與試劑材料與試劑 DEAE-Sepharose FF(瓊脂糖快流速陰離子交換劑)為杭州爭光樹脂有限公司產(chǎn)品,SephadexG-25為Sigma公司產(chǎn)品，Superdex75為GE公司產(chǎn)品,溶菌酶、脫氧核糖核酸酶、胰蛋白酶和羧肽酶B均為Sigma公司產(chǎn)品,谷胱甘肽氧化型(GSSG)和還原型(GSH)為上海博奧生物科技有限公司產(chǎn)品，二硫蘇糖醇(DTY)為Organics Inc產(chǎn)品,13-巰基乙醇和異丙基-13-D-巰基吡喃半乳

59、糖苷(IPTG)為BB1分裝,胰蛋白胨、酵母粉（英國Oxiod公司）,氨芐青霉素（美國Sigma公司）,其余試劑均為國產(chǎn)分析純產(chǎn)品。70七、工程菌產(chǎn)物鑒定和保存第70頁/共120頁2022-2-7培養(yǎng)基：（）LB培養(yǎng)基(g/L):胰蛋白胨10.0,酵母提取物5.0,NaCl 10.0,pH 7.0;（）發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖4,甘油15,酵母粉30,蛋白胨30,Na2HPO4 12,KH2PO4 6,NH4C l1,NaCl 2,MgSO4 0.48,pH 7.0;（）甘油補料培養(yǎng)基(g/L):甘油300,酵母汁150,MgSO4 10,pH 7.0。所有培養(yǎng)基使用前均加入氨芐青霉素至終

60、濃度50mg/L。水平恒溫搖床（德國Therma公司）；BiostatB發(fā)酵系統(tǒng)（德國Braun公司）；蛋白質電泳凝膠自動成像系統(tǒng)（英國Syngene公司）。71七、工程菌產(chǎn)物鑒定和保存第71頁/共120頁2022-2-73 3. .細菌培養(yǎng)和細菌培養(yǎng)和RRhPIRRhPI的表達的表達 采用二級發(fā)酵的方式，用正交法優(yōu)化培養(yǎng)條件，并將優(yōu)化條件用于發(fā)酵罐進行發(fā)酵，收獲濕菌體。RRhPIZpQE-40 Ecoli M15的發(fā)酵罐培養(yǎng)：將lO lId經(jīng)過活化的RRhPIpQE-40 Ecoli M15轉移至100 ml培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)，培養(yǎng)一段時間后，將其轉移至含有1.5L培養(yǎng)基的發(fā)酵罐中，培養(yǎng)一段時