瘧疾鏡檢-課件

瘧原蟲(chóng)鏡檢技術(shù)瘧原蟲(chóng)鏡檢技術(shù)1一、顯微鏡鏡檢用于瘧疾診斷

顯微鏡鏡檢仍是目前廣泛應(yīng)用的瘧疾診斷技術(shù)(金標(biāo)準(zhǔn)）主要優(yōu)點(diǎn)-特異高-能區(qū)分蟲(chóng)種-能分期-能計(jì)數(shù)-1小時(shí)內(nèi)能完成診斷程序一、顯微鏡鏡檢用于瘧疾診斷

顯微鏡鏡檢仍是目前廣泛應(yīng)用的瘧疾21.所需設(shè)備（1）載玻片（2）采血針

（3）玻片盒

（4）75％乙醇棉球（5）鉛筆（6）登記表二、血片制作及染色1.所需設(shè)備二、血片制作及染色3

2．血片制作（1）取血部位采血部位有指尖、耳垂、嬰兒可在足跟取血（2）涂制血膜厚血膜的涂制：

用推片的左下角刮取血液4-5μl（約火柴頭大?。?，將血滴涂于載片的中央偏右，由里向外劃圈涂成直徑為0.8-1厘米的厚薄均勻的圓形厚血膜。2．血片制作用推片的左下角刮取血液4-5μl（約火柴頭4用棉球抹凈角上的血漬，再刮取血液1.5μl{約1/4火柴頭大小)，將推片的一端置于血滴之前，當(dāng)血液在載玻片與推片之間向兩側(cè)擴(kuò)展至約2cm寬時(shí)，使兩玻片保持25-35°角，從右向左迅速向前推成舌狀薄血膜，長(zhǎng)約2.5CM。（一）薄血膜的涂制：（一）薄血膜的涂制：5（3）厚薄血膜的位置：每張載玻片上分別做1個(gè)薄血膜，1個(gè)厚血膜。標(biāo)準(zhǔn)血膜的位置如下圖所示。（4）血膜的編號(hào)制成血片后，待薄血膜干后用鉛筆將代號(hào)或個(gè)人編號(hào)寫(xiě)于血膜基部，編號(hào)要與登記本及結(jié)果報(bào)告單上的編號(hào)相一致，以防差錯(cuò)。（3）厚薄血膜的位置：6

標(biāo)準(zhǔn)血膜示意圖

標(biāo)準(zhǔn)血膜示意圖7（二）血片的染色1．薄血膜的固定血片完全干燥后才可染色固定的方法：將涂片的血膜面向上，厚血膜在上端，略?xún)A斜放置，干后用小玻棒蘸甲醇在薄血膜上輕輕抹過(guò)以固定薄血膜。（注意：厚血膜不能固定）（二）血片的染色82．染色用水和沖洗用水配制常用中性的蒸餾水或經(jīng)煮沸過(guò)濾的冷開(kāi)水。用pH7.0～pH7.2的緩沖液效果最佳。在沒(méi)有蒸餾水的情況下，也可用井水、河水、泉水或雨水。為了使血膜著色較好。（1）兩種貯備液的配制：貯備液I1/15M磷酸氫二鈉（Na2HPO4）溶液Na2HPO49.5g蒸餾水1000ml貯備液Ⅱ1/15M磷酸二氫鉀（KH2PO4）溶液KH2PO49.07g蒸餾水1000ml2．染色用水和沖洗用水配制9（2）緩沖液的配制PHM/15Na2HPO4M/15KH2PO4DW(ml)(ml)(ml)6.849519007.063379007.168329007.273279007.48119900加緩沖液的PH可用試紙或0.02%酚紅液測(cè)定。亦可用PH7.0中性蒸餾水稀釋染劑（2）緩沖液的配制10（1）配制吉姆薩（Giemsa）染液：吉姆薩粉10g

甲醇500ml

甘油500ml

將吉姆薩粉置于研缽中，加入少量甘油充分研磨，然后邊加邊磨，至甘油加完為止，倒入500ml有塞玻璃瓶中。在研缽中加入少量甲醇洗滌掉剩余部分并倒入瓶?jī)?nèi)，重復(fù)數(shù)次，一并倒入瓶中，至研缽中甘油洗凈為止。塞緊瓶塞，充分搖勻，在室溫下放置3-5天，每天搖動(dòng)，即可使用。放置時(shí)間越長(zhǎng)染色效果愈佳。（1）配制吉姆薩（Giemsa）染液：11（2）

染色方法：

A.常規(guī)染色用PH7.0-7.2緩沖液或蒸餾水將吉氏原液與緩沖液1：20稀釋。分別加數(shù)滴經(jīng)稀釋吉氏染液于厚、薄血膜，染色25-30分鐘后，用中性蒸餾水輕輕將片上的染液沖去，（沖洗時(shí)勿用水直接對(duì)準(zhǔn)厚血膜，以免血膜脫落）涼干后鏡檢。（2）

染色方法：12

B.

快速吉氏染色

在每毫升緩沖液中加吉氏原液3滴，（10-15%吉氏染液）分別加數(shù)滴于厚、薄血膜上，染色5分鐘，用流水輕輕沖洗干凈，涼干后鏡檢。

13瑞氏（Wright）染液:（1）染液配制：

瑞氏染劑粉0.1—0.5g甘油3ml純甲醇97ml將瑞氏染劑粉置于研缽內(nèi)，加入甘油充分研磨后，然后加入少量甲醇碾磨后倒入有玻塞瓶中，再分次用甲醇沖洗碾缽中的瑞氏染粉甘油液，倒入瓶中，直至洗完。充分搖勻，一般放置一二星期后，再過(guò)濾應(yīng)用（保存時(shí)間愈久，染色力愈佳）。急用時(shí)，放置24小時(shí)后過(guò)濾也可使用。

瑞氏（Wright）染液:14（2）染色方法：

先用臘筆在厚薄血膜間畫(huà)一界線(xiàn)，滴2-3滴蒸餾水于厚血膜上溶血,棄殘液。（小心勿使蒸餾水超出臘筆線(xiàn)而觸及薄血膜）。在薄血膜上滴瑞氏染液5-8滴，再加與染液等量的蒸餾水，與染液混合均勻后用玻棒引至厚血膜上，厚薄血膜同時(shí)染色5-8分鐘后，用清水輕輕沖洗數(shù)秒鐘，待干后鏡檢。

（2）染色方法：153.染色質(zhì)量染色較好的血片，肉眼看上去呈淡紫紅色（不應(yīng)該出現(xiàn)藍(lán)—綠色或紅色）；鏡檢紅細(xì)胞呈淡紅色，嗜酸性細(xì)胞的顆粒呈鮮紅色，淋巴細(xì)胞及瘧原蟲(chóng)的胞漿呈藍(lán)色或淡藍(lán)色，白細(xì)胞的核呈紫藍(lán)色；瘧原蟲(chóng)的核呈紅色，瘧色素清晰可見(jiàn)，在顯微鏡下僅有小量染液沉淀。3.染色質(zhì)量染色較好的血片，肉眼看上去呈淡紫紅色（不應(yīng)該出164.影響血膜染色的因素血膜染色好壞，除與玻片的清潔、血膜制作技術(shù)等有關(guān)外，尚與下列因素有關(guān)：(1)試劑和溶劑的質(zhì)量：染料、甲醇和甘油如不純，常使所配的染液偏酸或偏堿，從而影響血膜的染色。

(2)染液的新舊：新配制的染液，因色素尚未充分溶解，一般染色力弱，且常帶堿性。染液放置較久，染色力逐漸增加，尤以吉氏染液為甚。通常在染液配制1-2周后才使用。

4.影響血膜染色的因素17(3)染液的稀釋濃度：染液濃度高，則著色快而深，各種細(xì)胞著色粗糙、薛氏點(diǎn)等粗大顯著，但顏色偏堿；使用染液濃度低，染色時(shí)間長(zhǎng)，則著色慢，顏色偏酸，各種細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)著色均勻、細(xì)致。

(4)染色時(shí)間與溫度：染色時(shí)間長(zhǎng)，化學(xué)反應(yīng)充分完成，染色效果好，反之則染色效果差。瘧疾鏡檢-課件18用水過(guò)酸可致受染RBC上的點(diǎn)彩染不出來(lái)，用水過(guò)堿，則使薄血膜上的RBC染成灰藍(lán)色，致使R的胞漿難以辨論。因此，當(dāng)染色結(jié)果發(fā)生偏藍(lán)（堿）或偏紅（酸）時(shí)，可用酸堿度與之相反的緩沖液沖洗血膜，予以調(diào)整。(5)稀釋和沖洗用水：用水過(guò)酸可致受染RBC上的點(diǎn)彩染不出來(lái)，(5)稀釋和沖洗用水19瘧疾鏡檢-課件20

血片染色好壞除了與玻片是否清潔，血片制作質(zhì)量好壞等有關(guān)外，還受到以下幾個(gè)因素的影響：（1）染料溶劑的質(zhì)量染料、甲醇和甘油如果不純，常使配制的染液偏酸或偏堿而影響染色效果。因此必須用分析純的甲醇和中性甘油，而且在配制時(shí)所用的器具必須干凈而無(wú)水份。血片染色好壞除了與玻片是否清潔，血片制作質(zhì)量好壞21（2）染液的新舊新配制的染液因色素尚未充分溶解，染色力較弱且常有沉渣。染液存放時(shí)間越久，染色力越強(qiáng)。通常在染液配制1~2周后才使用，盛裝染液的瓶子應(yīng)加塞蓋密。以防吸潮而影響染液質(zhì)量。（3）染液稀釋后使用時(shí)間染液的主要成份是美藍(lán)、伊紅和由美藍(lán)氧化產(chǎn)生的天青，三者能在酒精溶液中溶解，但在水溶液中伊紅遇到美藍(lán)和天青即產(chǎn)生沉淀。因此，必須在稀釋染液當(dāng)時(shí)使用，一般在半小時(shí)內(nèi)染色力最強(qiáng)。（2）染液的新舊新配制的染液因色素尚未充分溶解，染色22

（

4）染液的稀釋濃度與染色時(shí)間染液的濃度高其著色就快而深，染色時(shí)間相對(duì)縮短，瘧原蟲(chóng)寄生紅細(xì)胞的薛氏點(diǎn)粗大顯著，但顏色常偏藍(lán)；染液濃度過(guò)低則染色時(shí)間相對(duì)長(zhǎng)一些，顏色偏酸紅，薛氏點(diǎn)不明顯或消失。（5）稀釋和沖洗用水：為使厚、薄血膜著色較好，應(yīng)使稀釋的染液呈中性或稍偏堿性，故應(yīng)用pH7.0~pH7.2的水稀釋。當(dāng)染色太藍(lán)，可用pH較低的緩沖水沖洗；如染色太紅，則用pH較高的緩沖液沖洗；如染色太深，可延長(zhǎng)沖洗時(shí)間，予以校正。瘧疾鏡檢-課件23薄血膜中常見(jiàn)的血液成分中性白細(xì)胞酸性球血小板大單核球淋巴球紅血球薄血膜中常見(jiàn)的血液成分中性白細(xì)胞酸性球血小板大單核球淋巴球紅24（三）厚薄血膜的優(yōu)缺點(diǎn)及其適用范圍薄血膜用血量約為2μl，涂制成2cm寬×4cm長(zhǎng)面積的薄血膜。由于在制備過(guò)程中，血片通常經(jīng)甲醇固定，使紅細(xì)胞及其內(nèi)瘧原蟲(chóng)的形態(tài)保持完整，便于瘧原蟲(chóng)蟲(chóng)種的鑒定。惟由于用血量少，為保證檢測(cè)的敏感性，常耗時(shí)較多，似不適用于大規(guī)模調(diào)查。即使在醫(yī)院的化驗(yàn)室，由于要求在短時(shí)間內(nèi)作出診斷，因而極有可能出現(xiàn)漏診。（三）厚薄血膜的優(yōu)缺點(diǎn)及其適用范圍25

厚血膜用血量約為10μl～20μl。涂制成直徑1cm的厚血膜由于在制備過(guò)程中紅細(xì)胞已溶解，瘧原蟲(chóng)在形態(tài)上仍可分辨，但胞漿和胞核不可避免地形成一定程度的固縮。受影響較大的有大滋養(yǎng)體、裂殖體的形態(tài)。在鏡檢厚血膜時(shí)，一般門(mén)診須檢查200~1000個(gè)油鏡視野（相當(dāng)于0.5~2.5μl血量），才能確保鏡檢的敏感性和可重復(fù)性。通常的敏感性可達(dá)約10~20個(gè)原蟲(chóng)/μl血。由于厚血膜與薄血膜相比血量大，須查范圍小，節(jié)省時(shí)間，陽(yáng)性檢出率較高。厚血膜能查出瘧原蟲(chóng)數(shù)是薄血膜的15～25倍。所以，我們推薦瘧疾診斷應(yīng)以檢查厚血膜為主。在普查時(shí)均應(yīng)查完整個(gè)厚血膜，未查見(jiàn)瘧原蟲(chóng)則判為陰性。厚血膜26混合感染的鑒別1、容易鑒別的混合感染1）同一血膜中發(fā)現(xiàn)間日瘧各期原蟲(chóng)和惡性瘧雌雄配子體。2）同一血膜中發(fā)現(xiàn)大量纖細(xì)的惡性瘧環(huán)狀體，并混有少量間日瘧原蟲(chóng)。2、不易鑒別的混合感染1）間日瘧各期原蟲(chóng)和粗環(huán)的惡性瘧環(huán)狀體。2）僅有間日瘧和惡性瘧的環(huán)狀體。

3分子生物學(xué)方法應(yīng)用于瘧原蟲(chóng)分型1）提高檢出：對(duì)鏡檢漏診病人敏感性達(dá)5個(gè)原蟲(chóng)/100uL血2）確定四種瘧原蟲(chóng)，做復(fù)核鑒定混合感染的鑒別1、容易鑒別的混合感染27三、厚血膜的瘧原蟲(chóng)計(jì)數(shù)

根據(jù)預(yù)先測(cè)定的白細(xì)胞數(shù)目計(jì)算出每微升血液中瘧原蟲(chóng)的數(shù)目。在制作厚血膜的同時(shí)，使用Coulter計(jì)數(shù)器或血球計(jì)確定每微升血液中的白細(xì)胞數(shù)。然后鏡檢厚血膜，計(jì)數(shù)同一視野中的瘧原蟲(chóng)數(shù)和白細(xì)胞數(shù)，直到所計(jì)數(shù)的白細(xì)胞數(shù)達(dá)到確定的數(shù)值為止(如果瘧原蟲(chóng)密度較高，計(jì)數(shù)100～200個(gè)白細(xì)胞即可，但在瘧原蟲(chóng)密度很低時(shí)，計(jì)數(shù)白細(xì)胞數(shù)需達(dá)1000個(gè))。用下式算出瘧原蟲(chóng)密度：瘧原蟲(chóng)數(shù)/白細(xì)胞數(shù)×白細(xì)胞數(shù)/μl血=瘧原蟲(chóng)數(shù)/μl血。

如果無(wú)法進(jìn)行白細(xì)胞計(jì)數(shù)，則可按常規(guī)估計(jì)白細(xì)胞數(shù)。國(guó)外最常采用的數(shù)值是8000白細(xì)胞/μl血,國(guó)內(nèi)常用6000白細(xì)胞/μl血。三、厚血膜的瘧原蟲(chóng)計(jì)數(shù)28謝謝大家謝謝大家29瘧原蟲(chóng)鏡檢技術(shù)瘧原蟲(chóng)鏡檢技術(shù)30一、顯微鏡鏡檢用于瘧疾診斷

顯微鏡鏡檢仍是目前廣泛應(yīng)用的瘧疾診斷技術(shù)(金標(biāo)準(zhǔn)）主要優(yōu)點(diǎn)-特異高-能區(qū)分蟲(chóng)種-能分期-能計(jì)數(shù)-1小時(shí)內(nèi)能完成診斷程序一、顯微鏡鏡檢用于瘧疾診斷

顯微鏡鏡檢仍是目前廣泛應(yīng)用的瘧疾311.所需設(shè)備（1）載玻片（2）采血針

（3）玻片盒

（4）75％乙醇棉球（5）鉛筆（6）登記表二、血片制作及染色1.所需設(shè)備二、血片制作及染色32

2．血片制作（1）取血部位采血部位有指尖、耳垂、嬰兒可在足跟取血（2）涂制血膜厚血膜的涂制：

用推片的左下角刮取血液4-5μl（約火柴頭大小），將血滴涂于載片的中央偏右，由里向外劃圈涂成直徑為0.8-1厘米的厚薄均勻的圓形厚血膜。2．血片制作用推片的左下角刮取血液4-5μl（約火柴頭33用棉球抹凈角上的血漬，再刮取血液1.5μl{約1/4火柴頭大小)，將推片的一端置于血滴之前，當(dāng)血液在載玻片與推片之間向兩側(cè)擴(kuò)展至約2cm寬時(shí)，使兩玻片保持25-35°角，從右向左迅速向前推成舌狀薄血膜，長(zhǎng)約2.5CM。（一）薄血膜的涂制：（一）薄血膜的涂制：34（3）厚薄血膜的位置：每張載玻片上分別做1個(gè)薄血膜，1個(gè)厚血膜。標(biāo)準(zhǔn)血膜的位置如下圖所示。（4）血膜的編號(hào)制成血片后，待薄血膜干后用鉛筆將代號(hào)或個(gè)人編號(hào)寫(xiě)于血膜基部，編號(hào)要與登記本及結(jié)果報(bào)告單上的編號(hào)相一致，以防差錯(cuò)。（3）厚薄血膜的位置：35

標(biāo)準(zhǔn)血膜示意圖

標(biāo)準(zhǔn)血膜示意圖36（二）血片的染色1．薄血膜的固定血片完全干燥后才可染色固定的方法：將涂片的血膜面向上，厚血膜在上端，略?xún)A斜放置，干后用小玻棒蘸甲醇在薄血膜上輕輕抹過(guò)以固定薄血膜。（注意：厚血膜不能固定）（二）血片的染色372．染色用水和沖洗用水配制常用中性的蒸餾水或經(jīng)煮沸過(guò)濾的冷開(kāi)水。用pH7.0～pH7.2的緩沖液效果最佳。在沒(méi)有蒸餾水的情況下，也可用井水、河水、泉水或雨水。為了使血膜著色較好。（1）兩種貯備液的配制：貯備液I1/15M磷酸氫二鈉（Na2HPO4）溶液Na2HPO49.5g蒸餾水1000ml貯備液Ⅱ1/15M磷酸二氫鉀（KH2PO4）溶液KH2PO49.07g蒸餾水1000ml2．染色用水和沖洗用水配制38（2）緩沖液的配制PHM/15Na2HPO4M/15KH2PO4DW(ml)(ml)(ml)6.849519007.063379007.168329007.273279007.48119900加緩沖液的PH可用試紙或0.02%酚紅液測(cè)定。亦可用PH7.0中性蒸餾水稀釋染劑（2）緩沖液的配制39（1）配制吉姆薩（Giemsa）染液：吉姆薩粉10g

甲醇500ml

甘油500ml

將吉姆薩粉置于研缽中，加入少量甘油充分研磨，然后邊加邊磨，至甘油加完為止，倒入500ml有塞玻璃瓶中。在研缽中加入少量甲醇洗滌掉剩余部分并倒入瓶?jī)?nèi)，重復(fù)數(shù)次，一并倒入瓶中，至研缽中甘油洗凈為止。塞緊瓶塞，充分搖勻，在室溫下放置3-5天，每天搖動(dòng)，即可使用。放置時(shí)間越長(zhǎng)染色效果愈佳。（1）配制吉姆薩（Giemsa）染液：40（2）

染色方法：

A.常規(guī)染色用PH7.0-7.2緩沖液或蒸餾水將吉氏原液與緩沖液1：20稀釋。分別加數(shù)滴經(jīng)稀釋吉氏染液于厚、薄血膜，染色25-30分鐘后，用中性蒸餾水輕輕將片上的染液沖去，（沖洗時(shí)勿用水直接對(duì)準(zhǔn)厚血膜，以免血膜脫落）涼干后鏡檢。（2）

染色方法：41

B.

快速吉氏染色

在每毫升緩沖液中加吉氏原液3滴，（10-15%吉氏染液）分別加數(shù)滴于厚、薄血膜上，染色5分鐘，用流水輕輕沖洗干凈，涼干后鏡檢。

42瑞氏（Wright）染液:（1）染液配制：

瑞氏染劑粉0.1—0.5g甘油3ml純甲醇97ml將瑞氏染劑粉置于研缽內(nèi)，加入甘油充分研磨后，然后加入少量甲醇碾磨后倒入有玻塞瓶中，再分次用甲醇沖洗碾缽中的瑞氏染粉甘油液，倒入瓶中，直至洗完。充分搖勻，一般放置一二星期后，再過(guò)濾應(yīng)用（保存時(shí)間愈久，染色力愈佳）。急用時(shí)，放置24小時(shí)后過(guò)濾也可使用。

瑞氏（Wright）染液:43（2）染色方法：

先用臘筆在厚薄血膜間畫(huà)一界線(xiàn)，滴2-3滴蒸餾水于厚血膜上溶血,棄殘液。（小心勿使蒸餾水超出臘筆線(xiàn)而觸及薄血膜）。在薄血膜上滴瑞氏染液5-8滴，再加與染液等量的蒸餾水，與染液混合均勻后用玻棒引至厚血膜上，厚薄血膜同時(shí)染色5-8分鐘后，用清水輕輕沖洗數(shù)秒鐘，待干后鏡檢。

（2）染色方法：443.染色質(zhì)量染色較好的血片，肉眼看上去呈淡紫紅色（不應(yīng)該出現(xiàn)藍(lán)—綠色或紅色）；鏡檢紅細(xì)胞呈淡紅色，嗜酸性細(xì)胞的顆粒呈鮮紅色，淋巴細(xì)胞及瘧原蟲(chóng)的胞漿呈藍(lán)色或淡藍(lán)色，白細(xì)胞的核呈紫藍(lán)色；瘧原蟲(chóng)的核呈紅色，瘧色素清晰可見(jiàn)，在顯微鏡下僅有小量染液沉淀。3.染色質(zhì)量染色較好的血片，肉眼看上去呈淡紫紅色（不應(yīng)該出454.影響血膜染色的因素血膜染色好壞，除與玻片的清潔、血膜制作技術(shù)等有關(guān)外，尚與下列因素有關(guān)：(1)試劑和溶劑的質(zhì)量：染料、甲醇和甘油如不純，常使所配的染液偏酸或偏堿，從而影響血膜的染色。

(2)染液的新舊：新配制的染液，因色素尚未充分溶解，一般染色力弱，且常帶堿性。染液放置較久，染色力逐漸增加，尤以吉氏染液為甚。通常在染液配制1-2周后才使用。

4.影響血膜染色的因素46(3)染液的稀釋濃度：染液濃度高，則著色快而深，各種細(xì)胞著色粗糙、薛氏點(diǎn)等粗大顯著，但顏色偏堿；使用染液濃度低，染色時(shí)間長(zhǎng)，則著色慢，顏色偏酸，各種細(xì)胞內(nèi)部結(jié)構(gòu)著色均勻、細(xì)致。

(4)染色時(shí)間與溫度：染色時(shí)間長(zhǎng)，化學(xué)反應(yīng)充分完成，染色效果好，反之則染色效果差。瘧疾鏡檢-課件47用水過(guò)酸可致受染RBC上的點(diǎn)彩染不出來(lái)，用水過(guò)堿，則使薄血膜上的RBC染成灰藍(lán)色，致使R的胞漿難以辨論。因此，當(dāng)染色結(jié)果發(fā)生偏藍(lán)（堿）或偏紅（酸）時(shí)，可用酸堿度與之相反的緩沖液沖洗血膜，予以調(diào)整。(5)稀釋和沖洗用水：用水過(guò)酸可致受染RBC上的點(diǎn)彩染不出來(lái)，(5)稀釋和沖洗用水48瘧疾鏡檢-課件49

血片染色好壞除了與玻片是否清潔，血片制作質(zhì)量好壞等有關(guān)外，還受到以下幾個(gè)因素的影響：（1）染料溶劑的質(zhì)量染料、甲醇和甘油如果不純，常使配制的染液偏酸或偏堿而影響染色效果。因此必須用分析純的甲醇和中性甘油，而且在配制時(shí)所用的器具必須干凈而無(wú)水份。血片染色好壞除了與玻片是否清潔，血片制作質(zhì)量好壞50（2）染液的新舊新配制的染液因色素尚未充分溶解，染色力較弱且常有沉渣。染液存放時(shí)間越久，染色力越強(qiáng)。通常在染液配制1~2周后才使用，盛裝染液的瓶子應(yīng)加塞蓋密。以防吸潮而影響染液質(zhì)量。（3）染液稀釋后使用時(shí)間染液的主要成份是美藍(lán)、伊紅和由美藍(lán)氧化產(chǎn)生的天青，三者能在酒精溶液中溶解，但在水溶液中伊紅遇到美藍(lán)和天青即產(chǎn)生沉淀。因此，必須在稀釋染液當(dāng)時(shí)使用，一般在半小時(shí)內(nèi)染色力最強(qiáng)。（2）染液的新舊新配制的染液因色素尚未充分溶解，染色51

（

4）染液的稀釋濃度與染色時(shí)間染液的濃度高其著色就快而深，染色時(shí)間相對(duì)縮短，瘧原蟲(chóng)寄生紅細(xì)胞的薛氏點(diǎn)粗大顯著，但顏色常偏藍(lán)；染液濃度過(guò)低則染色時(shí)間相對(duì)長(zhǎng)一些，顏色偏酸紅，薛氏點(diǎn)不明顯或消失。（5）稀釋和沖洗用水：為使厚、薄血膜著色較好，應(yīng)使稀釋的染液呈中性或稍偏堿性，故應(yīng)用pH7.0~pH7.2的水稀釋。當(dāng)染色太藍(lán)，可用pH較低的緩沖水沖洗；如染色太紅，則用pH較高的緩沖液沖洗；如染色太深，可延長(zhǎng)沖洗時(shí)間，予以校正。瘧疾鏡檢-課件52薄血膜中常見(jiàn)的血液成分中性白細(xì)胞酸性球血小板大單核球淋巴球紅血球薄血膜中常見(jiàn)的血液成分中性白細(xì)胞酸性球血小板大單核球淋巴球紅53（三）厚薄血膜的優(yōu)缺點(diǎn)及其適用范圍薄血膜用血量約為2μl，涂制成2cm寬×4cm長(zhǎng)面