核酸技術(shù)專業(yè)知識講座

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第1頁核酸分離和純化核酸電泳染色體DNA電泳DNA限制酶切反應和限制酶譜繪制DNA連接PCR技術(shù)分子雜交技術(shù)核酸序列測定核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第2頁第一節(jié)核酸分離和純化核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第3頁

一、普通程序

1、供體核酸分離

供體細胞培養(yǎng)搜集(菌體)細胞細胞破碎分離總DNA

分離細胞器分離總RNA

分離細胞器DNARNApoly(A)RNA特異性RNA

染色體DNA(組建基因組文庫)核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第4頁2、載體DNA分離

載體DNA

感染或轉(zhuǎn)染細胞（病毒型）轉(zhuǎn)化細菌細胞（質(zhì)粒型）分離病毒顆粒培養(yǎng)轉(zhuǎn)化細胞、搜集菌體

病毒載體DNA分離與純化破碎細胞

質(zhì)粒DNA分離與純化

3、DNA片段分離

DNA限制酶切凝膠電泳分離特定DNA片段回收核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第5頁4、質(zhì)量評定

1）

凝膠電泳

2）光密度值測定

3）限制酶切分析二、細胞裂解

1.

酶法：

利用一些細胞壁裂解酶使細胞變?yōu)樵|(zhì)體，然后加去垢劑使原生質(zhì)體裂解。

1)

細菌：溶菌酶

2)

酵母：蝸牛酶、Novozyme234、glusulase、zymolase等

3)

絲狀真菌：Novozyme234、溶壁酶、纖維素酶

4)

植物細胞：纖維素酶、半纖維素酶、果膠酶酶法裂解時要注意細胞生長條件和生長時間，反應時盡可能滿足酶最正確反應條件。核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第6頁2.

機械法

1)

壓力剪切法：French壓力機，酵母細胞，細菌（芽孢和G+球菌除外）

2)射擊破碎法：Braun破碎機，攪切器（blender），混合器（mixer），0.1-0.45mm玻璃球

3)固體研磨法：將待破碎細胞與玻璃球（0.1~0.45mm）同時致冷，在未融熔前用研杵磨成粉末

4)重復凍融法三、DNA分離與純化

1、供體DNA分離與純化要求：盡可能地保持其高分子量，無其它污染物。

1)

基因組大?。汉怂峒夹g(shù)專業(yè)知識講座第7頁

染色體細菌3300~4200kb酵母15,000kb果蠅1.28x105kb人3x106kb植物2x105~1x108kb天花病毒288kb痘病毒196kb質(zhì)體幾~100以上kb

線粒體

藻類線狀15kb酵母環(huán)狀19~78kb植物環(huán)狀100~150kb動物(扁蟲到人)環(huán)狀15~18kb錐蟲網(wǎng)狀6000

kb(幼體)短膜蟲網(wǎng)狀30,000

kb(幼體)(Kinetoplast）

葉綠體雙子葉植物121（菠菜）~154kb（豌豆）單子葉植物151（玉米）~182kb（浮萍）藻類132（裸藻）~191kb（衣藻）核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第8頁

1)

DNA分離純化過程

破碎細胞+DNA抽提液(EDTA、去污劑、還原劑)65℃溫育20’冰浴冷卻離心去細胞碎片苯酚抽提法①

CsCl密度梯度離心②

1)苯酚抽提法上清液緩沖液用水飽和苯酚抽提2~3次上層液相用氯仿抽至界面無蛋白變性物上層液相用兩倍體積冷乙醇沉淀沉淀物用70%冷乙醇洗滌,干燥溶于緩沖液加入RNAase處理除去RNA苯酚氯仿抽提沉淀干燥核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第9頁2)CsCl密度梯度離心上清液加入固體CsCl與EtBr溶液室溫下超速離心(45,000rpm）16小時穿孔取出DNA（320nm）異丙醇抽提溴乙錠緩沖液透析除去殘余CsCl兩倍體積冷乙醇沉淀DNA離心、洗滌、干燥*兩種方法比較：

CsCl法操作步驟少，分離DNA分子量大，耗財多，且需超速離心機。苯酚法耗時少，不需昂貴儀器，但操作步驟多，易使DNA分子斷裂。若小心操作，所獲DNA亦符合要求。**上述兩種分離方法都包含了下述四個分離步驟ⅰ.可溶與不可溶物分離：高速離心除去細胞碎片，保留上清液。ⅱ.使蛋白質(zhì)分離：苯酚抽提或超速離心ⅲ.使RNA分離：RNase處理或超速離心ⅳ.使DNA與其它可溶物分離核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第10頁2.

載體DNA分離與純化

1)

質(zhì)粒載體DNA分離關(guān)鍵：怎樣使質(zhì)粒DNA與宿主染色體DNA分開原理：質(zhì)粒DNA比染色體DNA小得多，在DNA抽提過程中，染色體DNA斷裂成小片段(線狀)，質(zhì)粒DNA仍保持超螺旋構(gòu)型

3)

細胞器DNA分離

植物組織用核分離緩沖液勻漿過濾濾液離心(g,10’,4℃)核緩沖液使核裂解(含0.5%TritonX-100)抽提DNA植物組織細胞器緩沖液勻漿離心(100g,10’,4℃)除去細胞核離心(1800g,10’,4℃)分離葉綠體離心(10,000g,10’,4℃)分離線粒體DNase除去細胞器外DNA加入EDTA使DNase失活純化細胞器細胞器裂解提取DNA核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第11頁

方法：

ⅰ.超速離心：利用兩種DNA分子大小和空間構(gòu)型

ⅱ.變性法：在變性條件下使染色體DNA變?yōu)閱捂湥|(zhì)粒DNA仍保持環(huán)狀結(jié)構(gòu)，當變性條件發(fā)生快速改變時，前者仍不能復性，而后者又可回復到天然構(gòu)型。變性條件可采取加熱煮沸法或堿變性法上述方法亦可用于ss環(huán)狀病毒DNARF型分離,質(zhì)粒DNA氯霉素擴增使用并不廣泛（菌株和載體）

2)

噬菌體載體DNA分離純凈病毒顆粒病毒載體DNAM13mp載體可采取質(zhì)粒DNA分離方法核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第12頁

二、RNA分離與純化

1.

制備RNA關(guān)鍵—預防內(nèi)外源RNase作用

1)

RNase特點：抗酸抗堿,具很廣pH作用范圍;抗高溫嚴寒(0~65℃均具活性）；抗變性劑

2)

處理方法：外源RNase—高溫，焦磷酸二乙酯(DEPC)處理全部溶液（Tris·HCl除外）和器皿，操作者帶手套內(nèi)源RNase—高溫抽提，強蛋白質(zhì)變性劑，RNase抑制劑，蛋白酶K等

2.

總RNA制備依據(jù)所用蛋白質(zhì)變性劑種類不一樣分為以下三種制備方法：

1）熱苯酚抽提法

2）胍鹽法：異硫氰酸胍和硫氰酸胍

3）LiCl/尿素法核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第13頁其中以胍鹽法最好，對于從那些RNase含量很高組織（胰臟）中提取RNA尤其有效，可使RNase快速變性，制備RNA有較高翻譯活性。在RNA制備中，細胞破碎與蛋白質(zhì)變性是同時進行。3.

多聚核糖體RNA制備

1)

多聚核糖體分離①超速離心法（30-40萬g，離心2-3h）②鎂鹽沉淀法（0.1MMg++）③分級分離法—分離特異性多聚核糖體

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第14頁

i.結(jié)合與游離核糖體分離，這種方法可防止溶酶體破裂。

ii.核糖體大小分級分離，利用連續(xù)密度梯度分離特大和特小多聚核糖體

iii.核糖體免疫沉淀法

*直接免疫沉淀法新生肽鏈+抗體蔗糖密度梯度離心

**間接免疫沉淀法新生肽鏈+抗體+抗-抗體（二抗）不可

溶復合物離心分離

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第15頁

***免疫親和層析法新生肽鏈-抗體復合物不溶性交聯(lián)抗原基質(zhì)親和層析柱吸附洗脫免疫沉淀法優(yōu)點：可分離到含量僅為1%mRNA，但必須使用高純度抗體，不能發(fā)生交叉反應和污染核酸酶

2)

多聚核糖體RNA分離純化多聚核糖體+SDS蔗糖密度梯度離心或蛋白酶K-苯酚抽提

4.

RNA分級分離

1)

分子量大小分級分離

i.

蔗糖密度梯度離心

ii.

凝膠電泳

2)

核酸序列分級分離

i.

分子雜交法：適合用于同源性很高RNA分離DNA分子變性結(jié)合到NCFRNA·DNA雜交洗滌洗膜乙醇沉淀核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第16頁ii.

親和層析法：低聚dT纖維素:用于poly(A)較長mRNA；多聚U瓊脂糖:用于poly(A)較短mRNA（<20A）

RNA進樣吸附洗滌洗脫搜集260nm處吸收峰樣品乙醇沉淀

iii.

無poly(A)mRNA分離純化多聚核糖體核糖體亞基+mRNP離心

mRNP蛋白酶KmRNA低聚（dT）纖維素層析洗出液乙醇沉淀（無多聚AmRNA）

5.

RNA質(zhì)量評定方法

1)光密度值測定法A260/A280=2.02)凝膠電泳

3)體外蛋白質(zhì)翻譯核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第17頁細胞裂解物

胍鹽法

總RNA分子雜交法—特異RNA分子

熱苯酚法凝膠電泳圍RNA大小分級分離大小范蔗糖密度梯度離心

一定

LiCl/核酸序列

尿素法離心分級分離親和層析法—poly（A）RNA分子

高速離心法

全部多聚核糖體

上清液鎂鹽沉淀法蔗糖密度梯度離心—結(jié)合與游離多聚核糖體分級分離法

蔗糖連續(xù)密度—一定范圍大小核糖體多聚核糖體RNA免疫沉淀法——特異性多聚核糖體

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第18頁第二節(jié)核酸電泳

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第19頁

1.

種類

1)按凝膠材料分:聚丙烯酰胺凝膠和瓊脂糖凝膠電泳(普通瓊脂糖和低熔點瓊脂糖)2)按電泳裝置分:水平式/瓊脂糖凝膠;豎式/聚丙烯酰胺凝膠

3)兩種方法比較：分離效果和分離范圍;操作難易

2.

用途

瓊脂糖凝膠用于DNA和RNA常規(guī)分析；聚丙烯酰胺凝膠常見于小分子核酸分析。

3.

凝膠電泳普通程序制膠點樣電泳染色觀察二、DNA電泳

1.

DNA分子種類

1)線狀DNA—單鏈與雙鏈，ss-DNA電泳時要注意局部區(qū)域形成ds-DNA，造成遷移距離不確定

2)環(huán)狀DNA—單鏈（如M13mp）和雙鏈（質(zhì)粒DNA）

3)線狀ds-DNA電泳—使用頻率最高一個電泳核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第20頁

這類DNA分子在電泳過程中遷移距離受以下幾個原因影響：

i.

分子量大小:遷移距離與分子量常見對數(shù)成反比

ii.凝膠濃度:濃度越高，移動距離越短，適合分離低分子量DNA濃度越低，移動距離越長，適合分離高分子量DNAiii.電壓:低電壓時，遷移率與電壓成正比；電壓增高時，不一樣大小DNA片段遷移率增大是不一樣。iv.堿基組成與溫度:不受影響,溫度高可造成DNA帶變形或解鏈。核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第21頁4)環(huán)狀ds-DNA電泳:常見于質(zhì)粒DNA初步判定5)線狀ss-DNA電泳鏈分離凝膠：化學定序時，用于單鏈分離。DNA雙鏈互補，但組成不一樣，仍可分離（機理不詳），電泳時形成三條帶：變性雙鏈，兩條單鏈。

核酸定序凝膠(染料指示劑)：為防止局部區(qū)域產(chǎn)生二級結(jié)構(gòu)，可采取各種變性辦法，如煮沸樣品，提升電泳溫度，凝膠中加入變性劑（尿素、甲醛、甲胺等）核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第22頁三.RNA凝膠電泳

方法：不一樣RNA電泳方法是依據(jù)使RNA分子變性所采取方法。這些方法不但要使RNA分子在點樣時是一級結(jié)構(gòu)，而且在整個電泳過程中也保持一級結(jié)構(gòu)。

1.

乙二醛/二甲基亞砜法原理：乙二醛能夠與核酸、核苷酸及堿基發(fā)生反應，尤其是鳥苷形成一個穩(wěn)定附加環(huán)，從而阻止GC堿基互補作用發(fā)生步驟：RNA+10mM羥甲基醛和50%DMSO混合50℃、1h變性點樣電泳染色觀察

2.

羥甲基汞法原理：羥甲基汞可與RNA分子嘌呤或嘧啶堿基發(fā)生反應，反應部位是在可形成氫鍵亞氨基處。步驟：RNA+10mM羥甲基醛點樣在含4mM羥甲基醛瓊脂糖凝膠上電泳染色觀察核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第23頁3.

甲醛法步驟：RNA+2.2M甲醛+50%甲胺點樣在含2.2M甲醛瓊脂糖凝膠上MOPS緩沖液電泳染色觀察其它變性劑，如尿素、甲胺等也可用于RNA電泳.4.

三種方法比較第一個方法安全，但因為反應是不可逆，由此回收RNA樣品用于體外翻譯效果不好。第二、三種方法反應可逆，回收RNA樣品可用于體外翻譯反應，但操作必須小心，因兩種變性劑有毒。五、蛋白質(zhì)電泳方法：變性與非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳，前者常稱之為SDS。差異：有沒有變性劑用途：非變性凝膠可用于蛋白質(zhì)分離純化過程中，可直接用于酶促反應（顏色改變）

SDS可用于蛋白質(zhì)分子量、亞基組成測定。mRNA翻譯產(chǎn)物，基因表示產(chǎn)物測定等。核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第24頁五、核酸片段分離與回收

1.方法—用于DNA、RNA以及蛋白質(zhì)回收

1)

電洗脫法:利用電泳方法將凝膠中特定核酸分子到其它介質(zhì)中；

2)濾紙法—核酸凝膠染色長波紫外光確定位置在分離帶前方切一口子并插入濾紙條(其后面覆蓋透析袋膜)

電泳至DNA帶全部進入濾紙條洗脫DNA純化、沉淀

3)透析袋法—切下含DNA帶瓊脂塊放入透析袋，封口放入電泳槽電泳2~3小時至全部DNA離開凝膠塊反向電泳1分鐘取出DNA液純化、沉淀

4)凍融法

5)酶解法

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第25頁待回收DNA切口

DNA切口

凝膠塊

濾紙法

透析袋

凝膠塊

待回收DNA

透析袋法

待回收DNA

凝膠塊

V-型槽

電洗脫槽法

回收DNA方法

核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第26頁2.影響回收率原因

1）DNA分子大小—回收率與分子量大小呈負相關(guān)；

2）乙醇沉淀—其中溫度、時間和DNA濃度（回收時體積）均與回收率相關(guān)；

3）離心時間—時間越長，效果越好，對低濃度DNA尤其顯著。3.回收DNA片段質(zhì)量

凝膠材料質(zhì)量，如瓊脂糖中硫酸鹽沉淀劑若改用精胺，它可有效地去除PEG、核苷酸、鹽、聚丙烯酰胺及蛋白質(zhì)等。核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第27頁第三節(jié)

染色體DNA電泳核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第28頁一、

DNA分子在凝膠電泳中移動

1、常規(guī)電泳在自由電場中，DNA移動速度與分子量大小無關(guān)；將DNA分子置于凝膠中進行電泳，DNA移動距離與分子量相關(guān)。分子量小移動快；反之則慢。大于20kbDNA大分子，其移動距離與分子量無關(guān)。因為這些DNA分子要經(jīng)過膠孔時必須發(fā)生變形，并沿分子長軸運動經(jīng)過膠孔，它們都以相同速度前進，分辨率也就消失了。

2、脈沖場凝膠電泳(pulse-fieldgelelectrophoresis，PFGE)

PFG工作假說

1)

DNA松弛時間：大分子DNA改變形狀和重新定向所需時間。這個時間與DNA分子量呈正相關(guān)（Tr）

2)

DNA移動時間：DNA分子向前移動時間（Tm）

3)

電場脈沖時間：其電場方向所連續(xù)時間（Tp）核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第29頁

分子量大DNA分子所需松弛時間長，分子量小則短。因為脈沖時間是一個人為固定值，那么用于向前移動時間則隨分子量大小而改變。分子量大用于向前運動時間少，移動距離就短，分子量小用于向前運動時間多，移動距離就長。這就是使不一樣大小分子量DNA分離假說。

Tp小

=Tm小+Tr小

Tp大

=Tm大+Tr大因Tp小

=Tp大，Tr小<Tp小，故Tm小

>Tm大，所以，S小>S大

顯然，要使一個DNA樣品中不一樣大小DNA分子分離，脈沖時間應選在最大DNA分子所需上限。二．脈沖場凝膠電泳種類

1．正交場脈沖凝膠電泳（OFAGE）利用兩個或多個交變電場，使200-3000kbDNA分子發(fā)生分離，其電極排列能夠是雙向非均勻，單向非均勻等。核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第30頁脈沖場凝膠電泳原理圖

北

南

脈沖場電泳常規(guī)電泳

兩組電極，排列不均勻;一組電極，電場方向不變，電極排列均勻，定時改變電場方向，DNA分子凈DNA移動方向與電場方向相同。整個電泳移動方向與兩電場呈45o，在電泳過過程保持電壓穩(wěn)定。常規(guī)方法制備DNA程中，電壓有時可隨時間增加而樣品增加，制備DNA樣品與常規(guī)方法不一樣核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第31頁

2.場倒置凝膠電泳（FIGE）

利用常規(guī)電泳槽進行電泳，但電場方向則是周期性地發(fā)生倒置，其正向和反向脈沖時間長度之比為3或其它比值。該法可使15-700Kb或以上DNA分子發(fā)生分離。為了克服同移動現(xiàn)象產(chǎn)生（即不一樣大小DNA分子一起移動），能夠采取轉(zhuǎn)換時間遞增法（swiching-intervalramps）,即由電泳開始時短脈沖時間逐步遞增到電泳結(jié)束時長脈沖時間。如開始時為60：20，結(jié)束時可為180：60。上述兩種方法也可聯(lián)合使用，使一些極難分開大分子DNA分離。

3.CHEF(Contour-ClampedHomogeneousElectricFields)動態(tài)調(diào)控閉合均一電場電泳核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第32頁120場倒置電泳

CHEF(動態(tài)調(diào)控閉合均一電場電泳)核酸技術(shù)專業(yè)知識講座第33頁各種脈沖場凝膠電泳技術(shù)比較

方法染色體帶最大帶最小帶動態(tài)調(diào)整直道均勻電場液體樣品機械轉(zhuǎn)換CHEF151kb88bp是是是是不OFAGE139000kb5000bp不不不是不TAFE139000kbbp不是不不不FIGE11kb200bp不是是