藥用植物甘草栽培存在的問題及對(duì)策

藥用植物甘草栽培存在的問題及對(duì)策

甘草是甘草科的一種植物。分布于中國(guó)甘肅、河北、遼寧、內(nèi)蒙古、寧夏、青海、陜西、山東和新疆其他地區(qū)。此外，它還分布在阿富汗、哈薩克斯坦、定金斯坦、俄羅斯和塔吉克斯坦的國(guó)家?！吨袊?guó)藥典》2010年版規(guī)定甘草有3個(gè)來(lái)源,即烏拉爾甘草G.uralensisFisch.、光果甘草G.glabraLinn.及脹果甘草G.inflataBatalin.。甘草是最常用的大宗藥材之一,以根及根莖入藥,具有補(bǔ)脾益氣、清熱解毒、祛痰止咳、緩急止痛和調(diào)和諸藥等作用,素有“國(guó)老”、“十方九草”之譽(yù)。除藥用價(jià)值外,甘草還可以作為食品矯味劑及煙草添加劑等原料。商品甘草過(guò)去主要來(lái)源于野生資源,由于過(guò)度采挖,甘草野生資源遭到了嚴(yán)重破壞,國(guó)務(wù)院已明令禁止采挖野生甘草(國(guó)發(fā)13號(hào)),目前栽培甘草已經(jīng)是主流商品。但是,栽培甘草質(zhì)量差異較大,大部分栽培甘草存在品質(zhì)退化和甘草酸量低等問題,達(dá)不到《中國(guó)藥典》和《日本藥典》規(guī)定的甘草酸量不低于2.0%和2.5%的合格標(biāo)準(zhǔn),既影響甘草臨床療效,也制約栽培甘草的出口。人們?cè)噲D通過(guò)多種手段來(lái)解決上述甘草資源可持續(xù)發(fā)展這一“瓶頸”問題。由于甘草在栽培條件下4~5年才能收獲種子,而利用地下根莖進(jìn)行營(yíng)養(yǎng)繁殖的繁殖系數(shù)較低,這些都限制了甘草系統(tǒng)育種工作的開展。而藥用植物組織培養(yǎng)技術(shù)作為中藥生物工程的核心內(nèi)容之一,在藥用植物的資源保護(hù)和可持續(xù)發(fā)展方面具有重要的作用。早在20世紀(jì)八九十年代,芮和愷等和于林清等就開始了對(duì)甘草組織培養(yǎng)的大量研究,試圖誘導(dǎo)再生植株。經(jīng)過(guò)多年的發(fā)展,甘草的組織培養(yǎng)在離體再生、快速繁殖、次生代謝產(chǎn)物積累、毛狀根誘導(dǎo)等多方面取得了一定的成果。本文對(duì)甘草的組織培養(yǎng)進(jìn)行綜述,以期為部分解決甘草資源的替代問題以及以組織培養(yǎng)為基礎(chǔ)的基因與代謝工程提供有效的途徑和理論指導(dǎo)。1水浸處理對(duì)甘草種子發(fā)芽率的影響目前大量文獻(xiàn)報(bào)道顯示在對(duì)甘草進(jìn)行離體培養(yǎng)時(shí),最常用的外植體材料為甘草種子無(wú)菌培養(yǎng)后所獲得的無(wú)菌苗。甘草的種子由于種皮較厚,不易自然萌發(fā),所以培養(yǎng)前通常需進(jìn)行預(yù)處理,以提高其發(fā)芽率。種子的預(yù)處理方式一般有2種:一種是濃硫酸浸種,一種是溫湯浸種。濃硫酸浸種時(shí),多采用98%硫酸浸泡處理60~70min,自來(lái)水充分洗凈。溫湯浸種時(shí)通常采用40℃溫水浸泡處理30min以上。王彥芹等采用濃硫酸浸種和溫湯浸種時(shí)差異顯著,前者的甘草發(fā)芽率可達(dá)到85.77%,而后者種子不吸脹,發(fā)芽率為零。這一實(shí)驗(yàn)結(jié)果與本課題組的實(shí)驗(yàn)結(jié)果有較大的差異。本課題組在對(duì)甘草種子進(jìn)行浸泡處理時(shí),發(fā)現(xiàn)濃硫酸浸種與溫水浸種的發(fā)芽率都較高,沒有顯著性差異。但濃硫酸浸種時(shí)種皮易破損,從而導(dǎo)致種胚的破壞,會(huì)造成一定比例的種子損失;而溫水浸種時(shí)不會(huì)造成種皮的破壞,效果反而略好于濃硫酸。同時(shí)本課題組對(duì)濃硫酸及溫水的浸泡時(shí)間進(jìn)行了梯度考察,發(fā)現(xiàn)濃硫酸浸泡時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),以30~40min效果最好,這也與前述報(bào)道中1h以上的浸泡時(shí)間有明顯的差別,而與劉曉丹等的實(shí)驗(yàn)結(jié)果較為接近。溫水的浸泡時(shí)間也以30min為宜。在對(duì)甘草種子進(jìn)行表面滅菌時(shí),多采用75%乙醇結(jié)合0.1%~1.0%升汞共同滅菌的方法,首先用75%乙醇浸泡處理30~60s,無(wú)菌水沖洗3次,然后用0.1%~1.0%升汞浸泡處理8min左右,無(wú)菌水沖洗5次,基本上可達(dá)到無(wú)菌的要求。將種子接種到MS基本培養(yǎng)基上,在25℃,黑暗條件下培養(yǎng)1周左右,即可得到甘草無(wú)菌苗。2外植體材料的誘導(dǎo)大量文獻(xiàn)報(bào)道顯示,在誘導(dǎo)甘草愈傷組織時(shí),多以無(wú)菌苗的子葉、下胚軸或胚根作為外植體材料,以MS培養(yǎng)基作為基本培養(yǎng)基,添加NAA、2,4-D、6-BA等植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑,在25℃、黑暗條件下誘導(dǎo)愈傷組織的發(fā)生。但不同的研究者對(duì)以上具體條件的報(bào)道又有所差異。范小峰等認(rèn)為不同的外植體中,以甘草下胚軸愈傷組織誘導(dǎo)率最高,可達(dá)到94%;不同的植物激素中2,4-D有助于誘導(dǎo)產(chǎn)生非胚性愈傷組織,而一定濃度的6-BA與NAA配合,可誘導(dǎo)產(chǎn)生胚性愈傷組織。王彥芹等在其研究中發(fā)現(xiàn),以甘草無(wú)菌苗的下胚軸為外植體,在MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.3mg/L以及MS+2,4-D2.0mg/L+6-BA2.0mg/L培養(yǎng)基上,3~4周之后就可以產(chǎn)生瘋長(zhǎng)型愈傷組織,且不易褐變,在培養(yǎng)一段時(shí)間之后也不會(huì)出現(xiàn)生長(zhǎng)停滯現(xiàn)象。雷呈等在對(duì)脹果甘草進(jìn)行愈傷組織誘導(dǎo)時(shí)發(fā)現(xiàn),適宜的外植體材料為下胚軸,非胚性愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+6-BA2.0mg/L+2,4-D0.5mg/L,而胚性愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+6-BA0.5mg/L+KT0.5mg/L+IBA0.1mg/L。劉穎等以甘草無(wú)菌苗的胚根為外植體,考察不同濃度激素組合對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)和繼代培養(yǎng)的影響時(shí)發(fā)現(xiàn):以誘導(dǎo)率為指標(biāo),NAA對(duì)甘草細(xì)胞脫分化的影響最為顯著;以相對(duì)生長(zhǎng)速率為指標(biāo),6-BA、2,4-D、NAA對(duì)甘草細(xì)胞生長(zhǎng)分裂的影響均較為顯著。誘導(dǎo)甘草愈傷組織的最佳激素組合為2,4-D1.0mg/L+NAA1.0mg/L+6-BA1.0mg/L+KT0.3mg/L。此外,柳福智等對(duì)甘草愈傷組織誘導(dǎo)中氮源的影響進(jìn)行了考察,結(jié)果發(fā)現(xiàn)以下胚軸作為外植體材料,在MS+6-BA0.6mg/L+2,4-D0.5mg/L+KT0.4mg/L+NAA0.6mg/L誘導(dǎo)培養(yǎng)基上,不同濃度的氮源對(duì)下胚軸愈傷組織的誘導(dǎo)和生長(zhǎng)有顯著的影響,較低和較高濃度的氮源均不利于愈傷組織的生長(zhǎng),較為適宜的最佳氮源濃度為60mmol/L。計(jì)巧靈針對(duì)耐鹽性甘草愈傷組織的誘導(dǎo)進(jìn)行了研究,以促進(jìn)在鹽堿灘人工栽培甘草技術(shù)的發(fā)展。結(jié)果發(fā)現(xiàn)子葉塊和胚軸段在MS+6-BA1.5mg/L+2,4-D1.2mg/L+NaCl100mg/L培養(yǎng)基上脫分化效果良好,可獲得大量淡黃色、稍透明的愈傷組織。在甘草愈傷組織誘導(dǎo)方面,多數(shù)研究[11,12,13,14,15,16,17,18,19,20]表明以下胚軸作為外植體材料誘導(dǎo)愈傷率最高,其次為子葉。通常以MS培養(yǎng)基作為基本培養(yǎng)基,在所有植物激素中6-BA是必不可少的,而2,4-D則有利于非胚性愈傷組織的誘導(dǎo)及繼代培養(yǎng)。通常NAA、6-BA和2,4-D3種激素配合使用,但也有其他的激素使用類型。本課題組在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中得出的結(jié)論與上述內(nèi)容略有不同,而與尚福強(qiáng)等的報(bào)道在誘導(dǎo)培養(yǎng)基配方與外植體來(lái)源方面較為接近。就3種外植體材料而言,最易愈傷的是胚根,其次為下胚軸,而子葉則不易于愈傷;另外,本課題組發(fā)現(xiàn)最佳誘導(dǎo)培養(yǎng)基配方為MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D0.5mg/L+NAA0.2mg/L,利用此培養(yǎng)基可在較短時(shí)間內(nèi)獲得大量白黃色疏松的愈傷組織。根據(jù)這一實(shí)驗(yàn)結(jié)果,推測(cè)甘草最重要的次生代謝產(chǎn)物甘草酸主要集中于甘草的根部,因此如果組織培養(yǎng)的目的是誘導(dǎo)愈傷組織、建立懸浮細(xì)胞培養(yǎng)體系,進(jìn)而收獲其中的次生代謝產(chǎn)物,那么起始外植體材料應(yīng)該以胚根為宜;相反,考慮到各來(lái)源外植體材料在誘導(dǎo)分化培養(yǎng)時(shí)的難易程度,如果組織培養(yǎng)的目的是誘導(dǎo)甘草離體培養(yǎng)再生植株的獲得,那么起始的外植體材料應(yīng)該以下胚軸為宜。3牧草分離植株的獲得從前人研究結(jié)果可知,甘草愈傷組織誘導(dǎo)較為容易,但其分化成芽則比較困難,分化率僅在2.5%~6.0%。而且就外植體來(lái)源而言,通常來(lái)源于下胚軸的愈傷組織分化成芽的幾率要高于來(lái)源于子葉及胚根的愈傷組織。對(duì)于誘導(dǎo)分化方面的報(bào)道近些年來(lái)并不多見。在對(duì)甘草組織培養(yǎng)早期的研究中,芮和愷等報(bào)道了分化培養(yǎng)基為ZT2mg/L、6-BA2mg/L、KT2mg/L+ZT2mg/L+NAA0.2mg/L,生根培養(yǎng)基則為1/2MS+NAA0.05mg/L,當(dāng)芽轉(zhuǎn)接到生根培養(yǎng)基上,約2周可以從切口處長(zhǎng)出短而粗的白色根系,從而形成完整植株。但僅限于下胚軸來(lái)源的愈傷組織,其他來(lái)源的愈傷組織均不能獲得再生植株。雷呈等在甘草離體培養(yǎng)的過(guò)程中,利用培養(yǎng)基MS+6-BA0.5mg/L+KT0.5mg/L+IBA0.1mg/L,成功誘導(dǎo)獲得由大量淺綠色胚性細(xì)胞組成的胚性愈傷組織。但將胚狀體放入再生培養(yǎng)基中培養(yǎng)后,胚狀體再生能力喪失,褐化死亡,因而未能分化得到再生植株。計(jì)巧靈將甘草愈傷組織轉(zhuǎn)接到MS+6-BA0.5mg/L+KT0.5mg/L+NAA1.0mg/L+NaCl200mg/L培養(yǎng)基上,成功分化出大量的不定芽。適當(dāng)降低培養(yǎng)溫度至18~22℃,提供自然光照,并適量添加GA3的情況下有利于壯芽的形成;最適合生根的培養(yǎng)基是1/2MS+IAA1.0mg/L+NAA1.0mg/L+NaCl200mg/L,生根率可達(dá)66.26%。該實(shí)驗(yàn)最終成功獲得了具有耐鹽性的甘草再生植株。于林清等和安利佳等也分別獲得了甘草離體再生植株,其過(guò)程大致相同,均為愈傷組織致密化、出現(xiàn)顆粒狀,隨后出現(xiàn)綠色芽點(diǎn),進(jìn)而分化成無(wú)根苗,誘導(dǎo)生根后獲得再生植株;但其使用的分化培養(yǎng)基配方差異較大,前者分化培養(yǎng)基為MS+6-BA0.8mg/L+KT0.1mg/L+NAA1.5mg/L,而后者則采用1/2B(MS+B5的最佳組合)+6-BA0.7mg/L+NAA0.2mg/L。二者在基本培養(yǎng)基類型、激素類型及配比方面均存在差異,但所使用的生根培養(yǎng)基則大致相同,均為1/2MS培養(yǎng)基中添加一定量的NAA。鄒翠霞等對(duì)刺果甘草進(jìn)行組織培養(yǎng)誘導(dǎo)再生較為成功,其實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示以MS+6-BA0.5mg/L+2,4-D1.0mg/L作為誘導(dǎo)培養(yǎng)基、以MS+6-BA0.5mg/L+NAA0.1mg/L作為分化培養(yǎng)基、以1/2MS+IAA1.0mg/L作為生根培養(yǎng)基,可以獲得較為健壯的再生植株。對(duì)該再生植株煉苗后,移栽至以爐灰渣為基質(zhì)的花盆中,以室溫、濕度95%遮陰條件下培養(yǎng)10d后即可轉(zhuǎn)入正常的日光溫室培養(yǎng),成活率可達(dá)到69%。雖然刺果甘草不屬于《中國(guó)藥典》2010年版甘草的基源,但其誘導(dǎo)再生植株的成功經(jīng)驗(yàn)也可以為甘草組織培養(yǎng)提供一定的理論依據(jù)及技術(shù)指導(dǎo)。本課題組在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中采用MS+6-BA0.5mg/L+KT1.0mg/L+NAA1.0mg/L作為分化培養(yǎng)基,也成功獲得了甘草無(wú)根苗,將無(wú)根苗轉(zhuǎn)入1/2MS+IAA0.6mg/L生根培養(yǎng)基中,20~30d可長(zhǎng)出多條白黃色、較為粗壯的根,待到根系進(jìn)一步強(qiáng)健以后,即可進(jìn)行移栽,但也出現(xiàn)了甘草誘導(dǎo)分化困難、分化率低以及試管苗移栽不易成活等問題。這些問題都在一定程度上增加了甘草組織培養(yǎng)的難度?？傮w而言,甘草愈傷組織誘導(dǎo)分化較為困難,分化培養(yǎng)基以MS或B5作為基本培養(yǎng)基,添加6-BA、ZT、KT等細(xì)胞分裂素,三者單獨(dú)使用或配合NAA使用。生根培養(yǎng)基則多為1/2MS培養(yǎng)基添加一定量的NAA或IAA。4種植物種的選擇對(duì)甘草生長(zhǎng)的影響目前報(bào)道的甘草快速繁殖的方法多采用以莖尖、腋芽作為外植體誘導(dǎo)叢生芽,以帶葉莖段誘導(dǎo)生根,從而實(shí)現(xiàn)快速繁殖的目的,具有較高的繁殖系數(shù),相對(duì)簡(jiǎn)便易行。葛淑俊等對(duì)烏拉爾甘草進(jìn)行了叢生芽誘導(dǎo)研究,并建立了相應(yīng)的微繁體系。其研究結(jié)果表明適合甘草叢生芽誘導(dǎo)的外植體為生長(zhǎng)4~7d的甘草無(wú)菌苗子葉節(jié)部位,適合誘導(dǎo)叢生芽誘導(dǎo)的培養(yǎng)基為MS+TDZ0.1mg/L+NAA0.1mg/L+蔗糖20~30g/L。將帶1葉的莖段轉(zhuǎn)接在改良MS+NAA0.1mg/L+6-BA1.0~2.0mg/L培養(yǎng)基上,其增殖倍數(shù)可達(dá)到25倍,在1/2MS+核黃素2.0mg/L培養(yǎng)基中生根,煉苗3d后轉(zhuǎn)移到蛭石中,成活率可達(dá)96%以上?？傮w來(lái)說(shuō),1個(gè)帶腋芽莖段培養(yǎng)3個(gè)月可獲得13906棵生根試管苗,成活13350株。黃玉杰等分別利用甘草莖尖、腋芽作為外植體進(jìn)行叢生芽的誘導(dǎo),結(jié)果發(fā)現(xiàn)較為適宜的誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+NAA1.5mg/L+6-BA1.0mg/L,較為適宜的生根培養(yǎng)基為1/2MS+NAA0.05mg/L,生根率可達(dá)到80%。梁玉勇等研究結(jié)果表明適宜甘草分蘗培養(yǎng)的外植體材料是生長(zhǎng)4~7d的無(wú)菌苗子葉段,適宜的培養(yǎng)基為MS+NAA0.2mg/L+6-BA1.0mg/L;在生根培養(yǎng)時(shí),真葉段特別是莖尖的效果最好,適宜的培養(yǎng)基為MS+IBA3.0mg/L+KT0.1mg/L;移栽時(shí)以培養(yǎng)30d以上,蛭石和河沙為基質(zhì)的效果較好,成活率可達(dá)88%以上。本課題組對(duì)甘草快速繁殖的研究,實(shí)驗(yàn)結(jié)果與葛淑俊等的研究較為類似。綜上所述,甘草的快速繁殖多采用MS培養(yǎng)基作為基本培養(yǎng)基,通常添加NAA和6-BA2種植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑,但不同研究者在具體的實(shí)驗(yàn)中采用的激素配比略有不同。以此方法可獲得大量的甘草叢生芽,對(duì)其進(jìn)行生根誘導(dǎo),特別是在添加IBA和KH2PO4的培養(yǎng)基中進(jìn)行生根誘導(dǎo),可獲得大量的再生植株,具有較高的繁殖系數(shù)。5誘導(dǎo)、培養(yǎng)抗病劑自Kamada等在1986年建立了顛茄的毛狀根培養(yǎng)體系以來(lái),培養(yǎng)珍貴藥用植物的毛狀根以收獲其次生代謝產(chǎn)物的研究就成為了國(guó)內(nèi)外研究的新熱點(diǎn)。毛狀根具有生長(zhǎng)快、遺傳穩(wěn)定、有效成分量高等優(yōu)點(diǎn),近些年來(lái)取得了較大的成功。目前已在人參、西洋參、丹參、青蒿等100多種藥用植物中成功建立了毛狀根培養(yǎng)體系,用以收獲其次生代謝產(chǎn)物。我國(guó)的張蔭麟等、高京秀、陳士云等、黃煉棟等早在20世紀(jì)90年代初就開始對(duì)甘草進(jìn)行毛狀根的誘導(dǎo)和培養(yǎng)。采用的菌株多為發(fā)根農(nóng)桿菌ATCC15834,對(duì)甘草無(wú)菌苗的下胚軸、子葉以及莖段進(jìn)行誘導(dǎo),均能成功獲得生長(zhǎng)良好的甘草毛狀根。近些年來(lái),國(guó)內(nèi)外科研工作者也進(jìn)行了一些甘草毛狀根的相關(guān)研究,但鮮見報(bào)道。Wongwicha等等用甘草的幼葉和嫩莖誘導(dǎo)了甘草的毛狀根,并發(fā)現(xiàn)它們可以在1/2MS培養(yǎng)基中迅速生長(zhǎng)。盧虹玉等在成功誘導(dǎo)甘草毛狀根的基礎(chǔ)上,又繼續(xù)在毛狀根中對(duì)甘草酸代謝途徑上的鯊烯合酶基因進(jìn)行了過(guò)表達(dá)研究,結(jié)果顯示過(guò)表達(dá)鯊烯合酶基因的甘草毛狀根中甘草酸的量為空白對(duì)照的2.6倍。Zhang等在甘草毛狀根中對(duì)甘草黃酮代謝途徑上的查耳酮合酶基因進(jìn)行了過(guò)表達(dá)研究,結(jié)果顯示培養(yǎng)3周后,空白對(duì)照、轉(zhuǎn)基因毛狀根以及用PEG8000(2%)處理過(guò)的轉(zhuǎn)基因毛狀根中總黃酮的量分別為0.842%、1.394%、2.838%,從而說(shuō)明過(guò)表達(dá)查耳酮合酶基因以及采用PEG8000同時(shí)進(jìn)行處理可大大提高甘草毛狀根中總黃酮的量。Mehrotra等則研究了光果甘草外植體年齡、類型和生理狀態(tài)對(duì)農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化能力及生物反應(yīng)器大規(guī)模培養(yǎng)毛狀根的影響。利用發(fā)根農(nóng)桿菌對(duì)甘草的子葉、子葉節(jié)、葉片、莖段、下胚軸、愈傷組織進(jìn)行毛狀根的誘導(dǎo),除愈傷組織外,均能獲得毛狀根,其中以下胚軸和子葉節(jié)誘導(dǎo)率高。甘草的毛狀根培養(yǎng)大多采用MS基本培養(yǎng)基,其主要的次生代謝產(chǎn)物為黃酮類化合物。6組織培養(yǎng)中功能基因的添加量甘草組織培養(yǎng)的另一個(gè)重要應(yīng)用就是利用懸浮細(xì)胞、愈傷組織或者毛狀根等組織培養(yǎng)物來(lái)累積甘草中的重要次生代謝產(chǎn)物,如甘草酸以及甘草總黃酮。為了能夠收獲到更多的次生代謝產(chǎn)物,國(guó)內(nèi)外研究者開展了諸如高產(chǎn)細(xì)胞株的篩選、有效成分的影響因素分析、活性成分的分離純化及生物反應(yīng)器的影響[37,38,39,40,41,42]等研究。甘草愈傷組織及毛狀根中所含的次生代謝產(chǎn)物主要為黃酮類化合物。王彥芹等在其研究中發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)3~4周的脹果甘草愈傷組織中總黃酮的量可以達(dá)到1.1%。余茜等對(duì)不同來(lái)源的光果甘草愈傷組織中的總黃酮量進(jìn)行了測(cè)定,結(jié)果發(fā)現(xiàn)來(lái)源于節(jié)間的愈傷組織中總黃酮的量最高;同時(shí)如果在培養(yǎng)基中添加水解乳蛋白500mg/L,則可極顯著地增加來(lái)源于各外植體的愈傷組織中總黃酮的量。楊世海等研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)在愈傷組織的培養(yǎng)過(guò)程中添加酵母提取物、水解酪蛋白、真菌誘導(dǎo)子、茉莉酸以及稀土元素等均能顯著提高甘草愈傷組織中黃酮類化合物的量。Zhang等在甘草毛狀根中過(guò)表達(dá)查耳酮合酶基因的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也提示代謝途徑中功能基因過(guò)表達(dá)會(huì)對(duì)最終的次生代謝產(chǎn)物的量產(chǎn)生重要影響。這些都為組織培養(yǎng)生產(chǎn)甘草黃酮提供了一條可借鑒的途徑。楊會(huì)琴等在對(duì)不同來(lái)源的甘草外植體進(jìn)行組織培養(yǎng)時(shí),發(fā)現(xiàn)其愈傷組織中含有一定量的甘草酸。其中來(lái)源于根部的愈傷組織中甘草酸量最高,為70.2mg/g,且黑暗條件更有利于甘草酸的合成,以添加激素組合2,4-D4.0mg/L+KT0.5mg/L對(duì)來(lái)源于根部的愈傷組織進(jìn)行懸浮培養(yǎng),甘草酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)可達(dá)到81.6mg/g,比生藥中還要高出51.08%。梁玉玲等對(duì)脹果甘草愈傷組織中的甘草酸的量進(jìn)行測(cè)定,發(fā)現(xiàn)甘草酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)隨著2,4-D質(zhì)量濃度的上升而升高,且在懸浮培養(yǎng)條件下,離體根培養(yǎng)物中甘草酸的質(zhì)量分?jǐn)?shù)明顯高于其他培養(yǎng)物,比生藥中增加43.3%。而Lu等的研究結(jié)果顯示在甘草毛狀根中過(guò)表達(dá)鯊烯合酶基因會(huì)提高毛狀根中甘草酸的量。這也為組織培養(yǎng)生產(chǎn)甘草酸提供了一條途徑。綜上所述,甘草組織培養(yǎng)物中的主要次生代謝產(chǎn)物為甘草黃酮和甘草酸。在組織培養(yǎng)物如愈傷組織、毛狀根中過(guò)表達(dá)黃酮代謝途徑或三萜代謝途徑上的關(guān)鍵功能基因則有利于相應(yīng)的次生代謝產(chǎn)物的積累。本課題組在對(duì)甘草酸代謝途徑上的功能基因進(jìn)行相關(guān)研究時(shí)也發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)3-羥基-3-甲基戊二酰輔酶A還原酶基因(3-hydroxy-3methylglutaryCoAreductase,HMGR)以及鯊烯合酶基因(squalenesynthase,SQS)均會(huì)對(duì)甘草酸代謝途徑下