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文檔簡介
1、轉基因小鼠的鑒定、 剪鼠尾1. 剪鼠尾的時間 當新生的小鼠年齡達到兩到三周(耳朵已經(jīng)長開)時剪鼠 尾較好,此時鼠尾剪起來比較容易且小鼠的生命力比較強。2. 分辨小鼠的年齡a當小鼠整個身體較紅且腹部無奶時,此小鼠當天出生或前一晚出生; b當小鼠腹部有奶(腹部有一小團白色物質(zhì)),此小鼠出生23 天; c當小鼠背部長出皮毛時,此小鼠出生 34天;d當小鼠毛長全,但眼未開時,此小鼠出生 10天左右;e當小鼠眼剛開,耳未開時,此小鼠出生 12天左右;f當小鼠耳剛開時,此小鼠出生14天左右。3. 剪鼠尾后對小鼠的標記 :打耳孔法二、從鼠尾中提取DNA采用鼠尾基因組DNA提取試劑盒(康為世紀:CW2094)
2、提取DNA,操作如 下:1. 剪取小鼠長度為的尾巴,放入滅菌后的離心管中,加入180卩L Buffer GTT震蕩混勻。2. 加入20卩L proteinase ,渦旋震蕩,徹底混勻。3. 置于56C水浴,直到組織溶液完全清澈,一般需消化6-8h,賦予過程中渦旋 震蕩,使樣品均勻分離。1) 如果賦予和渦旋震蕩后仍然有膠狀物質(zhì),必要時過夜消化再加入20 d protei nase K消化,不會影響后續(xù)操作。2)如需去除RNA,可在上述步驟完成后,加入 4濃度為100mg/d的 RNase A溶液,震蕩混勻,室溫放置 5-10min。4.14000rpm離心1min,以消除未消化的類似于鼠毛等組織
3、,將上清轉移到一個新的滅過菌的離心管中。5. 加入200 ilBuffer GL ,渦旋震蕩,充分混勻,加入 200 d無水乙醇,渦旋振蕩,充分混勻,短暫離心,使管壁上的溶液收集到管底。1)加入 Buffer GL 和無水乙醇后要立即渦旋震蕩混勻。2)如果多個樣品一起操作, Buffer GL 和無水乙醇可以等比例混勻后一起 加入樣品。3)加入 Buffer GL 和無水乙醇后可能會產(chǎn)生白色沉淀, 不會影響后續(xù)操作。6. 將步驟 5 中所得到的溶液全部加入到已裝入收集管的吸附柱中, 若以此不能 加完溶液,可分多次轉入。lOOOOrpm離心1min,倒掉收集管中的廢液,將 吸附柱重新放回收集管中
4、。7. 向吸附柱中加入500 pl Buffer GW1 (使用前檢查是否已加無水乙醇),10000 rpm離心1mi n,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。8. 向吸附柱中加入 500 pl Buffer GW2 (使用前檢查是否已加無水乙醇),10000 rpm離心1mi n,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱重新放回收集管中。如需 進一步提高 DNA 純度,可重復步驟 8。9.12000rpm離心2min,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱置于室溫數(shù)分鐘,以 徹底晾干。注意:這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除,乙醇的殘留會影響后續(xù) 的酶促反應(酶切,PCR等)。10.將吸附柱置于一個
5、新的滅過菌的離心管中,向吸附柱的中間部位懸空加入50-200 p Buffer GE 或滅菌水,室溫放置 2-5min,10000rpm 離心 1min,收 集DNA溶液,-20 C保存DNA。1) 如果下游實驗對PH值或EDTA敏感,可以用滅菌水洗脫,洗脫液的PH 值對洗脫效率有很大影響,若用水作洗脫液應保證其 PH 值在直接, PH 值 低于時洗脫效率不高。2)離心前室溫孵育 5min 可增加產(chǎn)量。3)用另外的50-200 p L Buffer GE或滅菌水再次洗脫可以增加產(chǎn)量。4)如果需要提高 DNA 的終濃度,可以將步驟 10所得的 DNA 洗脫液重新 加至吸附膜上,重復步驟10;若洗
6、脫體積小于200pL,可以增加DNA的 終濃度,但可能會減少總產(chǎn)量。三、PCRPCR程序設定:1=94.0Tfor 5:002=94.0Tfor 1:003=59.0Tfor 0:504=72.0Tfor 1:005=Goto 22times6=94Tfor0:507=58Tfor 0:508= 72T for 1:009= Goto 62times10=94.0Tfor 0:5011=56.0Tfor 0:5012=72.0Tfor 1:0013= GotolO 32times14= 72OC for 10:0015= 4.0C for 5:0016= END 目前實驗室的雙轉基因小鼠 AD
7、 體系采用:PCR反應的體系(12 pl): APPPrimer APP-1pPrimer APP-2plddH2O2plmix( CW0682)6plDNA1 plPCR反應的體系(12 p): PS1Primer PS1-1plPrimer PS1-2pl內(nèi)參 -11 pl內(nèi)參-21plmix( CW0682) 6plDNA1 pl先在的EP管中加入總的體系再平均分裝入各個 PCR管中(一般多加兩小管 的量),將移液器調(diào)到總量的1/3到1/2體積在EP管中緩慢抽吸若干次(盡量避 免產(chǎn)生氣泡)以便Taq酶混合均勻,最后再在各 PCR管中依次加入DNA樣品。引物處理方法: 引物在安基生物有限公司合成后, EP 管上會有標記,一般為 x nmol,使用前先用12000rpm離心1min,加入10x pddH2O,渦旋振動混勻, 微型離心機離心,即可得到100 的母液,取10 p的母液,用ddH2O稀釋10 倍,即加入90 p,混勻后即可得到10側 的引物工作液。四、 電泳1配膠:鑒定用的膠板有大、 中、小3種,分別用的梳子為 50、25、11齒。 分別用的*TBE的量為90ml、45ml、25ml。用的瓊脂糖凝膠。2. 點樣:12 p的DNA,Marker加5P。點樣時注意逐個點樣,不要點錯, 最好把
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