溶菌酶的制備、酶活力和蛋白濃度的測定.ppt

1、溶菌酶的制備、蛋白質(zhì)的測定及該酶比活力的測定,Lysozyme preparation, protein determination and the determination of enzyme specific activity,生物制藥工藝學期末考核討論：,報告人：（0834110） 08屆食品學院制藥1班 2011.4.29,溶菌酶的來源：,1922年的一天，正在感冒的英國細菌學家Alexander Fleming發(fā)現(xiàn)，把一些鼻粘液加入細菌的培養(yǎng)基后會引起細胞的溶解。而這種存在于鼻粘液中的能殺死細菌的重要物質(zhì)被認為是一種酶， Fleming命名其為溶菌酶（ Lysozyme ）。 那時

2、，溶菌酶不能證明有臨床價值。但是在酶機制的研究學習方面，溶菌酶扮演了一個很重要的角色。,溶菌酶的結(jié)構(gòu),在1965年,David Phillips和他在牛津的同事以0.2nm分辨率的X射線晶體（X-ray crystallography）結(jié)構(gòu)分析法闡明了溶菌酶的三維結(jié)構(gòu)(tertiary structure)。,溶菌酶的作用機制：,溶菌酶是一種N-乙酰胞壁質(zhì)聚糖水解酶，該酶可以催化水解細菌細胞壁N-乙酰胞壁酸和N-乙酰氨基葡萄糖之間的-1，4糖苷鍵，使細胞壁不溶性多糖分解成可溶性糖肽，導致細胞壁破裂，使內(nèi)容物溢出而是細菌溶解，阻礙致病細菌的活性繁殖，并殺死細菌。,溶菌酶的制備,實驗原理 實驗材料

3、、試劑及儀器 實驗步驟 實驗看法,溶菌酶的制備,本實驗主要是以雞蛋清作為實驗材料，采用D152型樹脂柱層析法除去雜蛋白及等電點法提取溶菌酶的粗品,溶菌酶的制備：,雞蛋清中約含有0.3的溶菌酶，分子量為14，000，等電點為11.1，最適溶菌溫度為50，最適pH值為7。雞蛋清溶菌酶化學性質(zhì)非常穩(wěn)定，當pH值在1.211.3范圍內(nèi)劇烈變化時，其結(jié)構(gòu)仍穩(wěn)定不變，遇熱時該酶也很穩(wěn)定，在pH47的范圍內(nèi)，100處理lmin，仍保持原酶活性。但在堿性環(huán)境中，該酶對熱穩(wěn)定性較差。其一級結(jié)構(gòu)由129個氨基酸殘基組成的一條多肽鏈，其穩(wěn)定性主要與多級結(jié)構(gòu)中的4對二硫鍵、氫鍵及疏水鍵相互作用。 人溶菌酶的溶菌活性比

4、雞蛋清溶菌酶高3倍。,溶菌酶的制備,實驗主要儀器、材料及試劑： （一）主要儀器： 高速冷凍離心機、恒流泵、部分收集器 （二）材料及儀器： D152大孔弱酸性陽離子交換樹脂，新鮮雞蛋，0.1mol/L磷酸鹽緩沖劑，pH7.0 , 氯化鈉，硫酸銨，0.5mol/L NaOH, 0.5mol/L HCl,層析柱（2.6cm*30cm）, 無水乙醇 ， 聚乙二醇,溶菌酶的制備,實驗步驟： 蛋清樣品的制備： 取出蛋清，加入1.5倍體積的0.1mol/L磷酸鹽緩沖劑，攪拌均勻，將pH值調(diào)至8左右，然后用八層紗布過濾，去濾液，量取體積并記錄。,溶菌酶的制備,實驗步驟： 陽離子交換層析的制備： 1、D152樹

5、脂的處理：將D152樹脂先將蒸餾水洗去雜物，濾除，用1mol/L NaOH攪拌浸泡并攪拌48h，抽濾干NaOH,用蒸餾水洗近pH7.5左右，抽濾干，再用1mol/L HCl按上述方法處理樹脂，知道全部轉(zhuǎn)變?yōu)闅湫?，抽濾干HCl，用2mol/ L NaOH處理樹脂，是指轉(zhuǎn)變?yōu)殁c型，pH值不低于6.5。吸干溶液，加0.02mol/L的磷酸鹽緩沖劑（pH6.5）平衡樹脂。 2、裝柱：取直徑為2.6cm，長度為30cm的層析柱，自頂部注入經(jīng)處理過的上述樹脂懸浮液，關(guān)閉層析柱出口，帶樹脂沉降后，放過量的溶液，再加上一些樹脂，至樹脂沉積至1520cm高度即可。與柱子頂部繼續(xù)加入0.02mol/L的磷酸鹽緩沖

6、劑（pH6.5）平衡樹脂。最終是流出液pH為6.5為止，關(guān)閉柱子出口，保持頁面高出樹脂表面1cm。,溶菌酶的制備,裝柱吸附：將上述蛋清液仔細加入到樹脂頂部，打開出口使其緩慢流如注內(nèi)，流速為1ml/min。 去雜蛋白：取出樹脂，用柱平衡液洗去樹脂上可能有的雜蛋白。在手機洗脫液的過程中，逐管用紫外分光光度計檢測雜蛋白的洗脫情況，當基線開始走平后，改用含1.0mol/L NaCl的pH值6.5、濃度為0.02mol/L 磷酸鈉緩沖液洗脫收集洗脫液！ 聚乙二醇濃縮：將上訴洗脫液合并裝入透析袋內(nèi)，至容器外，外面附以聚乙二醇，容器加蓋。酶液中的水分很快就透析到膜外，被聚乙二醇所吸收。然后所得濃縮液之后的透

7、析袋用蒸餾水洗去透析袋膜外的聚乙二醇！小心取的濃縮版的溶菌酶溶液,實驗看法：,與教科書P488頁制備方法不同的是：教材所選用的吸附方法使用磁力攪拌器攪拌蛋清液和樹脂，個人覺得此方法可以用于樣品較小的情況下，大約在300毫升以下！,溶菌酶活力、蛋白濃度的測定,實驗原理 實驗儀器、材料及試劑 試劑配制 實驗步驟,溶菌酶活力、蛋白濃度的測定,實驗儀器、材料及試劑： （一）儀器：721分光光度計 (二) 材料及試劑： 溶菌酶，磷酸氫二鈉，磷酸二氫鈉，溶壁微球菌干粉，氯化鈉，考馬斯亮藍G-250, 95%乙醇，85%磷酸，牛血清蛋白（BSA）,溶菌酶蛋白濃度的測定,實驗原理： 棕紅色的染料考馬斯亮藍G-

8、250與蛋白質(zhì)結(jié)合后，形成藍色的復合物最大吸光度由465nm變?yōu)?95nm。在一定蛋白濃度范圍內(nèi)，蛋白和染料的結(jié)合符合比爾定律。通過測定595nm處的光吸收值的增加量，可對蛋白質(zhì)濃度進行定量測定。,溶菌酶活力、蛋白濃度的測定,試劑的配制： 1、測活緩沖液：含30mmol/L NaCl的0.1mol/L磷酸鹽緩沖液，pH6.2。 2、底物濃度：40mg溶壁微球菌干粉，榮譽100mL測活緩沖液中。 3、考馬斯亮藍G-250試劑;考馬斯亮藍G-250 100mL 95%乙醇中，加入100mL 85%鹽酸，用蒸餾水稀釋至1000mL,濾紙過濾。 4、標準蛋白質(zhì)溶液，用含有0.1mol/L磷酸鹽緩沖液，

9、pH7.0(緩沖液A)配制1mg/mL牛血清蛋白溶液。 5、溶菌酶液配制：取上述實驗中所獲得的溶菌酶粗品液，榮譽100mL的測活緩沖液。,溶菌酶蛋白濃度的測定,實驗步驟 標準曲線的測定： 取14支試管按下表，分兩組進行平行操作：,溶菌酶蛋白濃度的測定,按上表的數(shù)據(jù)，以A595為縱坐標，標準蛋白含量為橫坐標，繪制標準曲線。 測定未知樣品的蛋白質(zhì)濃度：測定方法同上。去合適的未知樣品提及，使其測定值在標準曲線的線性范圍內(nèi)。根據(jù)所測定的A595值，在標準曲線上查處相當于標準蛋白的Laing，從而計算出未知樣品的蛋白質(zhì)濃度（mg/mL）,溶菌酶蛋白濃度的測定,實驗備注： 若樣品濃度超出了標準曲線的線性范圍，則適當加以稀釋，稀釋至標準曲線的線性范圍之內(nèi)的濃度！,溶菌酶活力的測定,實驗原理： 本實驗以溶壁微球菌為底物，通過測定細菌懸液濁度的變化（OD600）來測定溶菌酶的活性,溶菌酶活力的測定,酶活力的測定： 在室溫下，取2個試管，分別在1號管中加入3.0mL測活緩沖液，2.5mL底物濃度；2號管中加入2.5mL測活緩沖液，2.5mL酶液。以2號管為對照，根據(jù)不同反應時間內(nèi)在721分光光度計上每隔30s測定1號650nm處的吸光值。按下列表格記錄是按結(jié)果：,溶菌酶活力的測定,實驗數(shù)據(jù)處理 酶活力單位（