磷對有毒甲藻生長和產毒力的影響

磷對有毒甲藻生長和產毒力的影響

近年來，有害赤潮的發(fā)生頻率、程度和危害日益嚴重，已成為一個全球問題（hualgaief，1993；周明江等，2003；嚴天等，2003）。能引發(fā)赤潮的海洋藻類有260多種,其中70多種能產生毒素(王煥玲等,2008)。塔瑪亞歷山大藻(Alexandriumtamarense)和微小亞歷山大藻(Alexandtiumminutum)是2種重要的有毒甲藻,其產生的麻痹性貝毒是世界范圍內分布最廣、危害最嚴重的一類毒素(于仁誠等,1998),它們與大多數麻痹性貝毒中毒事件密切相關。在我國大部分海域有發(fā)生赤潮的記錄(齊雨藻等,1994;1996;林元燒,1996;周宏農,1999),它們也是我國主要的赤潮甲藻種。能夠產生麻痹性貝毒的甲藻的生長和毒性受各種環(huán)境因子影響,其中營養(yǎng)鹽的影響非常顯著(Selanderetal,2008)。從20世紀90年代初開始,氮、磷等營養(yǎng)鹽對甲藻生長和產毒能力的影響受到關注(Andersonetal,1990)。以往研究多集中于含氮營養(yǎng)鹽對甲藻的影響(張清春等,2005a),盡管關于磷對藻類生長影響的研究有很多報道(Hallegraeff,2010),且Ikegami等(1995)對天然海水和人工海水培養(yǎng)的鞭毛藻的研究表明,無機磷在赤潮藻種增殖中具有重要性,但關于磷對赤潮甲藻增殖和有毒藻類產毒的影響研究仍相對較少。本文以塔瑪亞歷山大藻和微小亞歷山大藻2種有毒甲藻為試驗對象,研究不同磷濃度對其生長及產毒力的影響。1材料和方法1.1材料表面1.1.1試驗材料塔瑪亞歷山大藻編號ATCI01,存于暨南大學水生生物研究所藻種室。微小亞歷山大藻取自臺灣。1.1.2混合纖維濾膜的制備培養(yǎng)用海水取自集美大學海水試驗場天然海水,海水鹽度28～29,經孔徑為0.45μm的混合纖維濾膜過濾,120℃高壓濕熱滅菌20min,室溫冷卻后添加營養(yǎng)鹽備用。試驗藻類培養(yǎng)溫度為(20±1)℃,光照強度為3500～4000lx,光暗比(L∶D)為12h∶12h。1.1.3忽略不記之時配制f/2培養(yǎng)液的海水取自廈門海域,其磷的含量約0.03μmol/L,試驗中忽略不記。磷濃度設置4個梯度,以海水配制的f/2營養(yǎng)液為基礎,分別設置不添加NaH2PO4、添加50%NaH2PO4、添加100%NaH2PO4和添加150%NaH2PO4,其磷濃度分別為0、1.8、3.6和5.4μmol/L。1.2方法1.2.1培養(yǎng)液的制備2種有毒甲藻分別用4個梯度的營養(yǎng)液進行培養(yǎng),每個磷濃度設置3個重復。試驗在500mL三角燒瓶中進行,培養(yǎng)液300mL。將處于指數生長期的塔瑪亞歷山大藻和微小亞歷山大藻接種到三角燒瓶內,接種密度400個/mL,進行一次性培養(yǎng)。取樣時,將盛培養(yǎng)物的三角瓶搖勻,取2mL培養(yǎng)物用碘液固定后在顯微鏡下計數,重復3次,計數值間相差應小于15%,取2次相近數據的平均值為試驗結果。1.2.2藻毒力試驗原液的制備藻培養(yǎng)到第7天時收集,以2500g離心10min,棄掉上清液,加入5mL的0.01mol/LHCl并以1mol/LNaOH調整其pH處于3～4,在冰水浴中超聲破碎5～8min后鏡檢,當細胞全部破碎后,將其置于沸水中水浴5min,冷卻至室溫后,用0.01mol/LHCl和1mol/LNaOH調整其pH為3,再以蒸餾水定容至5mL,3000g離心10min,取上清液作藻毒力試驗的原液。1.2.3藻細胞毒力試驗依美國AOAC(AssociationofOfficialAnalyticalChemists)(1980)推薦的方法進行藻毒力試驗。取1mL上述試驗原液,腹腔注射小白鼠(昆明種,雄性,購自廈門大學抗癌中心),記錄其死亡時間,再依Sommer′sTable換算成毒力(AOAC,1980)。重復3次,取平均值為試驗結果。本文用鼠單位表示藻細胞毒力的大小。鼠單位(Mouseunit簡稱Mu)是國際上用于表示麻痹性貝毒素毒力的單位,定義為一只重20g的小白鼠在15min內死亡所需腹腔注射的劑量。根據藻毒力預試驗結果將上述試驗原液進行一定倍數的稀釋,將小白鼠的死亡時間調整至5～7min。根據死亡時間和小白鼠體重,按Sommer′sTable的死亡時間和體重修正表計算后,取平均值為試驗結果。1.2.4藻細胞密度和形態(tài)觀察在接種后每天從各三角燒瓶中取1mL,加1～2滴魯哥氏液固定藻細胞,以浮游生物計數框在顯微鏡下計數藻細胞,并計算密度。同時,取少量藻細胞在顯微鏡下觀察其細胞形態(tài),并用目微尺測量其大小。每個樣品測量30個藻細胞,取平均值。1.2.5數據分析獲得的試驗數據用SPSS軟件進行處理分析,進行單因素方差分析(OneWayANOVA),并用最小顯著差法(LSD)進行多重比較。2結果2.1接種密度和密度對藻細胞生長的影響塔瑪亞歷山大藻和微小亞力山大藻在不同磷濃度下的生長曲線見圖1。接種后1～4d,藻細胞生長比較遲緩。塔瑪亞歷山大藻在0μmol/L磷濃度下藻細胞生長幾乎停滯,一直保持在接種密度;其他磷濃度下塔瑪亞歷山大藻在4d后進入指數生長期,在6d和7d時,3.6μmol/L磷濃度組的塔瑪亞歷山大藻密度顯著高于1.8和5.4μmol/L磷濃度組(P<0.05)。微小亞力山大藻在1.8、3.6和5.4μmol/L磷濃度下生長無顯著性差異(P>0.05),但在0μmol/L磷濃度下生長緩慢,藻密度顯著低于其他3個有磷組(P<0.05)。2.2總磷濃度對小亞力山大藻產毒能力的影響塔瑪亞歷山大藻和微小亞力山大藻在不同磷濃度下的產毒能力見圖2。塔瑪亞歷山大藻在0μmol/L磷濃度下平均產毒能力最高,為3.0×10-4MU/個,顯著高于其他磷濃度組(P<0.05);3.6μmol/L磷濃度下平均產毒能力最低,為0.1×10-4MU/個,顯著低于其他磷濃度組(P<0.05);1.8和5.4μmol/L磷濃度下的平均產毒能力居中,分別為0.4×10-4和0.6×10-4MU/個,2者之間沒有顯著性差異(P>0.05)。微小亞力山大藻在0μmol/L磷濃度下平均產毒能力最高,為5.2×10-4MU/個,顯著高于其他3個磷濃度組(P<0.05);其他3個磷濃度組的平均產毒能力沒有顯著性差異(P>0.05)。2.3小球藻細胞磷代謝前后比對不同磷濃度下塔瑪亞歷山大藻和微小亞歷山大藻的細胞大小見表1。塔瑪亞歷山大藻和微小亞歷山大藻都是在0μmol/L磷濃度下具有較大的藻細胞,顯著高于其他3個磷濃度組(P>0.05)。在0μmol/L磷濃度下細胞大而圓,加碘液固定時顏色較深,藻細胞內顆粒清晰。3討論3.1不同濃度磷對藻細胞生長和分布的影響海水中的營養(yǎng)鹽是浮游植物生長的物質基礎,大多數赤潮藻類都具有吸收無機磷和有機磷的能力(黃世玉等,1997;Hallegraeff,2010)。已有研究表明,磷對亞歷山大藻的生長有明顯影響(張宜輝等,1999;曾江寧等,2004;張清春等,2005b;楊陽等,2008;劉瀟等,2008;繆宇平等,2009)。本試驗的研究結果表明,培養(yǎng)液中含有磷時能夠促進2種亞歷山大藻的生長,在磷限制的情況下(0μmol/L),2種藻生長緩慢,而在有磷補充的情況下生長快速,這與以往的研究結果一致(Kurtenetal,2007;劉瀟等,2008)。本試驗最長培養(yǎng)時間為7d,而類似的研究一般培養(yǎng)時間為20～30d,在接種后13～19d,2種亞歷山大藻才能達到最大的藻細胞密度(張清春等,2005a;張清春等,2005b;繆宇平等,2009)。2種亞歷山大藻培養(yǎng)7d處于指數生長初期,不同濃度磷對其生長的影響有所差異。微小亞歷山大藻處于指數生長初期時,磷營養(yǎng)鹽不是限制因子,所以在添加磷1.8、3.6和5.4μmol/L的情況下,其生長沒有差異。塔瑪亞歷山大藻則受到磷濃度影響,以往的研究表明無機磷對塔瑪亞歷山大藻增值的最適濃度為4.0～4.5μmol/L,在低于最適無機磷濃度時,隨無機磷濃度的增大,塔瑪亞歷山大藻細胞迅速增殖,當高于5.0μmol/L時,藻細胞生長受抑制(張宜輝等,1999)。塔瑪亞歷山大藻在沒有添加磷營養(yǎng)鹽時,磷成為限制因子,所以生長速率顯著低于其他3個磷濃度組;3.6μmol/L接近塔瑪亞歷山大藻最適磷濃度,所以具有最高的細胞密度;而1.8μmol/L尚未達到最適磷濃度,細胞密度較低,5.4μmol/L超過最適磷濃度,藻細胞生長受抑制,也具有較低的藻細胞密度。3.2細胞內氮代謝李瑞丹等(2010)研究表明,氮磷比例對藻細胞產毒能力有顯著影響。磷對毒素合成的影響有可能是通過一個間接的過程,即通過影響細胞內的氮代謝影響毒素的合成(于仁誠,等1998)。在磷限制條件下,2種亞歷山大藻的藻細胞大小顯著高于添加磷的試驗組,這表明在磷限制條件下,藻細胞積累的物質增多,其中與產毒相關的各種酶和毒素也相應增多,這也是藻細胞產毒能力增加的原因之一。3.3不同濃度磷限制條件下藻細胞產毒能力貝毒的檢測方法主要包括生物檢測法和化學檢測法。小鼠生物法是目前所有實驗室認可的標準檢測方法,該方法以產毒力表示檢測結果,是一種生物檢測法;高效液相色譜法是化學檢測方法的代表,具有直接定量貝毒的優(yōu)點,被很多研究所采用,該方法以產毒量表示檢測結果。本文采用小鼠生物法