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1、細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)掃盲一、細(xì)胞培養(yǎng)基本概念細(xì)胞培養(yǎng)是指從體內(nèi)組織取出細(xì)胞模擬體內(nèi)環(huán)境,在無(wú)菌、適當(dāng)溫度及酸堿度和一定營(yíng)養(yǎng)條件下,使其生長(zhǎng)繁殖,并維持其結(jié)構(gòu)和功能的一種培養(yǎng)技術(shù)。細(xì)胞培養(yǎng)的培養(yǎng)物為單個(gè)細(xì)胞或細(xì)胞群。在醫(yī)學(xué)遺傳學(xué)研究中應(yīng)用最廣泛的是外周血淋巴細(xì)胞、皮膚成纖維細(xì)胞和各種能在體外長(zhǎng)期生長(zhǎng)的細(xì)胞系。外周血淋巴細(xì)胞培養(yǎng)具有時(shí)間短、技術(shù)簡(jiǎn)便、可重復(fù)取材等優(yōu)點(diǎn),它在臨床染色體分析中使用最廣泛。體外培養(yǎng)細(xì)胞株可在培養(yǎng)過(guò)程中發(fā)生自發(fā)的或在外界作用下的轉(zhuǎn)化,成為永久細(xì)胞系,也可直接建成永久細(xì)胞系,永久細(xì)胞系能在體外無(wú)限制制的傳代和生長(zhǎng)。永久細(xì)胞系通常具有非整倍體細(xì)胞和各個(gè)細(xì)胞的核型不完全相同特征。但細(xì)胞克
2、隆的細(xì)胞系其這一特征可以不明顯。二、細(xì)胞培養(yǎng)的環(huán)境細(xì)胞在體外培養(yǎng)中所需的條件與體內(nèi)細(xì)胞基本相同。1、無(wú)污染環(huán)境培養(yǎng)環(huán)境無(wú)毒和無(wú)菌是保證細(xì)胞生存的首要條件。當(dāng)細(xì)胞放置于體外培養(yǎng)時(shí),與體內(nèi)相比細(xì)胞丟失了對(duì)微生物和有毒物的防御能力,一旦被污染或自身代謝物質(zhì)積累等,可導(dǎo)致細(xì)胞死亡。因此在進(jìn)行培養(yǎng)中,保持細(xì)胞生存環(huán)境無(wú)污染、代謝物及時(shí)清除等,是維持細(xì)胞生存的基本條件。2、恒定的溫度維持培養(yǎng)細(xì)胞旺盛生長(zhǎng),必須有恒定適宜的溫度。人體細(xì)胞培養(yǎng)的標(biāo)準(zhǔn)溫度為36.5±0.5,偏離這一溫度范圍,細(xì)胞的正常代謝會(huì)受到影響,甚至死亡。培養(yǎng)細(xì)胞對(duì)低溫的耐受力較對(duì)高溫強(qiáng),溫度上升不超過(guò)39時(shí),細(xì)胞代謝與溫度成正比
3、;人體細(xì)胞在39-401小時(shí),即能受到一定損傷,但仍有可能恢復(fù);在40-411小時(shí),細(xì)胞會(huì)普遍受到損傷,僅小半數(shù)有可能恢復(fù);41-421小時(shí),細(xì)胞受到嚴(yán)重?fù)p傷,大部分細(xì)胞死亡,個(gè)別細(xì)胞仍有恢復(fù)可能;當(dāng)溫度在43以上1小時(shí),細(xì)胞全部死亡。3、氣體環(huán)境氣體是人體細(xì)胞培養(yǎng)生存必需條件之一,所需氣體主要有氧氣和二氧化碳。氧氣參與三羧酸循環(huán),產(chǎn)生供給細(xì)胞生長(zhǎng)增殖的能量和合成細(xì)胞生長(zhǎng)所需用的各種成分。開(kāi)放培養(yǎng)時(shí)一般把細(xì)胞置于95%空氣加5%二氧化碳混合氣體環(huán)境中。二氧化碳既是細(xì)胞代謝產(chǎn)物,也是細(xì)胞生長(zhǎng)繁殖所需成分,它在細(xì)胞培養(yǎng)中的主要作用在于維持培養(yǎng)基的PH值。大多數(shù)細(xì)胞的適宜PH為7.2-7.4,偏離這
4、一范圍對(duì)細(xì)胞培養(yǎng)將產(chǎn)生有害的影響。但細(xì)胞耐酸性比耐堿性大一些,在偏酸環(huán)境中更利于細(xì)胞生長(zhǎng)。有資料顯示,原代羊水細(xì)胞培養(yǎng)PH6.8時(shí)最適。細(xì)胞培養(yǎng)液PH濃度的調(diào)節(jié)最常用的為加NaHCO3的方法,因?yàn)镹aHCO3可供CO2,但二氧化碳易于逸出,故最適用于封閉培養(yǎng),而羥乙基哌嗪乙硫磺酸(HEPES)因其對(duì)細(xì)胞無(wú)毒性,也起緩沖作用,有防止PH迅速變化的特性而用于開(kāi)放細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)中,其最大優(yōu)點(diǎn)是在開(kāi)放式培養(yǎng)或細(xì)胞觀察時(shí)能維持較恒定的PH值。4、細(xì)胞培養(yǎng)基培養(yǎng)是既是培養(yǎng)細(xì)胞中供給細(xì)胞營(yíng)養(yǎng)和促使細(xì)胞生殖增殖的基礎(chǔ)物質(zhì),也是培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)和繁殖的生存環(huán)境。培養(yǎng)基的種類很多,按其物質(zhì)狀態(tài)分為半固體培養(yǎng)基和液體培養(yǎng)
5、基兩類;按其來(lái)源分為合成培養(yǎng)基和天然培養(yǎng)基。(1)合成培養(yǎng)基:合成培養(yǎng)基是根據(jù)細(xì)胞所需物質(zhì)的種類和數(shù)量嚴(yán)格配制而成的。內(nèi)含碳水化合物、氨基酸、脂類、無(wú)機(jī)鹽、維生素、微量無(wú)素和細(xì)胞生長(zhǎng)因子等。單獨(dú)使用細(xì)胞雖有生存但不能很好的生長(zhǎng)增殖。(2)天然培養(yǎng)基:使用最普遍的天然培養(yǎng)基是血清,基本以小牛血清最普遍。血清由于含有多種細(xì)胞生長(zhǎng)因子、促粘附因子及其多種活性物質(zhì)。與合成培養(yǎng)基合用,能使細(xì)胞順利增殖生長(zhǎng)。常見(jiàn)使用最為5-20%。三、細(xì)胞培養(yǎng)設(shè)施和基本條件1、實(shí)驗(yàn)室設(shè)計(jì)細(xì)胞培養(yǎng)是一種無(wú)菌操作技術(shù),要求工作環(huán)境和條件必須保證無(wú)微生物污染和不受其它有害因素的影響。細(xì)胞培養(yǎng)室和設(shè)計(jì)原則是防止微生物污染和有害因
6、素影響,要求工作環(huán)境清潔、空氣清新,干燥和無(wú)煙塵。細(xì)胞培養(yǎng)工作包括:工作液配制、無(wú)菌操作(采樣)、溫育、無(wú)菌處理,細(xì)胞和用品貯存等。細(xì)胞培養(yǎng)室的設(shè)計(jì)實(shí)施原則一般是無(wú)菌操作區(qū)設(shè)在室內(nèi)較少走動(dòng)的內(nèi)側(cè),常規(guī)操作和封閉培養(yǎng)于一室,而洗刷消毒在另一室。2、常用設(shè)施及設(shè)備(1)超凈工作臺(tái):也稱凈化工作臺(tái),分為側(cè)流式、直流式和外流式三大類。(2)無(wú)菌操作間:一般由更衣間、緩沖間和操作間三部分組成。操作間放置凈化工作臺(tái)及二氧化碳培養(yǎng)箱、離心機(jī)、倒置顯微鏡等。緩沖間可放置電冰箱、冷藏器及消毒好的無(wú)菌物品等。(3)操作間:普通培養(yǎng)箱、離心機(jī)、水浴鍋、定時(shí)鐘、普通天平及日常分析處理物品。(4)洗刷消毒間:烤箱、消毒
7、鍋、蒸餾水處理器及酸缸等。 (5)分析間:顯微鏡、計(jì)算機(jī)及打印機(jī)等。3、培養(yǎng)器皿細(xì)胞培養(yǎng)以玻璃器皿為主,常準(zhǔn)備最需使用量的三倍。器皿應(yīng)選擇透明度好、無(wú)毒、中性硬度玻璃制品。常用的玻璃器皿有下面幾種。(1)液體儲(chǔ)存瓶:用于儲(chǔ)存各種配制好的培養(yǎng)液、血清等液體,常以500ml、250ml、100ml生理鹽水瓶或血漿瓶代替。(2)培養(yǎng)瓶:根據(jù)培養(yǎng)細(xì)胞種類要求不同培養(yǎng)瓶的形態(tài)各異,用于細(xì)胞傳代培養(yǎng)的細(xì)胞要求瓶壁厚簿均勻,便于細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)和觀察,瓶口要大小一致,口徑一般不小于1cm,允許吸管伸入瓶?jī)?nèi)任何部位,規(guī)格有200ml、100ml、50ml、25ml、10ml等幾種。用于外周血培養(yǎng)的常用10ml普通
8、圓瓶。兩種培養(yǎng)瓶均要求選用優(yōu)質(zhì)玻璃制成。(3)培養(yǎng)皿:用于開(kāi)放式培養(yǎng)及其它用途。分直徑30mm、60mm、120mm等幾種。(4)吸管:常用的有長(zhǎng)吸管和短吸管兩類,長(zhǎng)吸管也稱刻度吸管。其改良后管上部有球型刻度稱改良吸管,刻度吸管用于移動(dòng)液體。常用1ml和10ml兩種。短吸管也叫滴管,分彎頭和直頭兩種。(5)離心管:離心管是細(xì)胞培養(yǎng)中使用最廣泛的器皿,根據(jù)用途不同形態(tài)各樣,常用于細(xì)胞培養(yǎng)的離心管有大腹式尖底離心管和普通尖底離心管兩類。前者分別為50ml、30ml、15ml;后者則多為10ml和5ml。(6)其它:如三角燒瓶、燒杯、量筒、漏斗、注射器等。四、培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)體外培養(yǎng)細(xì)胞根據(jù)它們?cè)谂囵B(yǎng)器
9、皿是否能貼附于支持物上生長(zhǎng)特征,可分為貼附型生長(zhǎng)和懸浮型生長(zhǎng)兩大類。貼附型細(xì)胞在培養(yǎng)時(shí)能貼附在支持物表面生長(zhǎng)。如羊水細(xì)胞為貼附型細(xì)胞,常表現(xiàn)為成纖維型細(xì)胞和上皮細(xì)胞生長(zhǎng)。懸浮型細(xì)胞在培養(yǎng)中懸浮生長(zhǎng)。1、成纖維型細(xì)胞在培養(yǎng)中的細(xì)胞凡形態(tài)與成纖維細(xì)胞類似時(shí),皆可稱之為成纖維細(xì)胞。本型細(xì)胞由形態(tài)與體內(nèi)成纖維細(xì)胞的形態(tài)相似而得名,細(xì)胞在支持物表面呈梭形或不規(guī)則三角形生長(zhǎng),細(xì)胞中央有卵圓形核,胞質(zhì)向外伸出2-3厘米個(gè)長(zhǎng)短不同的突起,除真正的成纖維細(xì)胞外,凡由中胚層間質(zhì)起源的組織細(xì)胞常呈本類形態(tài)生長(zhǎng)。2、上皮型細(xì)胞此類型細(xì)胞在培養(yǎng)器皿支持物上生長(zhǎng)具有扁平不規(guī)則多角形特征,細(xì)胞中央有圓形核,細(xì)胞緊密相連單層
10、膜樣生長(zhǎng)。起源于內(nèi)、外胚層細(xì)胞如皮膚、表皮衍生物、消化管上皮等組織細(xì)胞培養(yǎng)時(shí),皆呈上皮型形態(tài)生長(zhǎng)。3、游走型細(xì)胞本型細(xì)胞在支持物上散在生長(zhǎng),一般不連成片。細(xì)胞質(zhì)經(jīng)常伸出偽足或突起,呈活躍的游走或變形運(yùn)動(dòng),速度快且不規(guī)則。此型細(xì)胞不很穩(wěn)定,有時(shí)亦難和其它型細(xì)胞區(qū)別。在一定的條件下,由于細(xì)胞密度增大連成片后,可呈類似多角型或成纖維細(xì)胞形態(tài)。常見(jiàn)于羊水細(xì)胞培養(yǎng)的早期。五、培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)分析培養(yǎng)細(xì)胞隨貼附支持物形狀不同而形態(tài)各異,最常見(jiàn)的是貼附于平面支持物細(xì)胞。在一般光鏡下生存中的細(xì)胞是均質(zhì)而透明的,結(jié)構(gòu)不明顯。細(xì)胞在生長(zhǎng)期常有1-2個(gè)核仁在細(xì)胞機(jī)能狀態(tài)不良時(shí),細(xì)胞輪廓會(huì)增強(qiáng),反差增大。若胞質(zhì)中時(shí)而出現(xiàn)
11、顆粒、脫滴和腔泡等,表明細(xì)胞代謝不良。六、培養(yǎng)用品的清洗與消毒目前我國(guó)細(xì)胞培養(yǎng)器皿主要仍使用能反復(fù)使用的玻璃器皿,清洗的主要目的為清除雜質(zhì)和微生物,使在器皿內(nèi)不殘留任何影響細(xì)胞生長(zhǎng)的成份。因而在組織細(xì)胞培養(yǎng)中清洗和消毒是一項(xiàng)極為重要的環(huán)節(jié)。 (一) 清洗在組織細(xì)胞培養(yǎng)中,體外細(xì)胞對(duì)任何有害物質(zhì)都非常敏感。微生物產(chǎn)品附帶雜物,上次細(xì)胞殘留物及非營(yíng)養(yǎng)成分的化學(xué)物質(zhì),均能影響培養(yǎng)細(xì)胞的生長(zhǎng)。因此對(duì)新使用和重新使用的培養(yǎng)器皿都要嚴(yán)格徹底的清洗,且要根據(jù)器皿的組成材料不同,選擇不同的清洗方法。1、玻璃器皿的清洗組織細(xì)胞培養(yǎng)中,使用量最大的是玻璃器皿,故工作最最大的是玻璃器皿的清洗。一般玻璃器皿的清洗包括
12、浸泡、刷洗、浸酸和沖洗四個(gè)步驟。清洗后的玻璃器皿僅要求干凈透明無(wú)油跡,而且不能殘留任何物質(zhì)。(1)浸泡:初次使用和培養(yǎng)使用后的玻璃器皿均需先用清水浸泡,以使附著物軟化或被溶解掉。新的初次使用的玻璃器皿,在生產(chǎn)及運(yùn)輸過(guò)程中,玻璃表面帶有大量的干固的灰塵,且玻璃表面常呈堿性及帶有一些對(duì)細(xì)胞有害的物質(zhì)等。新瓶使用前應(yīng)先用自來(lái)水簡(jiǎn)單刷洗,然后用稀鹽酸液(5)浸泡過(guò)夜,以中和其中的堿性物質(zhì)。再次使用的玻璃器皿則常附有大量剛使用過(guò)的蛋白質(zhì),干固后不易洗掉,故用后要立即浸入水中,且要求完全浸入,不能留有氣泡或浮在液面上。(2)刷洗:浸泡后的玻璃器皿一般要用毛刷沾洗滌劑刷洗,以除去器皿表面附著較牢的雜質(zhì)。刷洗
13、要適度,過(guò)度會(huì)損害器皿表面光澤度。(3)浸酸:清潔液是由重鉻酸鉀、濃硫酸和蒸餾水按一定比例配制而成,其處理過(guò)程稱為浸酸。清潔液對(duì)玻璃器皿無(wú)腐蝕作用,而其強(qiáng)氧化作用可除掉刷洗不掉的微量雜質(zhì)。清潔液去污能力很強(qiáng)。是清洗過(guò)程中關(guān)鍵的一環(huán)。浸泡時(shí)器皿要充滿清潔液,勿留氣泡或器皿露出清潔液面。浸泡時(shí)間一般為過(guò)夜,不應(yīng)少于6小時(shí)。 清潔液可根據(jù)需要,配制成不同的強(qiáng)度,常用的下列三種:
14、; 重鉻酸鉀(g) 濃硫酸(ml) 蒸餾水(ml) (A)強(qiáng)清潔液 63 1000 &
15、#160; 200000 (B)次強(qiáng)清洗液 120 200 1000 (C)弱清潔液
16、 100 100 100 清潔液配制時(shí)應(yīng)注意安全,須穿戴耐酸手套和圍裙,并要保護(hù)好面部及身體裸露部分
17、。配制過(guò)程中可使重鉻酸鉀溶于水中,然后慢慢加濃硫酸。并不停的用玻璃棒攪拌,使產(chǎn)生的熱量揮發(fā)。配制溶液應(yīng)選擇塑料制品。配成后清潔液一般為棕紅色。(4)沖洗:玻璃器皿在使用后,刷洗及浸泡后都必須用水充分沖洗。使之盡量不留污染或潔液的殘跡。沖洗最好用洗滌裝置,既省力,效果又好。如用手工操作,則需流水沖洗十次以上,每天水須灌滿及倒干凈,最好用蒸餾水清洗3-5次,晾干備用。 2、膠塞的清洗 細(xì)胞培養(yǎng)中所用的橡膠制品主要是瓶塞。新購(gòu)置的瓶塞帶有大量滑石粉及雜質(zhì),應(yīng)先用自來(lái)水沖洗,再做常規(guī)處理,常規(guī)清洗方法是:每次用后立即置入水中浸泡,然后用2% NaOH或洗衣粉煮沸10-20分鐘,以除掉培養(yǎng)中的蛋白質(zhì)。自
18、來(lái)水沖洗后,再用1%稀鹽酸浸泡30分鐘或蒸餾水沖洗后再煮沸10-20分鐘,晾干備用。3、塑料制品的清洗塑料制品現(xiàn)多是采用無(wú)毒并已經(jīng)特殊處理的包裝,打開(kāi)包裝即可用,多為一次性物品。必要時(shí)用2% NaOH浸泡過(guò)夜,用自來(lái)水充分沖洗,再用5%鹽酸溶液浸泡30分鐘,最后用自來(lái)水和蒸餾水沖洗干凈,晾干備用。(二)消毒細(xì)胞培養(yǎng)的最大危險(xiǎn)是發(fā)生培養(yǎng)物的細(xì)菌,真菌和病毒等微生物的污染,污染主要是由于操作者的疏忽而引起,常見(jiàn)的原因有操作間或周圍空間的不潔,培養(yǎng)器皿和培養(yǎng)液消毒不合格或不徹底,由于有關(guān)培養(yǎng)的每個(gè)環(huán)節(jié)的失誤均能導(dǎo)致培養(yǎng)失敗,故細(xì)胞培養(yǎng)的每個(gè)環(huán)節(jié)都應(yīng)嚴(yán)格遵守操作常規(guī),防止發(fā)生污染。消毒方法分為三類:
19、(A) 物理滅菌法(紫外線、濕熱、過(guò)渣等)(B) 化學(xué)滅菌法(各種化學(xué)消毒劑)(C) 抗生素(1)紫外線消毒:用于空氣,操作臺(tái)表面和不能使用其它法進(jìn)行消毒和培養(yǎng)器皿。紫外線直接照射方便、效果好,經(jīng)一定的時(shí)間照射后,可以消滅空氣中大部分細(xì)菌,培養(yǎng)室紫外線燈應(yīng)距地面不超過(guò)2.5米,且消毒進(jìn)物品不宜相互遮檔,照射不到的地方起不到消毒作用。紫外線可產(chǎn)生臭氧,污染空氣,試劑及培養(yǎng)液都有不良影響,對(duì)人皮膚也有傷害,不宜近照射及同時(shí)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)操作。(2)溫?zé)嵯荆杭锤邏赫魵庀?,是一種使用最廣泛、效果最好的消毒方法。溫?zé)嵯緯r(shí),消毒物品不能裝得過(guò)滿,以防止消毒器內(nèi)氣體阻塞而發(fā)生危險(xiǎn),保證其內(nèi)氣體的流通。在加熱
20、升壓之前,先要打開(kāi)排氣閥門排放消毒器內(nèi)的冷空氣,冷氣空氣排出后,關(guān)閉排氣閥門,同時(shí)檢驗(yàn)安全閥活動(dòng)自如,繼后開(kāi)始升壓,當(dāng)達(dá)到所需壓力時(shí),開(kāi)始計(jì)算消毒時(shí)間。消毒過(guò)程中,操作者不能離開(kāi)工作崗位,要定時(shí)檢查壓力及安全,防止消毒及意外事件發(fā)生。常用物品消毒壓力及時(shí)間:培養(yǎng)液、橡膠制品,10磅10分鐘;布類、玻璃制品、金屬器械,18磅20分鐘。上兩種是最常見(jiàn)的物理消毒方法。(3)化學(xué)消毒法:最常見(jiàn)的是70%酒精及1的新潔而滅,前者主要用于操作者的皮膚,操作臺(tái)表面及無(wú)菌室內(nèi)的壁面處理。后者則主要用器械的浸泡及皮膚和操作室壁面的擦拭消毒?;瘜W(xué)消毒法操作簡(jiǎn)單、方便有效。(4)抗生素消毒:確切應(yīng)記成抗生素滅菌,主
21、要用于培養(yǎng)用液滅菌或預(yù)防培養(yǎng)物污染。七、絨毛染色體制備絨毛來(lái)源于胚胎的中胚層,最早的初級(jí)干絨毛出現(xiàn)于孕三周初,孕8周左右是絨毛發(fā)育最旺盛時(shí)期。目前國(guó)內(nèi)外絨毛取材多選于8-9周。研究資料表明,絨毛取樣不影響胚胎的發(fā)育及胎盤的功能。但取樣的失敗可導(dǎo)致胚胎丟失而終止妊娠。絨毛取樣前者首先要檢查陰道分泌物以判別陰道的潔凈度,防止取樣導(dǎo)致宮內(nèi)感染。其次需做B超檢查,一是確定胚胎大小,二是確定胚芽有無(wú)心血管搏動(dòng),三是確定胚芽在子宮內(nèi)的位置,用以判別取材時(shí)間,是否取材及取樣器進(jìn)宮的角度及深度。1、 實(shí)驗(yàn)材料 婦科陰道沖洗物品、絨毛取樣器、5ml注射器、培養(yǎng)皿、小鑷子、5ml離心管、甲酸、檸檬酸鈉、冰乙酸、P
22、MRI 1640、秋水仙素、載玻片等。2、 培養(yǎng)液配制PRMI 1640 10-15ml秋水仙素10ug/ml 1ml3、 操作過(guò)程(1)1新潔而滅沖洗陰道,用卵圓鉗固定子宮頸,根據(jù)婦查及B超提示選擇角度及深度試探性插入絨毛取樣器,當(dāng)有彈性阻擋感且深度符合B超所示時(shí),抽出取樣器內(nèi)芯,接上5ml注射器,抽出4-5ml,此時(shí),注射器內(nèi)可見(jiàn)有血性液體流進(jìn);(2)取一干凈培養(yǎng)皿,內(nèi)加PRNI 1640 5ml,內(nèi)含秋水仙素0.06ug/ml。慢慢抽出取樣器,將所吸出物注入培養(yǎng)皿內(nèi),并用1640沖洗注射器及取樣器,混勻。置培養(yǎng)箱30-40分鐘;(3)挑選發(fā)育良好的絨毛放入另一小培養(yǎng)皿中,用預(yù)溫37的0.
23、075MKCL與10%檸檬酸鈉11混合液漂洗兩次。(4)用眼科小剪剪碎絨毛,再將2滴秋堿加入上述漂洗低滲液低滲30分鐘;(5)加32的甲醇冰乙酸固定液0.2ml,預(yù)固定,1000rpm8分鐘,棄上清液;(6)加新鮮配制的32固定液3ml;固定30分鐘,2000rpm8分鐘,棄上清液;(7)第二次固定可加31甲醇冰乙酸固定液3ml固定30分鐘,2000rpm8分鐘,棄上清液;(8)離心后,加所余體積的60%冰乙酸,打勻,2分鐘后加等量甲醇,打勻,2000rpm8分鐘,棄上清液。(9)3ml 31甲醇冰乙酸固定液過(guò)夜,冰水制片;(10)80烤片2小時(shí),自然冷卻。(11)G分帶處理,觀片。八、羊水細(xì)
24、胞培養(yǎng)羊水中含有胎兒脫落的上皮細(xì)胞,可在體外培養(yǎng)用以分析胎兒染色體核型。目前國(guó)內(nèi)外大都采用腹腔羊膜穿刺術(shù),妊娠12-30周的羊水細(xì)胞均可培養(yǎng)成功。羊膜腔穿刺取羊水行染色體分析,最佳孕周為16周左右。因此時(shí)羊水增長(zhǎng)快,羊水中細(xì)胞較多,細(xì)胞培養(yǎng)易于生長(zhǎng),而且不易損傷胎兒。國(guó)內(nèi)多數(shù)選擇的穿刺時(shí)間在妊娠的第16-30周。國(guó)外現(xiàn)已較多地采用妊娠早期的羊膜穿刺,但需在B超下定位及穿刺。羊水量按妊娠時(shí)間大致計(jì)算(1ml/w)。資料表明,穿刺病例的妊娠結(jié)局、分娩方式、胎兒的出生體重等與未穿刺無(wú)明顯差異。1、實(shí)驗(yàn)材料2.5%碘酒、75%酒精、無(wú)菌棉簽和棉球、鑷子、20-22號(hào)無(wú)菌腰穿針、吸管、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)液(P
25、RMI 1640、199、F10、F12)、小牛血清、秋水仙素、KCL、甲醇、冰醋酸、培養(yǎng)皿、蓋玻片等。2、培養(yǎng)液配制 F-12 85% 小牛血清 15% 雙抗 100u/ml 小瓶貯藏 4-8 3、操作過(guò)程A(蓋玻片培養(yǎng)法)(1)采樣:選擇妊娠13-14周婦女,在無(wú)菌條件下抽取羊水5ml,立即注入無(wú)菌離心管中;(2)收集:離心分離細(xì)胞,1000rpm10分鐘,去上清,留0.5ml,輕打混勻;(3)接種:30mm培養(yǎng)皿中放蓋玻片1張,每片滴混勻的細(xì)胞液1-2滴,置培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)30-60分鐘;(4)培養(yǎng):取出后從蓋玻片外加培養(yǎng)液2ml,靜置培養(yǎng)48小時(shí)后觀察細(xì)胞生殖狀況并定時(shí)換液,5-10天后,
26、可見(jiàn)大量成纖維細(xì)胞或上皮樣細(xì)胞生長(zhǎng);(5)終止培養(yǎng):當(dāng)有大量圓形發(fā)亮細(xì)胞出現(xiàn)時(shí),加秋水仙素0.02-0.04ug/ml,作用10-12小時(shí);(6)低滲:倒掉培養(yǎng)液,加預(yù)溫370.075MKCL溶液5ml,37溫育30分鐘,鏡下可見(jiàn)脹大的羊水細(xì)胞,加0.5-1ml 31甲醇:冰醋酸固定液預(yù)固定;(7)固定:倒掉低滲液,加5ml固定液固定30分鐘以上,反復(fù)3次;(8)干燥:將附有細(xì)胞的蓋玻片斜放于培養(yǎng)皿中,置80烤箱處理2-3小時(shí);(9)膠片:將附有細(xì)胞的蓋玻片用樹(shù)脂膠封固于玻片上,正面朝外,小心細(xì)胞破壞;B(常規(guī)培養(yǎng)法)(1)-(2)相同于蓋玻片培養(yǎng)法;(3)接種:將混勻的羊水細(xì)胞種置于50ml
27、或100ml細(xì)胞培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),平均10ml羊水細(xì)胞收集的細(xì)胞種置一瓶加5-10ml混合培養(yǎng)液。(4)培養(yǎng):酒精燈火先封口,靜置培養(yǎng)48小時(shí)后觀察細(xì)胞貼壁及生長(zhǎng)情況,5-10天后可見(jiàn)瓶底面有大量羊水細(xì)胞生長(zhǎng);(5)終止培養(yǎng):同A法;(6)細(xì)胞收集:將培養(yǎng)液倒入一干凈離心管中,加0.025%的胰蛋白酶0.5-1ml/瓶,輕輕搖動(dòng),使培養(yǎng)瓶底面完全接觸消化酶,然后用彎頭吸管吹打,待細(xì)胞全部脫落后加前培養(yǎng)液終止胰蛋白酶消化。用吸管移細(xì)胞懸液于離心管中。1000-2000rpm10分鐘,棄上清,留細(xì)胞沉慮。若一次消化不徹底,可反復(fù)消化;(7)低滲及預(yù)固定:加預(yù)溫37KCL溶液10ml,37溫育30分鐘,加0
28、.5-1ml新鮮配制的31甲醇冰乙酸固定液預(yù)固定,用氣泡吹打細(xì)胞使其混勻。(8)固定:用新鮮配制的32甲醇冰乙酸固定液固定三次,每次30分鐘。固定液加入時(shí)沿管壁緩慢加入;(9)制片及干燥:用絨毛制片;(10)分帶處理。九、人外周血淋巴細(xì)胞培養(yǎng)在正常情況下,人外周血中是沒(méi)有分裂相的,只有在異常情況下才能發(fā)現(xiàn)。植物血球凝集素(PHA)是人類淋巴細(xì)胞有絲分裂的刺激劑,在PHA作用下,原處于Go期的淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化為淋巴母細(xì)胞,進(jìn)而進(jìn)行有絲分裂。利用PHA這一特性,淋巴細(xì)胞經(jīng)過(guò)含有HPA培養(yǎng)液培養(yǎng),在體外便可獲得豐富的含有絲分裂的生長(zhǎng)活躍的細(xì)胞群體,終止分裂中期的淋巴細(xì)胞,可得到所需的人體染色體圖形。具有
29、用血量少、操作簡(jiǎn)單等優(yōu)點(diǎn)。1、實(shí)驗(yàn)材料2.5%碘酒、75%酒精、無(wú)菌棉簽或棉球、鑷子、吸管、培養(yǎng)瓶、培養(yǎng)液(PRMI 1640、M199)、小牛血清、秋水仙素、KCL、甲醇、冰醋酸、載玻片等。2、培養(yǎng)液配制無(wú)菌條件下配制培養(yǎng)液,每瓶所含下列試劑:RPMI 1640或199 90%小牛血清 10%PHA(自制) 0.1ml 3%肝素 10u/ml 2%雙抗 100u/ml(選擇)分裝于10ml培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),每瓶5ml培養(yǎng)液,封口置冷藏柜備用。3、操作過(guò)程(1)采樣接種:用2.5%碘酒、75%酒精消毒瓶蓋,用酒精燈火焰過(guò)烤,無(wú)菌條件下抽取患者外周血0.5-1ml,每瓶加20滴左右,輕搖均勻,盡量避免培
30、養(yǎng)物與瓶蓋接觸;(2)培養(yǎng):置36培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72小時(shí),每隔12小時(shí)左右輕遙1次,以促進(jìn)細(xì)胞生長(zhǎng)增殖;(3)抑止分裂:收獲前2小時(shí)左右加秋水仙素,最終濃度為0.02ug/ml培養(yǎng)液,搖勻后置培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),以抑止細(xì)胞在分裂中期。(4)終止培養(yǎng):從培養(yǎng)箱中取出培養(yǎng)瓶,搖勻后移至10ml尖底離心管中,盡量收集培養(yǎng)細(xì)胞。2000rpm8分鐘。(5)低滲處理:棄上清液,加入預(yù)溫37的0.075MKCL8ml,迅速打勻,置37培養(yǎng)箱或水浴鍋中10-20分鐘;(6)預(yù)固定:取出低滲中尖底離心管,輕輕加入新配制的1-2ml 32甲醇:冰乙酸混合液,取相應(yīng)編號(hào)滴管用汽泡輕輕軟打2-3下。800-1000rp
31、m8-10分鐘;(7)固定:棄上清液。加入新鮮配制的32甲醇冰乙酸混合液10ml,輕打混勻,封口置室溫30分鐘以上。1500-2000rpm10分鐘,反復(fù)2-3次;(8)制片:使用蒸餾水制備冰水片進(jìn)行滴片。留離心后沉淀細(xì)胞,加新鮮配制的固定液,制成細(xì)胞懸液,取1-2滴滴片,用于輕輕吹開(kāi)??烫?hào)后清理刻號(hào)污物,置80烤片2小時(shí);(9)收片:待烤箱自然冷卻后,取出烤片,置干凈環(huán)境中或培養(yǎng)箱中以備進(jìn)行顯帶處理。十、植物油凝素的制備 植物血凝素也稱為植物凝集素(PHA),可自制也可購(gòu)自商品。自制的方法常用生理鹽水提取法。(A)干品制備法:(1)選廣東雞子豆10g,用蒸餾水沖洗,置培養(yǎng)皿內(nèi)用75%酒精一次
32、性浸洗,倒掉酒精留間隙置37。恒溫箱內(nèi)24-48小時(shí);(2)在無(wú)菌條件下研碎雞子豆,加生理鹽水30ml,搖勻后放入4冰箱24小時(shí),第二天再加生理鹽水70ml,再置4冰箱內(nèi)24小時(shí)。每8-12小時(shí)搖蕩一次。(也可一次性加100ml生理鹽水);(3)無(wú)菌條件下移入10-50ml離心管內(nèi),3000-4000rpm30分鐘。在無(wú)菌箱內(nèi)把上清液分裝于10ml小瓶,置冰箱冷凍層備用;(4)效價(jià):外周血染色體制備每100ml培養(yǎng)基加PHA約2ml。注:若整個(gè)過(guò)程未在無(wú)菌條件下進(jìn)行,分裝時(shí)用G5玻砂漏斗除菌即可。(B)鮮品制備法:(1)選擇完整無(wú)破皮鮮菜豆20g,用75%酒精浸泡10分鐘;(2)在凈化工作中用
33、無(wú)菌鹽水或蒸餾水漂洗二次,然后置無(wú)菌乳缽中搗成糊狀,用100ml無(wú)菌鹽水浸泡封口;(3)移入4冰箱中置24小時(shí),中間搖動(dòng)數(shù)次,次日3000rpm30分鐘,在無(wú)菌情況下分裝上清液于10ml小瓶?jī)?nèi),置冰箱冷凍層備用。(4)效價(jià):正式使用前先用一定量作效價(jià)測(cè)定,按效價(jià)使用。十一、組織培養(yǎng)細(xì)胞染色體制備組織細(xì)胞用于遺傳學(xué)分析最常見(jiàn)的是體外培養(yǎng)的細(xì)胞株,多為惡性腫瘤細(xì)胞株,且呈貼壁生長(zhǎng),僅小數(shù)細(xì)胞株為懸浮生長(zhǎng)。培養(yǎng)細(xì)胞有來(lái)源易得、細(xì)胞分裂率高和染色體標(biāo)本制出清晰度高等優(yōu)點(diǎn)。組織細(xì)胞染色體制備的關(guān)鍵是掌握好體外細(xì)胞的生長(zhǎng)動(dòng)態(tài),只有處在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞才能出現(xiàn)較高的分裂相,所以秋水仙素處理的時(shí)機(jī)及量是染色體
34、標(biāo)本形態(tài)及分裂指數(shù)的關(guān)鍵。 1、 實(shí)驗(yàn)材料培養(yǎng)液(PRMI 1640、M199、DMEM等),小牛血清、0.025%胰蛋酶、秋水仙素,刻度離心管,直吸管及彎頭吸管,培養(yǎng)瓶或皿、KCL、甲醇、冰乙酸、載玻片。2、 培養(yǎng)液配制培養(yǎng)液 85-95%小牛血清 5-15%雙抗(選擇) 100u/ml3、 操作過(guò)程(1)培養(yǎng)細(xì)胞:選擇處于指數(shù)生長(zhǎng)期、用大瓶培養(yǎng)的80-90%匯合單層培養(yǎng)細(xì)胞;(2)終止培養(yǎng):當(dāng)有大量圓形發(fā)亮細(xì)胞出現(xiàn)時(shí),加秋水仙素0.01-0.03ug/ml培養(yǎng)混合液,置溫箱繼續(xù)培養(yǎng)6-10小時(shí)以抑制分裂期細(xì)胞停止于分裂中期;(3)聚集細(xì)胞:(A) 搖動(dòng)法:可利用分裂中期細(xì)胞變圓與底物附著不
35、牢特點(diǎn),此時(shí)可持培養(yǎng)瓶,左右反復(fù)橫向水平搖動(dòng),可使90%的中期分裂細(xì)胞從瓶壁脫落;(B) 消化法:將培養(yǎng)液倒入離心管內(nèi),給培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)加0.025%胰蛋白酶液0.5-1ml/瓶,水平左右搖動(dòng),便培養(yǎng)瓶底壁面完全接觸消化酶,稍后用彎頭吸管吹打,待細(xì)胞完全脫落后,加入3-5ml前培養(yǎng)終止消化。用吸管移入裝有培養(yǎng)液的離心管內(nèi)2000rpm10分鐘。棄上清液,留沉淀細(xì)胞;(4)低滲處理:給沉淀細(xì)胞加頂溫的370.075MKCL8ml左右,用吸管打均勻,在溫箱中靜置20-30分鐘;(5)預(yù)固定:向低滲處理適當(dāng)?shù)碾x心管中加新鮮配制的32甲醇,冰乙醇固定液1-2ml,用吸管輕松吹打調(diào)勻,此措施能起到使細(xì)胞表面輕
36、微固定,可防止固定后細(xì)胞粘連成塊。(6)固定:800-1000rpm10分鐘,棄上清液加新鮮配制的32甲醇冰乙酸固定液10ml,加入時(shí)要沿管壁慢慢加入,后輕輕吹打,封口后室溫靜置30分鐘以上,反復(fù)三次;(7)制片:末次離心后,倒掉上清液,留沉淀細(xì)胞,加新鮮配制固定液0.5ml左右,混勻后冰片制片,其它同外周血方法。十二、胸腹水細(xì)胞染色體制備在惡性腫瘤的胸腹水中有大量的分裂期細(xì)胞,其中多以非整倍體細(xì)胞存在,并含有各種標(biāo)記染色體。1、 實(shí)驗(yàn)材料2.5%碘酒、75%酒精、無(wú)菌棉球、鑷子20-22號(hào)、無(wú)菌腰穿包、50ml離心管、秋水仙素、KCL、甲醇、冰乙酸、載玻片等。2、 操作過(guò)程(1)采樣:選擇有
37、胸或腹水患者,在無(wú)菌條件下,輕腹穿刺或于手術(shù)取胸或腹水20-50ml;(2)培養(yǎng):立即加入秋水仙素培養(yǎng),最終濃度為0.02-0.04ug/ml胸腹水,置37培養(yǎng)箱內(nèi)4-6小時(shí);(3)低滲及后期制作羊水細(xì)胞。十三、染色體制備體會(huì)1、 培養(yǎng)基PH濃度、小牛血清量及培養(yǎng)箱溫度的恒定是培養(yǎng)成功關(guān)鍵;2、秋水仙素適量、適宜的處理時(shí)機(jī)和時(shí)間,是獲得良好、足夠分裂相的條件。分裂相的多少和染色體形態(tài)及帶型處理良好與否均受其影響。3、低滲處理是獲得分散良好的分裂相關(guān)鍵步驟,低滲過(guò)度或不足都會(huì)造成染色體形態(tài)不良的結(jié)果。在低滲處理時(shí)期細(xì)胞十分嬌嫩,并且表面發(fā)粘,低滲細(xì)胞混勻時(shí),吹打要適宜,避免細(xì)胞破碎及粘團(tuán),另外不
38、要將細(xì)胞吸到吸管上部及離心管上部,避免細(xì)胞丟失。 4、固定技術(shù)是制備良好分散的染色體的重要步驟。若染色體分?jǐn)?shù)不良,可適當(dāng)加大冰乙酸含量,其同時(shí)有改善由于低滲處理不夠或固定不充分所造成的缺陷,但過(guò)量會(huì)造成染色體形態(tài)變化和影響分帶結(jié)局。染色體形態(tài)不良與固定液速度有關(guān),加第1次固定液過(guò)快或打過(guò)快,可造成飄帶樣染色體; 5、固定液每次使用必須新鮮配制,否則將會(huì)形成酯類,從而影響固定效果。6、滴片是染色體制備中影響染色體形態(tài)的關(guān)鍵一步。首先要載玻片要非常干凈,否則會(huì)影響染色體的分散和分帶效果。其次是滴片的距離、滴加量多少、制片的方式都會(huì)影響染色體分期效果。 7、烤片:是染色體制備中最
39、后一步技術(shù)。烤片的溫度、時(shí)間與染色體形態(tài)和分帶有關(guān)。不宜溫度過(guò)高和烤片時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。十四、染色體實(shí)驗(yàn)技術(shù)分析染色體分裂指數(shù)低:患者處于非常時(shí)期(感染期、放、化療期);培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)成份不良;培養(yǎng)基PH偏低或偏高;PHA過(guò)量或不足;小牛血清質(zhì)量不高;小牛血清數(shù)量偏低或過(guò)高;培養(yǎng)溫度不穩(wěn)定;培養(yǎng)箱溫度偏低;秋水仙素處理時(shí)間過(guò)短;離心時(shí)間或速度不足;制備過(guò)程損失過(guò)大。染色體形態(tài)不理想:受檢者處于非常時(shí)期;PHA過(guò)量;小牛血清質(zhì)量不高;培養(yǎng)箱溫度不恒溫;秋水仙素量不當(dāng);低滲時(shí)間不理想;低滲溫度過(guò)高;離心速度過(guò)高;固定液加速過(guò)快;固定混勻手法過(guò)重;吹片技術(shù)不良。染色體形態(tài)偏長(zhǎng):培養(yǎng)基PH偏酸;秋水仙素量偏低;秋
40、水仙素處理時(shí)間偏短;染色體形態(tài)偏短:培養(yǎng)基PH偏堿;秋水仙紗處理量過(guò)量;秋水仙素處理時(shí)間過(guò)長(zhǎng)。染色體分帶不良:血液狀況不良;培養(yǎng)基營(yíng)養(yǎng)成分不良;小牛血清質(zhì)量不高;小牛血清數(shù)量不當(dāng);培養(yǎng)箱培養(yǎng)溫度不良;秋水仙素處理量過(guò)高;PHA量過(guò)高;低滲處理時(shí)間或溫度不良;胰酶質(zhì)量不良;染色液質(zhì)量不良;染色技術(shù)不良;分帶技術(shù)不佳。染色背景不良:培養(yǎng)細(xì)胞生長(zhǎng)不良;低滲處理技術(shù)不良;離心過(guò)程塵染;分帶技術(shù)不良;染色技術(shù)不良;染色液塵染;載玻片處理不干凈;制片過(guò)程塵染;存片環(huán)境不干凈。培養(yǎng)失?。号囵B(yǎng)中損失;血源質(zhì)量不良;培養(yǎng)中感染;小牛血清污染;培養(yǎng)箱溫度失控;PHA過(guò)期或過(guò)量;秋水仙素失效;低滲失敗; 離心機(jī)失誤
41、。標(biāo)本損失:培養(yǎng)中損失;制備中損失;分帶中損失;保存中損失。十五、染色體分帶技術(shù)染色體顯帶技術(shù)是在顯示染色體基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的技術(shù),其優(yōu)點(diǎn)是能顯現(xiàn)染色體本身更細(xì)微的結(jié)構(gòu),有助于更準(zhǔn)確地識(shí)別每條染色體及染色體異常疾病。染色體分帶技術(shù)能適用于各種細(xì)胞染色體標(biāo)本。染色體顯帶是沿著整條染色體的長(zhǎng)軸,能顯現(xiàn)出著色深淺不同、橫向走的帶型。目前認(rèn)為染色體顯帶現(xiàn)象是染色體結(jié)構(gòu)所致。但用特殊方法處理后,再用染料染色,則帶型更加清晰,隨顯帶方法不同,顯現(xiàn)出的帶型的特點(diǎn)也不一樣,這說(shuō)明帶的出現(xiàn)與染料的特異結(jié)合相關(guān)。人類染色體能顯現(xiàn)出近2000個(gè)G帶,這些帶再融合成一般顯微鏡下可見(jiàn)的850條左右的高分辯染色體帶型或35
42、0條帶左右的常規(guī)帶型。常見(jiàn)的幾種顯帶方法:(一)G帶也稱為G顯帶,是最常用的顯帶方法,具有操作簡(jiǎn)便、經(jīng)濟(jì)及標(biāo)本能長(zhǎng)期保存等優(yōu)點(diǎn)。1、Giemsa原液的配制:(1)稱3.75gGiemsa粉置研磨器中,加少許丙三醇研磨,研磨越細(xì)越好;(2)將研細(xì)的Giemsa加丙三醇移入500ml棕色瓶?jī)?nèi),丙三醇的總量為250ml,用一定量甲醇洗干凈研磨器。(3)搖勻,置60水浴鍋24小時(shí)或37溫箱72小時(shí),經(jīng)常搖動(dòng)。(4)取出冷卻后,加甲醇總量至250ml混勻,密封棕色瓶備用。貯藏時(shí)間越長(zhǎng),染色效果越好。2、實(shí)驗(yàn)材料:中期染色體標(biāo)本;0.9%氯化鈉注射水;3%tris液體;0.25%胰蛋白酶;Gremsa染色
43、液;蒸餾水;水浴鍋;立式染缸;定時(shí)器或時(shí)針;溫度計(jì);鑷子及紗布;刻字筆。3、操作程序:(1)消化液配制:取0.9%氯化鈉注射水100ml,加0.25%胰蛋白酶1ml,制成0.025%胰蛋白酶鹽水消化液,加4-5滴tris液調(diào)PH6.8左右,移消化液于立式染色缸并置37水浴鍋中備用;(2)染液配制:取立式染缸,加蒸餾水500ml,加3滴tris液調(diào)PH并加入Giemea染液1ml左右,用吸管調(diào)勻備用; (3)漂洗液:取立式染缸一個(gè),內(nèi)加蒸餾水備用;(4)試消化:待消化液溫度在37左右時(shí),取同批標(biāo)本較多者標(biāo)本1張,分二節(jié)或三節(jié)進(jìn)行消化,每節(jié)相差十五秒左右,從45秒或60秒開(kāi)始增減。取出后先在紗布或
44、吸水紙上直立除去帶出胰蛋白酶,后置蒸餾水染缸內(nèi)漂洗,取出后,標(biāo)本斜面朝上,刮去染色缸內(nèi)染液上浮膜,沿槽插入,每分鐘移動(dòng)1次,染色3-5分鐘。(5)洗片:從染色缸中取出標(biāo)本玻片,自來(lái)水沖洗,取刻編號(hào)面朝上用紗布干凈玻片背部染色,稍干,高倍鏡下觀片,確定分帶與染色時(shí)間。(6)分帶:取4張待分帶標(biāo)本玻片,細(xì)胞面朝左側(cè)按順序插入37的消化液中,消化時(shí)間較試消化選擇時(shí)間延長(zhǎng)5-10秒鐘,取出每片間隔時(shí)間約10秒鐘左右。(7)消化及染色調(diào)整:每次消化完一批標(biāo)本后,需加入配好的消化液25ml于消化缸中,下次消化時(shí)間不變。同樣,每次染色一批標(biāo)本后加Giemsa染色液2-3滴,調(diào)勻,每次染色時(shí)間不變;(8)Giemsa染色調(diào)整:若Giemsa染色標(biāo)本偏紅,說(shuō)明染色液偏酸,可加t
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