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1、淺論siRNA反向轉(zhuǎn)染法提高原代懸浮細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率的應(yīng)用 【關(guān)鍵詞】 小干擾RNA; 反向轉(zhuǎn)染法; 正向轉(zhuǎn)染法; 原代細(xì)胞; 懸浮細(xì)胞RNA干擾(RNA interference, RNAi)是指小干擾RNA(small interference RNA,siRNA)進(jìn)入細(xì)胞后,按照堿基互補(bǔ)配對(duì)原則與靶mRNA完全互補(bǔ)配對(duì),進(jìn)而引發(fā)靶mRNA的降解、抑制靶基因的表達(dá)。RNAi因其對(duì)靶基因的沉默具有高度的特異性和強(qiáng)大的抑制作用正越來(lái)越多地被應(yīng)用于多種疾病的預(yù)防和治療研究1。siRNA必須進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)才能發(fā)揮對(duì)基因的沉默作用2,因此,如何將外源性siRNA高效地轉(zhuǎn)入靶細(xì)胞就成為基因抑制成功與否的關(guān)鍵。

2、 基因轉(zhuǎn)染的方法很多,如磷酸鈣沉淀法、電穿孔、脂質(zhì)體法、顯微注射法、逆轉(zhuǎn)錄病毒法等。 逆轉(zhuǎn)錄病毒是目前效率最高的轉(zhuǎn)染載體,但由于其價(jià)格昂貴,構(gòu)建耗時(shí)而不作為實(shí)驗(yàn)的首選。陽(yáng)離子脂質(zhì)體法是較方便的轉(zhuǎn)染方法之一 3,在各種體外培養(yǎng)細(xì)胞的RNA干擾實(shí)驗(yàn)中,多以陽(yáng)離子脂質(zhì)體進(jìn)行轉(zhuǎn)染,但其對(duì)于原代懸浮細(xì)胞仍存在轉(zhuǎn)染效率低的問(wèn)題,故本實(shí)驗(yàn)在脂質(zhì)體的介導(dǎo)下,運(yùn)用反向轉(zhuǎn)染法4和傳統(tǒng)正向轉(zhuǎn)染法轉(zhuǎn)染小鼠脾淋巴細(xì)胞,比較兩種方法的轉(zhuǎn)染效率,尋找對(duì)原代懸浮細(xì)胞更高效的基因轉(zhuǎn)染方法。 1 材料與方法 1.1 實(shí)驗(yàn)材料 810周清潔級(jí) BALB/c 雌性小鼠(揚(yáng)州大學(xué)比較學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心),小鼠淋巴細(xì)胞分離液(天津?yàn)笊?/p>

3、制品科技有限公司),RPMI1640培養(yǎng)基,OptiMEM無(wú)血清液體培養(yǎng)基(Gibco公司),小牛血清(杭州四季青公司),Lipofectamine RNAiMAX(Invitrogen公司),Cy3熒光標(biāo)記的siRNA片段(廣州銳博生物科技有限公司),24孔板(Corning公司), 熒光倒置顯微鏡(Olympus公司),流式細(xì)胞儀(BD公司)。 1.2 研究方法斷頸處死小鼠,75%乙醇浸泡23 min,無(wú)菌超凈臺(tái)內(nèi)取出脾臟,將200目無(wú)菌不銹鋼篩網(wǎng)置于60 mm平皿中,加入適量Hanks液,脾臟剪成碎塊置篩網(wǎng)內(nèi),無(wú)菌玻璃注射器活塞輕柔研磨,使得分散的單細(xì)胞透過(guò)篩網(wǎng)進(jìn)入Hanks中;Fico

4、ll密度梯度離心法分離淋巴細(xì)胞,用PBS將所得細(xì)胞沉淀洗滌兩遍,重懸于含10%小牛血清的RPMI1640培養(yǎng)液中,計(jì)數(shù)及臺(tái)盼藍(lán)染色計(jì)算活細(xì)胞數(shù)。實(shí)驗(yàn)共分為3組。實(shí)驗(yàn)組采用反向轉(zhuǎn)染法,每孔加Cy3siRNA 1.5 l至不含血清的OptiMEM簡(jiǎn)化培養(yǎng)基200 l中稀釋?zhuān)挥们皳u勻RNAiMAX, 取3 l至每孔中,與液輕柔混勻成為轉(zhuǎn)染復(fù)合物,室溫孵育20 30 min;用不含抗生素的RPMI1640完全培養(yǎng)基稀釋細(xì)胞,每孔細(xì)胞懸液為400 l,整細(xì)胞數(shù)為(11.5)106,加入液中,輕微前后推動(dòng)平板使其混勻,每組設(shè)復(fù)孔。對(duì)照組按照傳統(tǒng)的正向轉(zhuǎn)染法操作,先將細(xì)胞在孔板中孵育24 h后再加入轉(zhuǎn)染復(fù)合

5、物,所加物質(zhì)用量及濃度與實(shí)驗(yàn)組完全相同??瞻捉M未轉(zhuǎn)染siRNA細(xì)胞。將3組細(xì)胞均置于5 % CO2、37飽和濕度的孵箱中培養(yǎng),于46 h后更換含10%小牛血清的完全培養(yǎng)基。轉(zhuǎn)染后24 h每組細(xì)胞各取1106,分別用0.4 %的臺(tái)盼藍(lán)染色5 min后,隨機(jī)各選取3個(gè)視野,顯微鏡下計(jì)數(shù)所有細(xì)胞。以下列公式計(jì)算細(xì)胞存活率:細(xì)胞活性=(總細(xì)胞數(shù)-著色細(xì)胞數(shù))/總細(xì)胞數(shù)100%。實(shí)驗(yàn)平行重復(fù)3次。轉(zhuǎn)染后24 h倒置顯微鏡下(1020)每組隨機(jī)取3個(gè)視野觀察各組細(xì)胞,從細(xì)胞形態(tài)、細(xì)胞膜完整性、細(xì)胞數(shù)目等方面評(píng)估生存狀態(tài)。轉(zhuǎn)染后24 h,熒光倒置顯微鏡觀察各組Cy3siRNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞的熒光攜帶率。Cy3為紅

6、色熒光標(biāo)記物,應(yīng)用Cy3siRNA轉(zhuǎn)染小鼠淋巴細(xì)胞后,根據(jù)細(xì)胞內(nèi)紅色熒光的數(shù)量來(lái)判斷轉(zhuǎn)染陽(yáng)性細(xì)胞的數(shù)量5。于可見(jiàn)光下固定一個(gè)視野, 計(jì)數(shù)細(xì)胞總數(shù), 轉(zhuǎn)換熒光光源計(jì)數(shù)攜帶紅色熒光的細(xì)胞數(shù),轉(zhuǎn)染效率有熒光表達(dá)的細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)100%, 每組選取3孔細(xì)胞,每孔細(xì)胞隨機(jī)選擇5個(gè)觀察視野,重復(fù)3次。轉(zhuǎn)染后24 h實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組各取 1106細(xì)胞,4 PBS洗細(xì)胞2次。流式細(xì)胞儀計(jì)數(shù)發(fā)紅色光的細(xì)胞數(shù),計(jì)算轉(zhuǎn)染效率。2 結(jié)果2.1 細(xì)胞活性測(cè)定 細(xì)胞轉(zhuǎn)染后24 h臺(tái)盼藍(lán)拒染率計(jì)算結(jié)果顯示:實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞活性為89.5%,對(duì)照組和空白組分別為84.5%和94.9%,3組之間細(xì)胞活性比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P0.0

7、5)。見(jiàn)圖1。 2.2 細(xì)胞生存狀態(tài)觀察 倒置顯微鏡下觀察比較轉(zhuǎn)染后24 h實(shí)驗(yàn)組、對(duì)照組和空白組之間細(xì)胞生存狀態(tài),結(jié)果顯示3組無(wú)明顯差異。2.3 熒光顯微鏡下細(xì)胞熒光表達(dá)率 實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組細(xì)胞內(nèi)均可見(jiàn)紅色熒光,實(shí)驗(yàn)組帶有紅色熒光的細(xì)胞數(shù)量明顯多于對(duì)照組,空白組無(wú)熒光信號(hào);實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組經(jīng)重復(fù)實(shí)驗(yàn)得到平均轉(zhuǎn)染率分別為69.58%和39.83%,表明實(shí)驗(yàn)組較對(duì)照組轉(zhuǎn)染效率高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P0.05)。見(jiàn)圖2,表1。表1 實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組的轉(zhuǎn)染效率(略)2.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)轉(zhuǎn)染效率 轉(zhuǎn)染后24 h,實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組的Cy3siRNA對(duì)小鼠淋巴細(xì)胞的轉(zhuǎn)染效率分別為63%和29%,實(shí)驗(yàn)組轉(zhuǎn)染效率明

8、顯高于對(duì)照組(P0.05)。見(jiàn)圖3。 3 討論 高效的siRNA轉(zhuǎn)染是研究基因沉默是否成功的前提。目前,RNAi由于轉(zhuǎn)染效率低而成為其發(fā)展的瓶頸并限制其進(jìn)一步應(yīng)用6。所以選擇最合適的轉(zhuǎn)染方法是整個(gè)實(shí)驗(yàn)非常重要的一步。siRNA轉(zhuǎn)染的方法很多,磷酸鈣沉淀法雖然操作簡(jiǎn)便,但轉(zhuǎn)染效率低,重復(fù)性差;電穿孔法適用于所有細(xì)胞,電壓越高,轉(zhuǎn)染效率越高,而細(xì)胞的存活率越低,成功的電穿孔均伴隨高水平的細(xì)胞毒性,因此其應(yīng)用受到了限制;DEAE葡聚糖多用于DNA分子的轉(zhuǎn)染,僅限于瞬時(shí)轉(zhuǎn)染,且一般只用于BSC1,CV1,COS細(xì)胞系;顯微注射法是用微吸管吸取siRNA溶液,在顯微鏡下準(zhǔn)確的插入細(xì)胞核中,將siRNA注

9、射進(jìn)去,轉(zhuǎn)染率高,對(duì)細(xì)胞無(wú)藥物毒害,但是技術(shù)要求高,操作繁瑣耗時(shí),工作效率低,裝置昂貴;陽(yáng)離子脂質(zhì)體在克服細(xì)胞屏障方面與病毒相似,容易透過(guò)細(xì)胞膜,而且操作簡(jiǎn)便,容易實(shí)施,在各種體外培養(yǎng)細(xì)胞的RNA干擾實(shí)驗(yàn)中得到了廣泛的應(yīng)用,但對(duì)于原代細(xì)胞、懸浮細(xì)胞仍存在轉(zhuǎn)染效率低的情況7;逆轉(zhuǎn)錄病毒法適用于各種細(xì)胞,轉(zhuǎn)染效率高,但構(gòu)建病毒載體耗時(shí)長(zhǎng)且價(jià)格昂貴,尤其不適合于有效片段的篩選實(shí)驗(yàn)8,并且需考慮安全因素。以上方法均有其優(yōu)缺點(diǎn),通過(guò)對(duì)各種轉(zhuǎn)染方法的綜合考慮,本實(shí)驗(yàn)選用脂質(zhì)體為媒介轉(zhuǎn)染小鼠脾淋巴細(xì)胞,基于其在采用傳統(tǒng)正向轉(zhuǎn)染法時(shí)對(duì)原代懸浮細(xì)胞存在轉(zhuǎn)染效率較低的現(xiàn)象,我們應(yīng)用反向轉(zhuǎn)染法克服這一困難,把提高轉(zhuǎn)

10、染效率作為實(shí)現(xiàn)高效沉默靶基因的基礎(chǔ)。 轉(zhuǎn)染效率除了由轉(zhuǎn)染方法所決定外,轉(zhuǎn)染細(xì)胞狀態(tài)和siRNA劑量、轉(zhuǎn)染試劑的選擇、轉(zhuǎn)染復(fù)合物的孵育時(shí)間、培養(yǎng)液中血清和抗生素含量等也是影響轉(zhuǎn)染效率的重要因素。本實(shí)驗(yàn)在以上條件參數(shù)恒定和規(guī)范操作的基礎(chǔ)上,提取小鼠脾淋巴細(xì)胞,選用脂質(zhì)體Lipofectamine RNAiMAX介導(dǎo)轉(zhuǎn)染小鼠淋巴細(xì)胞,RNAiMAX比Lipofectamine2000細(xì)胞毒性小,轉(zhuǎn)染懸浮細(xì)胞效果更好;并用熒光素Cy3標(biāo)記siRNA,使轉(zhuǎn)染情況在鏡下直接可見(jiàn),從而提高實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性。反向轉(zhuǎn)染法與傳統(tǒng)正向轉(zhuǎn)染法的區(qū)別9 是傳統(tǒng)方法需在轉(zhuǎn)染前一天接種細(xì)胞鋪板,培養(yǎng)24 h后再加轉(zhuǎn)染復(fù)合物轉(zhuǎn)染

11、;而反向轉(zhuǎn)染則是先加入轉(zhuǎn)染試劑和siRNA混合物在培養(yǎng)板上共同溫育數(shù)十分鐘,然后加入細(xì)胞鋪板培養(yǎng),其優(yōu)點(diǎn)在于:節(jié)約培養(yǎng)時(shí)間,淋巴細(xì)胞體外存活時(shí)間有限,可為轉(zhuǎn)染后檢測(cè)提供充足的時(shí)間和保持細(xì)胞良好的生存狀態(tài);操作程序簡(jiǎn)便,避免傳統(tǒng)正向轉(zhuǎn)染方法培養(yǎng)條件的頻繁變化對(duì)細(xì)胞表達(dá)可能產(chǎn)生的影響;轉(zhuǎn)染效率高,對(duì)于原代懸浮細(xì)胞可實(shí)現(xiàn)高效轉(zhuǎn)染,從而使干擾效果比傳統(tǒng)方法更好。1小時(shí)即可完成轉(zhuǎn)染,快速、省時(shí)并且操作方便。實(shí)驗(yàn)在轉(zhuǎn)染后24 h臺(tái)盼藍(lán)染色檢測(cè)各組細(xì)胞活性、顯微鏡下觀察各組細(xì)胞生存狀態(tài);從熒光顯微鏡及流式細(xì)胞儀兩方面檢測(cè)轉(zhuǎn)染效率。 在其他實(shí)驗(yàn)條件相同的情況下,實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組的轉(zhuǎn)染效率分別為66.5%和34.

12、5%,說(shuō)明反向轉(zhuǎn)染得到的RNA轉(zhuǎn)染效果比傳統(tǒng)轉(zhuǎn)染方法更好,對(duì)于原代細(xì)胞、懸浮細(xì)胞這一類(lèi)難以轉(zhuǎn)染的細(xì)胞也能得到較為理想的轉(zhuǎn)染效果,值得一試。同時(shí),轉(zhuǎn)染24 h后實(shí)驗(yàn)組、對(duì)照組及空白組臺(tái)盼藍(lán)染色細(xì)胞活性分別為89.5%,84.5%和94.9%,顯微鏡下細(xì)胞生存狀態(tài)亦無(wú)明顯差異,提示該方法細(xì)胞毒性較低,操作過(guò)程對(duì)細(xì)胞損傷較小,對(duì)于原代懸浮細(xì)胞有著很好的應(yīng)用前景,為siRNA轉(zhuǎn)染原代懸浮細(xì)胞及應(yīng)用RANi技術(shù)進(jìn)行體外研究提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)?!緟⒖嘉墨I(xiàn)】 1Bi F,Liu N,F(xiàn)an D. Small interfering RNA:a new tool for gene therapyJ. Curr G

13、ene Ther, 2003,3(5):411-417.2Elbashir SM, Harborth J, Lendeckel W, et al. Duplexes of 21nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cellsJ. Nature, 2001,411(6836):494-498.3Echeverri CJ,Perrimon N. Highthroughput RNAi screening in cultured cells:a users guideJ.Nat Rev Genet,2006,7(

14、5):373-384.4LaPan P, Zhang J, Pan J. et al. Quantitative optimization of reverse transfection conditions for 384well siRNA library screeningJ . Assay Drug Dev Technol,2008,6(5):683-691.5Erfle H, Simpson JC, Bastiaens PI, et al. siRNA cell arrays for highcontent screening microscopyJ. Biotechniques,2004,37(3):454-458. 6Erfle H, Neumann B, Liebel U, et al. Reverse transfection on cell arrays for high content screening microscopy J.Nat Protoc,2007,2(2):392-399.7宋爾衛(wèi). RNA干擾的生物學(xué)原理與應(yīng)用M.北京:高等教育出版社,2005. 8Brummelkamp TR,Bernards R,Agami R. Stable suppression of tumorigen

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