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專業(yè):園藝姓名:尚靜專業(yè):園藝姓名:尚靜學(xué)號(hào):3140100506日期:2015年10月26日地點(diǎn):生物實(shí)驗(yàn)中心裝訂線課程名稱:生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)(甲)指導(dǎo)老師:方祥年成績(jī):__________________實(shí)驗(yàn)名稱:蛋白質(zhì)含量測(cè)定、蔗糖酶活力測(cè)定及純化方案的評(píng)價(jià)實(shí)驗(yàn)類型:同組學(xué)生姓名:沈杭寧、董文婷、蔣天佑一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮鸵螅ū靥睿? 二、實(shí)驗(yàn)內(nèi)容和原理(必填)三、實(shí)驗(yàn)材料與試劑(必填)四、實(shí)驗(yàn)器材與儀器(必填) 五、操作方法和實(shí)驗(yàn)步驟(必填)六、實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)記錄和處理 七、實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析(必填)八、討論、心得一、實(shí)驗(yàn)?zāi)康暮鸵?、學(xué)習(xí)Folin-酚法測(cè)定蛋白質(zhì)含量的原理和方法2、掌握分光光度法制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,準(zhǔn)確測(cè)定未知樣品的蛋白質(zhì)含量3、掌握分光光度計(jì)的使用方法4、掌握酶活力測(cè)定的基本原理和方法5、學(xué)習(xí)酶的比活力的計(jì)算二、實(shí)驗(yàn)內(nèi)容和原理1.Folin-酚法測(cè)定蛋白質(zhì)含量Folin-酚測(cè)定法是在雙縮脲反應(yīng)的基礎(chǔ)上發(fā)展起來的,F(xiàn)olin-酚試劑是由甲、乙兩種試劑組成的。甲試劑由碳酸鈉、氫氧化鈉、硫酸銅和酒石酸鉀鈉組成,在堿性條件下蛋白質(zhì)中的肽鍵與酒石酸鉀鈉銅鹽起作用,生成紫紅色絡(luò)合物;乙試劑是由磷鉬酸和磷鎢酸、硫酸、溴等組成,在堿性條件下,銅-蛋白質(zhì)絡(luò)合物以及蛋白質(zhì)中的酪氨酸殘基(酚基)和色氨酸還原磷鉬酸-磷鎢酸試劑(乙試劑)產(chǎn)生深藍(lán)色(鉬藍(lán)和鎢藍(lán)的混合物),其色澤深淺與蛋白質(zhì)含量成正比??捎?00nm波長(zhǎng)比色測(cè)定,適于測(cè)定蛋白質(zhì)含量0.05~0.5g/L.2、3,5-二硝基水楊酸比色法蔗糖酶(β-D-呋喃型果糖苷-果糖水解酶EC3.2.1.26),是一種水解酶。它能催化非還原性雙糖(蔗糖)的1,2-糖苷鍵裂解,將蔗糖水解為等量的葡萄糖和果糖(還原糖)。因此,每水解1mol蔗糖,就能生成2mol還原糖。還原糖的測(cè)定有多種方法,例如:納爾遜-索模吉(Nelson-Smogyi)試劑比色法,斐林試劑法等。本實(shí)驗(yàn)采用3.5-二硝基水楊酸法測(cè)定還原糖的含量。其原理是3.5-二硝基水楊酸與還原糖共熱被還原成棕紅色的氨基化合物,在一定范圍內(nèi)還原糖的量和反應(yīng)液的顏色深度成正比。因此可利用分光光度計(jì)在520nm進(jìn)行比色測(cè)定,求得樣品中的含糖量。蔗糖酶活力單位(u):蔗糖酶在室溫(25℃),pH4.5的條件下,每分鐘水解產(chǎn)生1μmol葡萄糖所需的酶量(ml)。蔗糖酶比活力的計(jì)算:酶的比活力——為每毫克蛋白質(zhì)所具有的酶活力單位數(shù),一般用酶活力單位/mg蛋白質(zhì)表示(比活力=活力單位/mg蛋白)。酶的比活力在酶學(xué)研究中用來衡量酶的純度,對(duì)于同一種酶來說,比活力越大,酶的純度越高。利用比活力的大小可以用來比較酶制劑中單位質(zhì)量蛋白質(zhì)的催化能力,是表示酶的純度高低的一個(gè)重要指標(biāo)。注:*葡萄糖(分子量:180.1572)和果糖(分子量:180.16)為同分異構(gòu)體。三、實(shí)驗(yàn)材料與試劑1、實(shí)驗(yàn)材料蔗糖酶提取的各步分離純化樣品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ??筛鶕?jù)樣品溶液的蛋白質(zhì)含量高低作適當(dāng)?shù)南♂尅?、實(shí)驗(yàn)試劑(1)Folin-酚測(cè)定法: ①標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)溶液:0.5g/L牛血清白蛋白 ②Folin-酚試劑(甲試劑、乙試劑)(2)3,5-二硝基水楊酸比色法: ①1g/L葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液(葡萄糖相對(duì)分子量198.17) ②5%蔗糖溶液 ③0.2mol/L乙酸緩沖液,pH4.5 ④3,5-二硝基水楊酸試劑(DNS)四、實(shí)驗(yàn)器材與儀器(1)恒溫水?。?0℃、100℃)(2)可見光分光光度計(jì)、1cm玻璃比色皿(3)試管、試管架(4)移液管(5)微量移液器:200μl、1000μl五、操作方法和實(shí)驗(yàn)步驟1.Folin-酚測(cè)定法:(1)制備Folin-酚法蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線取6支試管,編號(hào)1-6,按表1順序依次加入各種試劑,并在分光光度計(jì)于500nm處測(cè)定光吸收值(A500nm值)。(2)各步分離純化的蔗糖酶蛋白測(cè)定由于蔗糖酶提取、分離純化的各個(gè)樣品的蔗糖酶蛋白質(zhì)含量較高,因此在測(cè)蔗糖酶提取分離純化樣品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ的蔗糖酶蛋白質(zhì)含量以前,可根據(jù)各樣品溶液的蔗糖酶蛋白質(zhì)含量高低不同作適當(dāng)?shù)南♂?,以測(cè)定蔗糖酶蛋白質(zhì)含量A500nm值在蛋白質(zhì)含量標(biāo)準(zhǔn)曲線范圍以內(nèi)為宜。取13支試管,編號(hào)1~13,按表2依次加入各種試劑,并在分光光度計(jì)于500nm處測(cè)定光吸收值(A500nm值)。(3)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線并計(jì)算繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線:以光吸收值(A500nm)為縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)蛋白質(zhì)含量(mg/L)為橫坐標(biāo),在坐標(biāo)紙上繪制蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線。計(jì)算:蔗糖酶提取分離純化的樣品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ稀釋溶液的光吸收值(A500nm),查蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線得蔗糖酶蛋白含量,再進(jìn)行樣品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ溶液的最終蔗糖酶蛋白含量的計(jì)算。2.3,5-二硝基水楊酸比色法:(1)標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作表31234567葡萄糖含量(umol)01.01.52.02.53.03.51g/L葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液(ml)00.20.30.40.50.60.7H2O(ml)21.81.71.61.51.41.33.5-二硝基水楊酸(ml)1.01.01.01.01.01.01.0將各管溶液混勻后,在100℃恒溫水浴加熱5min,取出立即用冷水冷卻至室溫蒸餾水(ml)7777777將各管溶液混勻A520nm按照表3加樣,以葡萄糖含量(umol)為橫坐標(biāo),A520值為縱坐標(biāo),制作葡萄糖濃度-吸光值標(biāo)準(zhǔn)曲線。(2)蔗糖酶的酶活力測(cè)定表4樣品空白I(200倍稀釋)Ⅱ(200倍稀釋)Ⅲ(200倍稀釋)Ⅳ(100倍稀釋)編號(hào)123456789101112130.2mol/L乙酸緩沖液(ml)0.50.50.50.50.50.50.50.50.50.50.50.50.5蒸餾水(ml)1.00.950.80.50.950.80.50.950.80.50.950.80.5蔗糖酶液(ml)0.00.050.20.50.050.20.50.050.20.50.050.20.55%蔗糖溶液(ml)0.50.50.50.50.50.50.50.50.50.50.50.50.5保溫時(shí)間立即混勻后,50℃保溫10min3.5-二硝基水楊酸試劑(ml)1111111111111在100℃恒溫水浴中加熱5min蒸餾水7777777777777混勻A520根據(jù)測(cè)得的光吸收值(A520),查標(biāo)準(zhǔn)曲線得蔗糖酶活力,再進(jìn)行樣品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ溶液的最終蔗糖酶活力的計(jì)算。六、實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)記錄和處理1.Folin-酚測(cè)定法:制備Folin-酚法蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線表5Folin-酚法蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線數(shù)據(jù)記錄試管號(hào)123456A500nm00.1650.2700.4190.5130.639Folin-酚法蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線(2)各步分離純化的樣品蛋白含量測(cè)定表6各步分離純化的蔗糖酶蛋白測(cè)定樣品空白I(1:20稀釋)Ⅱ(1:10稀釋)Ⅲ(1:5稀釋)Ⅳ(1:1稀釋)編號(hào)12345678910111213A500nm00.1100.2740.6240.2650.4280.9130.1820.6661.0390.3010.7631.492蔗糖酶蛋白含量(mg)00.07110.20190.48110.19470.32470.71160.12850.5146—0.22340.5919—每ml稀釋液蛋白含量(mg)01.42201.00950.96223.89401.62351.42322.57002.5730—4.46802.9595—每ml稀釋液蛋白含量平均值(mg)01.13102.31362.57153.71382.3,5-二硝基水楊酸比色法:(1)制備3,5-二硝基水楊酸法標(biāo)準(zhǔn)曲線表73,5-二硝基水楊酸法標(biāo)準(zhǔn)曲線數(shù)據(jù)記錄試管號(hào)1234567葡萄糖含量(umol)01.01.52.02.53.03.5A520nm00.2450.3990.5180.8771.095數(shù)值過大舍去3,5-二硝基水楊酸法標(biāo)準(zhǔn)曲線蔗糖酶的酶活力測(cè)定表8蔗糖酶酶活力測(cè)定數(shù)據(jù)記錄樣品空白I(200倍稀釋)Ⅱ(200倍稀釋)Ⅲ(200倍稀釋)Ⅳ(100倍稀釋)編號(hào)12345678910111213A520nm00.3181.4951.6680.2361.3391.6840.3761.5621.7300.6431.7091.793葡萄糖含量(umol)01.1080——0.8838——1.2665——1.9964——蔗糖酶活力單位(u)00.1108——0.0884——0.1267——0.1996——稀釋液中蔗糖酶活力(u/ml)02.216——1.768——2.534——3.992——稀釋液中蔗糖酶活力平均值(u/ml)02.2161.7682.5343.992七、實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析結(jié)果:表9蔗糖酶各步純化樣品的純度與酶活力比較體積(ml)蛋白濃度(mg/ml)總蛋白(mg)活力(u/ml)總活力u比活力u/mg樣品Ⅰ20.022.620452.400443.28864.019.6樣品Ⅱ16.523.136381.744353.65834.415.3樣品Ⅲ9.512.858122.151506.84814.639.4樣品Ⅳ16.13.713859.792399.26427.12107.5分析:由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可得,隨著逐漸的分離提純,樣品Ⅰ到樣品Ⅳ的蛋白濃度降低,總蛋白含量也在降低,總活力也有所降低,而比活力則在逐步提高,表明蔗糖酶濃度在逐步提高,基本達(dá)到將蔗糖酶粗提純的目的。樣品Ⅱ的數(shù)據(jù)不是很符合上述結(jié)論,猜測(cè)與以下因素有關(guān):每次實(shí)驗(yàn)間隔時(shí)間較長(zhǎng),酶活性及蛋白質(zhì)有所損失,致使樣品Ⅱ的數(shù)據(jù)存在問題。樣品Ⅳ的比活力較高,表明蔗糖酶純度較高,可能與做離子分析柱層析分離純化蔗糖酶這一步時(shí),裝得的層析
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