設(shè)計(jì)跨內(nèi)含子引物的方法_第1頁(yè)
設(shè)計(jì)跨內(nèi)含子引物的方法_第2頁(yè)
設(shè)計(jì)跨內(nèi)含子引物的方法_第3頁(yè)
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1、精選優(yōu)質(zhì)文檔-傾情為你奉上設(shè)計(jì)跨內(nèi)含子引物的方法一、 為什么要設(shè)計(jì)跨內(nèi)含子的引物區(qū)別或消除gDNA的擴(kuò)增二、 如何設(shè)計(jì)1、 在pubmed上找到目標(biāo)基因的DNA序列以及其內(nèi)含子和外顯子情況步驟:打開NCBI主頁(yè)面,選GENE,輸入基因名稱,找到符合要求的基因,links到geneback即可顯示出該基因DNA的信息,這是基因組DNA,從mRNA選項(xiàng)中JION后面的是外顯子的位置,為了以后的操作,可以把這個(gè)DNA序列、外顯子和CDS序列的起至位置記下來(lái)。2、 在pubmed上找到目標(biāo)基因的mRNA序列步驟:打開NCBI主頁(yè)面,選GENE,輸入基因名稱,找到符合要求的基因,點(diǎn)擊進(jìn)入基因頁(yè)面,即可顯

2、示出這個(gè)基因的mRNA信息,最后的ORIGIN是CDNA序列,把它記下來(lái)。注:最好能找到以NM或XM開頭的序列,以此做為設(shè)計(jì)引物的模板。 NCBI RefSeq (美國(guó)國(guó)立生物技術(shù)信息中心參考序列庫(kù)) 是目前世界上最完整和最具有權(quán)威性的人類基因組編碼mRNA序列數(shù)據(jù)庫(kù)。它已收集了大約17,500個(gè)經(jīng)cDNA測(cè)序證實(shí)的"NM"序列,還有大約10,000個(gè)主要由計(jì)算機(jī)推測(cè)產(chǎn)生的"XM"序列。由于一些序列來(lái)自異常連接產(chǎn)生的轉(zhuǎn)錄物或由計(jì)算機(jī)推演產(chǎn)生的不正確內(nèi)含子-外顯子剪切,因此該數(shù)據(jù)庫(kù)所收集的參考序列一直在不斷地被修改中,盡管如此,NCBI RefSeq仍是目

3、前最可信賴的人類基因mRNA序列數(shù)據(jù)庫(kù)。3、 如何設(shè)計(jì)跨內(nèi)含子的引物(利用primer 5)步驟:1)、在第2步頁(yè)面右邊,點(diǎn)擊 real time PCR 一般產(chǎn)物長(zhǎng)度為80150bp,引物長(zhǎng)度1520bp,點(diǎn)擊GET primer。2)、會(huì)得到若干條引物,從圖中信息即可看出跨內(nèi)含子的引物,建議只用BLST找到跨內(nèi)含子的引物在CDNA的定位,然后,用primer 5繼續(xù)設(shè)計(jì)引物。此時(shí),需記下跨內(nèi)含子引物所在2個(gè)外顯子的位置(確認(rèn)是否在CDS序列內(nèi))。3)、打開Primer Premier5,點(diǎn)擊File-New-DNA sequence, 出現(xiàn)輸入序列窗口,Copy步驟1的CDNA序列在輸入框

4、內(nèi)(選擇As),此窗口內(nèi),序列也可以直接翻譯成蛋白。點(diǎn)擊Primer,進(jìn)入引物窗口。4)、此窗口可以鏈接到“引物搜索”、“引物編輯”以及“搜索結(jié)果”選項(xiàng),點(diǎn)擊Search按鈕,進(jìn)入引物搜索框,選擇“PCR primers”“Pairs”,設(shè)定搜索區(qū)域、引物長(zhǎng)度和產(chǎn)物長(zhǎng)度。搜索區(qū)域即為上一步記下的兩外顯子序列位置,QPCR引物長(zhǎng)度大約為1520bp,產(chǎn)物長(zhǎng)度為80150bp.在Search Parameters里面,可以設(shè)定相應(yīng)參數(shù)。一般若無(wú)特殊需要,參數(shù)選擇默認(rèn)即可。5)、點(diǎn)擊OK,軟件即開始自動(dòng)搜索引物,搜索完成后,會(huì)自動(dòng)跳出結(jié)果窗口,搜索結(jié)果默認(rèn)按照評(píng)分(Rating)排序,點(diǎn)擊其中任一個(gè)

5、搜索結(jié)果,可以在“引物窗口”中,顯示出該引物的綜合情況,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各種信息等。6)、對(duì)于引物的序列,可以簡(jiǎn)單查看一下, Tm應(yīng)該在5570度之間,GC應(yīng)該在4555間,上游引物和下游引物的Tm值最好不要相差太多,大概在2度以下較好。該窗口的最下面列出了兩條引物的二級(jí)結(jié)構(gòu)信息,包括,發(fā)卡,二聚體,引物間交叉二聚體和錯(cuò)誤引發(fā)位置。若按鈕顯示為紅色,表示存在該二級(jí)結(jié)構(gòu),點(diǎn)擊該紅色按鈕,即可看到相應(yīng)二級(jí)結(jié)構(gòu)位置圖示。最理想的引物,應(yīng)該都不存在這些二級(jí)結(jié)構(gòu),即這幾個(gè)按鈕都顯示為“None”為好。但有時(shí)很難找到各個(gè)條件都滿足的引物,所以要求可以適當(dāng)放寬,比如引物存在錯(cuò)配的話

6、,可以就具體情況考察該錯(cuò)配的效率如何,是否會(huì)明顯影響產(chǎn)物。對(duì)于引物具體詳細(xì)的評(píng)價(jià)需要借助于Oligo來(lái)完成,Oligo自身雖然帶有引物搜索功能,但其搜索出的引物質(zhì)量感覺不如Primer5.7)、在Primer5窗口中,若覺得某一對(duì)引物合適,可以在搜索結(jié)果窗口中,點(diǎn)擊該引物,然后在菜單欄,選擇File-Print-Current pair,使用PDF虛擬打印機(jī),即可轉(zhuǎn)換為Pdf文檔,里面有該引物的詳細(xì)信息。4、用PRIMER 5查找已知引物的在DNA序列內(nèi)的產(chǎn)物位置,確定其是否跨內(nèi)含子步驟:打開PRIMER 5,將DNA序列貼入,點(diǎn)擊primer,顯示primer primer界面,點(diǎn)擊左上方的

7、“S”,再點(diǎn)擊EDIT primer,顯示EDIT primer界面,在“5-3”框中貼入上一步確定的Forward primer,點(diǎn)擊as is,顯示序列已被貼入,點(diǎn)擊analyze,再點(diǎn)擊primer,顯示輸入的序列和已知DNA良好配對(duì),點(diǎn)擊OK。顯示“primer primer界面”, 點(diǎn)擊左上方的“A”,再點(diǎn)擊EDIT primer,顯示EDIT primer界面,在“3-5”框中貼入已知的REVERSE primer,點(diǎn)擊REVERSE,顯示序列已被貼入,點(diǎn)擊analyze,再點(diǎn)擊primer-,顯示輸入的序列和已知DNA良好配對(duì),點(diǎn)擊OK,顯示“primer primer界面”,在

8、右上角顯示PCR產(chǎn)物的起始和結(jié)束位點(diǎn)。對(duì)照步驟1記錄的CDS起始位點(diǎn),即可驗(yàn)證。5、用Oligo驗(yàn)證評(píng)估引物1)、在Oligo軟件界面,F(xiàn)ile菜單下,選擇Open,定位到目的cDNA序列(在primer中,該序列已經(jīng)被保存為Seq文件),會(huì)跳出來(lái)兩個(gè)窗口,分別為Internal Stability(Delta G)窗口和Tm窗口。在Tm窗口中,點(diǎn)擊最左下角的按鈕,會(huì)出來(lái)引物定位對(duì)話框,輸入候選的上游引物序列位置(Primer5已經(jīng)給出)即可,而引物長(zhǎng)度可以通過點(diǎn)擊ChangeCurrent oligo length來(lái)改變。定位后,點(diǎn)擊Tm窗口的Upper按鈕,確定上游引物,同樣方法定位下游引

9、物位置,點(diǎn)擊Lower按鈕,確定下游引物。引物確定后,即可以充分利用Analyze菜單中各種強(qiáng)大的引物分析功能了。2)、Analyze中,第一項(xiàng)為Key info,點(diǎn)擊Selected primers,會(huì)給出兩條引物的概括性信息,其中包括引物的Tm值,此值Oligo是采用nearest neighbor method計(jì)算,會(huì)比Primer5中引物的Tm值略高,此窗口中還給出引物的Delta G.3端的Delta G過高,會(huì)在錯(cuò)配位點(diǎn)形成雙鏈結(jié)構(gòu)并引起DNA聚合反應(yīng),因此此項(xiàng)絕對(duì)值應(yīng)該小一些,最好不要超過9。3)、Analyze中第二項(xiàng)為Duplex Formation,即二聚體形成分析,可以選

10、擇上游引物或下游引物,分析上游引物間二聚體形成情況和下游引物間的二聚體情況,還可以選擇Upper/Lower ,即上下游引物之間的二聚體形成情況。引物二聚體是影響PCR反應(yīng)異常的重要因素,因此應(yīng)該避免設(shè)計(jì)的引物存在二聚體,至少也要使設(shè)計(jì)的引物形成的二聚體是不穩(wěn)定的,即其Delta G值應(yīng)該偏低,一般不要使其超過4.5kcal/mol,結(jié)合堿基對(duì)不要超過3個(gè)。Oligo此項(xiàng)的分析窗口中分別給出了3端和整個(gè)引物的二聚體圖示和Delta G值。4)、Analyze中第三項(xiàng)為Hairpin Formation,即發(fā)夾結(jié)構(gòu)分析??梢赃x擇上游或者下游引物,同樣,Delta G值不要超過4.5kcal/mo

11、l,堿基對(duì)不要超過3個(gè)。5)、Analyze中第四項(xiàng)為Composition and Tm,會(huì)給出上游引物、下游引物和產(chǎn)物的各個(gè)堿基的組成比例和Tm值。上下游引物的GC需要控制在4060,而且上下游引物之間的GC 不要相差太大。Tm值共有3個(gè),分別采用三種方法計(jì)算出來(lái),包括nearest neighbor method、GC method和2(AT)4(GC)method,最后一種應(yīng)該是Primer5所采用的方法,Tm 值可以控制在5070度之間。6)、第五項(xiàng)為False Priming Sites,即錯(cuò)誤引發(fā)位點(diǎn),在Primer5中雖然也有False priming分析,但不如oligo詳細(xì)

12、,并且oligo會(huì)給出正確引發(fā)效率和錯(cuò)誤引發(fā)效率,一般的原則要使誤引發(fā)效率在100以下,當(dāng)然有時(shí)候正確位點(diǎn)的引發(fā)效率很高的話,比如達(dá)到400500,錯(cuò)誤引發(fā)效率超過100幅度若不大的話,也可以接受。7)、其次,Internal stability很重要:我們希望引物的內(nèi)部穩(wěn)定性是中間高、兩邊低的弧形,最起碼保證3端不要過于穩(wěn)定。8)、Analyze中,有參考價(jià)值的最后一項(xiàng)是“PCR”,在此窗口中,是基于此對(duì)引物的PCR反應(yīng)Summary,并且給出了此反應(yīng)的最佳退火溫度,另外,提供了對(duì)于此對(duì)引物的簡(jiǎn)短評(píng)價(jià)。若該引物有不利于PCR反應(yīng)的二級(jí)結(jié)構(gòu)存在,并且Delta G值偏大的話,Oligo在最后的評(píng)價(jià)中會(huì)注明,若沒有注明此項(xiàng),表明二級(jí)結(jié)構(gòu)能值較小,基本可以接受。9)、引物評(píng)價(jià)完畢后,可以選擇FilePrint,打印為PDF文件保存,文件中將會(huì)包括所有Oligo軟件中

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