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染色體標(biāo)本制備及核型分析染色體核型分析質(zhì)量保障部Faye本文檔共36頁;當(dāng)前第1頁;編輯于星期二\2點25分一、名詞解釋二、染色體標(biāo)本制備三、染色體核型分析實驗耗材前期處理實驗步驟玻片標(biāo)本質(zhì)量評價計數(shù)標(biāo)準(zhǔn)、合格指標(biāo)染色體核型排列核型檢測的可重復(fù)性本文檔共36頁;當(dāng)前第2頁;編輯于星期二\2點25分一、名詞解釋核型分裂相一個體細(xì)胞中的全部染色體,按其大小、形態(tài)特征順序排列所構(gòu)成的圖像。小鼠:♂40,XY、♀40,XX人類:♂46,XY

、♀

46,XX細(xì)胞分裂過程中每個時期的細(xì)胞形態(tài)特征,包括細(xì)胞的總體形狀和遺傳物質(zhì)的變化。本文檔共36頁;當(dāng)前第3頁;編輯于星期二\2點25分一、名詞解釋數(shù)量變異(性染色體丟失/增加、近端著絲粒染色體三體)(中期)分裂相

核型結(jié)構(gòu)變異(缺失、重復(fù)、倒位、易位)本文檔共36頁;當(dāng)前第4頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備實驗耗材儀器設(shè)備:超凈工作臺、恒溫培養(yǎng)箱、恒溫水浴箱、離心機、光學(xué)顯微鏡、刻度離心管、乳頭吸管、棕色試劑瓶、載玻片、吹風(fēng)機、玻片架、染色缸主要試劑:秋水仙素、低滲液、卡諾氏固定液、吉姆薩染液、胰酶、1NHCl、1NNaOH、MEF培養(yǎng)基、PBS本文檔共36頁;當(dāng)前第5頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備前期處理

樣品要求:對數(shù)期生長,狀態(tài)良好,緊密度高,折光性好,細(xì)胞量≥T25/60mm平皿差速貼壁法去除MEF(KSR培養(yǎng)體系除外)終止培養(yǎng)前1~2小時,加入秋水仙素(100ug/ml),最終濃度為0.1~0.2ug/ml。作用:破壞紡錘體防護(hù):有劇毒、無揮發(fā)性因素:時間、濃度本文檔共36頁;當(dāng)前第6頁;編輯于星期二\2點25分本文檔共36頁;當(dāng)前第7頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備固定細(xì)胞收獲制片預(yù)固定低滲處理實驗步驟本文檔共36頁;當(dāng)前第8頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理消化并收集細(xì)胞至離心管,吹打成單細(xì)胞懸液,250g,5min離心,棄上清實驗步驟本文檔共36頁;當(dāng)前第9頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理加入37℃預(yù)熱的低滲液(0.075mol/L)5ml,吹打至均勻,37℃水浴15-20min。實驗步驟本文檔共36頁;當(dāng)前第10頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理加入37℃預(yù)熱的低滲液(0.075mol/L)5ml,吹打至均勻,37℃水浴15-20min。實驗步驟配制:0.075mol/LKCl溶液作用:低滲作用因素:時間、溫度、濃度本文檔共36頁;當(dāng)前第11頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟離心棄上清,將細(xì)胞沉淀震蕩懸浮或氣泡吹打法輕柔地重懸細(xì)胞。沿管壁緩慢加入固定液0.5-1.0mL,邊滴加邊震蕩均勻,靜置5min后離心棄上清。本文檔共36頁;當(dāng)前第12頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟離心棄上清,將細(xì)胞沉淀震蕩懸浮或氣泡吹打法輕柔地重懸細(xì)胞。沿管壁緩慢加入固定液0.5-1.0mL,邊滴加邊震蕩均勻,靜置5min后離心棄上清。配制:甲醇:冰乙酸=3:1,現(xiàn)用現(xiàn)配。作用:固定并維持染色體結(jié)構(gòu)的完整性防護(hù):甲醇→毒性,冰乙酸→刺激性和腐蝕性本文檔共36頁;當(dāng)前第13頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟(1)加入3ml固定液,靜置30min,離心棄上清;(2)再次加入3ml固定液,吹打均勻并靜置30min本文檔共36頁;當(dāng)前第14頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟離心棄上清液,根據(jù)細(xì)胞數(shù)量情況,加入1~2mL固定液,吹打細(xì)胞制成懸液,懸液呈微白色時為最佳。本文檔共36頁;當(dāng)前第15頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗內(nèi)容用滴管吸取細(xì)胞懸液,高空滴在冰凍玻片上,立即在酒精燈的火焰下過火幾次,置80℃烤箱中烤片2h。本文檔共36頁;當(dāng)前第16頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟用滴管吸取細(xì)胞懸液,高空滴在冰凍玻片上,立即在酒精燈的火焰下過火幾次,置80℃烤箱中烤片2h。要求:潔凈、冰凍處理:逐片清洗(洗潔精→超聲波→自來水→純水),95%乙醇浸泡24h,純水逐片刷洗,放置于裝有純水的器皿中,4℃保存。本文檔共36頁;當(dāng)前第17頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟預(yù)熱胰蛋白酶消化25-30s,Giemsa染色10min。清水沖洗染液,用吹風(fēng)機吹干。本文檔共36頁;當(dāng)前第18頁;編輯于星期二\2點25分二、染色體標(biāo)本制備細(xì)胞收獲制片固定預(yù)固定低滲處理實驗步驟預(yù)熱胰蛋白酶消化25-30s,Giemsa染色10min。清水沖洗染液,用吹風(fēng)機吹干。要求:0.25%,pH6.8~7.2作用:去除染色體上的蛋白質(zhì),便于染色。配制:Giemsa原液:磷酸緩沖液(pH7.4)=1:9,現(xiàn)用現(xiàn)配。本文檔共36頁;當(dāng)前第19頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價玻片顏色藍(lán)紫色玫紅色著色淺√解決方案配制新的染液;適當(dāng)提高胰酶消化玻片的時間。本文檔共36頁;當(dāng)前第20頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價細(xì)胞密度過密適中過稀√解決方案制備玻片時,對每一個樣品都先進(jìn)行試片,并在鏡下觀察細(xì)胞密度,從而調(diào)整懸液密度。本文檔共36頁;當(dāng)前第21頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價分裂相密度足夠稀少√解決方案適當(dāng)提高固定液中冰醋酸比例;制備較多的玻片本文檔共36頁;當(dāng)前第22頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價分裂相形態(tài)-緊密度過密適中過散解決方案過密:適當(dāng)提高固定液中冰醋酸比例;過散:適當(dāng)降低固定液中冰醋酸比例?!瘫疚臋n共36頁;當(dāng)前第23頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價分裂相形態(tài)過密適中過散解決方案過密:適當(dāng)提高固定液中冰醋酸比例,增加滴片高度;過散:適當(dāng)降低固定液中冰醋酸比例,減小滴片高度。√本文檔共36頁;當(dāng)前第24頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價分裂相形態(tài)解決方案盡量將細(xì)胞吹打成單細(xì)胞懸液;滴片時勿重復(fù)滴加同一區(qū)域。重疊本文檔共36頁;當(dāng)前第25頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析玻片標(biāo)本質(zhì)量評價染色體形態(tài)適中短小過長扭曲交聯(lián)消化過度√本文檔共36頁;當(dāng)前第26頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析計數(shù)標(biāo)準(zhǔn)合格指標(biāo)分裂相需完整獨立,染色體不過于松散,周圍無其他距離很近的分裂相。染色體形態(tài)適中,不過度短小或纖長,染色體彼此間無交聯(lián)纏繞或者交聯(lián)的染色體能明確的區(qū)分。染色體G顯帶普遍較清晰,質(zhì)檢人員能夠精確的判斷核型位置。計數(shù)30個分裂相,正常比例≥50%→數(shù)量是否異常暫不涉及核型排列→結(jié)構(gòu)是否異常本文檔共36頁;當(dāng)前第27頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析染色體核型排列本文檔共36頁;當(dāng)前第28頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析染色體核型排列本文檔共36頁;當(dāng)前第29頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析染色體核型排列本文檔共36頁;當(dāng)前第30頁;編輯于星期二\2點25分三、染色體核型分析染色體核型排列本文檔共36頁;當(dāng)前第31頁;編輯于星期二\2點25分正常:46,XY本文檔共36頁;當(dāng)前第32頁

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