基因克隆原理及實(shí)驗(yàn)介紹

基因克隆原理及實(shí)驗(yàn)介紹第一頁，共三十二頁，2022年，8月28日內(nèi)容概要實(shí)驗(yàn)進(jìn)展匯報(bào)（5.10~8.24）基因克隆基本原理及實(shí)驗(yàn)操作第二頁，共三十二頁，2022年，8月28日目的基因長(zhǎng)度質(zhì)粒載體備注結(jié)果NS1-11056bppcDNA3.1+3flag中間有3個(gè)位點(diǎn)突變成功NS1-21056bppcDNA3.1+3flag中間有3個(gè)位點(diǎn)突變成功NS1-31056bppcDNA3.1+3flag中間有3個(gè)位點(diǎn)突變成功

NS2A-1654bppcDNA3.1+3flag中間有2個(gè)位點(diǎn)突變成功

NS2B-1390bppcDNA3.1+3flag不配對(duì)失敗NS2B-2390bppcDNA3.1+3flag雙峰失敗NS2B-3390bppcDNA3.1+3flag中間有1個(gè)位點(diǎn)突變成功

NS3-11854bppcDNA3.1+3flag測(cè)序有問題，需要溝通

NS3-21854bppcDNA3.1+3flag測(cè)序有問題，需要溝通

NS3-31854bppcDNA3.1+3flag測(cè)序有問題，需要溝通

NS4A-1859bppcDNA3.1+3flag需要重新設(shè)計(jì)引物，直接pcr成功NS4A-2859bppcDNA3.1+3flag需要重新設(shè)計(jì)引物，直接pcr成功NS4A-3859bppcDNA3.1+3flag需要重新設(shè)計(jì)引物，直接pcr成功

NS4B-1336bppcDNA3.1+3flag需要重新設(shè)計(jì)引物，重新實(shí)驗(yàn)失敗NS4B-2336bppcDNA3.1+3flag需要重新設(shè)計(jì)引物，重新實(shí)驗(yàn)失敗NS4B-3336bppcDNA3.1+3flag需要重新設(shè)計(jì)引物，重新實(shí)驗(yàn)失敗

NS5-12700bppcDNA3.1+3flagPCR做不出來失敗NS5-22700bppcDNA3.1+3flagPCR做不出來失敗NS5-32700bppcDNA3.1+3flagPCR做不出來失敗

E-31485bppcDNA3.1+3flag中間有4個(gè)位點(diǎn)突變成功

Cap-1339bppcDNA3.1+3flag前后有數(shù)個(gè)位點(diǎn)突變成功Cap-2339bppcDNA3.1+3flag前后有數(shù)個(gè)位點(diǎn)突變成功Cap-3339bppcDNA3.1+3flag前后有數(shù)個(gè)位點(diǎn)突變成功

prM-1498bppcDNA3.1+3flag中間有3個(gè)位點(diǎn)突變成功prM-2498bppcDNA3.1+3flag中間有3個(gè)位點(diǎn)突變成功prM-3498bppcDNA3.1+3flag中間有3個(gè)位點(diǎn)突變成功

M-1225bppcDNA3.1+3flag中間有1個(gè)位點(diǎn)突變成功M-2225bppcDNA3.1+3flag沒有突變成功M-3225bppcDNA3.1+3flag沒有突變成功目的基因長(zhǎng)度質(zhì)粒載體備注結(jié)果NS3-11854bppcDNA3.1+3flag有2個(gè)突變成功NS3-21854bppcDNA3.1+3flag有2個(gè)突變成功NS3-31854bppcDNA3.1+3flag有2個(gè)突變成功

NS4A-1381bppcDNA3.1+3flag沒有突變成功NS4A-2381bppcDNA3.1+3flag沒有突變成功NS4A-3381bppcDNA3.1+3flag沒有突變成功

NS4B-1744bppcDNA3.1+3flag有2個(gè)突變失敗NS4B-2744bppcDNA3.1+3flag有3個(gè)突變失敗NS4B-3744bppcDNA3.1+3flag有2個(gè)突變失敗

NS4A+2K-1450bppcDNA3.1+3flag

NS4A+2K-2450bppcDNA3.1+3flag

NS4A+2K-3450bppcDNA3.1+3flag

NS5-32700bppcDNA3.1+3flag

E1485bppcDNA3.1+3flagPCR做不出來失敗

prM-1498bppLenti+3flag無信號(hào)，取消測(cè)序失敗prM-2498bppLenti+3flag沒有突變成功prM-3498bppLenti+3flag沒有突變成功

M-1225bppLenti+3flag

M-2225bppLenti+3flag

M-3225bppLenti+3flag

第三頁，共三十二頁，2022年，8月28日分子生物學(xué)DNARNA蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)錄翻譯逆轉(zhuǎn)錄分子生物學(xué)是在分子水平上研究生命現(xiàn)象、生命本質(zhì)、生命活動(dòng)及其規(guī)律的科學(xué)，其研究對(duì)象是核酸（DNA、RNA）和蛋白質(zhì)等生物大分子，其研究?jī)?nèi)容包括核酸和蛋白質(zhì)等的結(jié)構(gòu)、功能及其遺傳信息和代謝信息傳遞中的作用和作用規(guī)律。第四頁，共三十二頁，2022年，8月28日基因克隆基因克?。╣enecloning）或分子克隆，又稱為重組DNA技術(shù)，是應(yīng)用酶學(xué)方法，在體外將不同來源的DNA分子通過酶切、連接等操作重新組裝成雜合分子，并使之在適當(dāng)?shù)乃拗骷?xì)胞中進(jìn)行擴(kuò)增，形成大量的子代DNA分子的過程。目的：大量擴(kuò)增目的基因，為下一步基因的功能研究做準(zhǔn)備。第五頁，共三十二頁，2022年，8月28日pcDNA3.1+3flagpCR雙酶切連接引物設(shè)計(jì)回收純化重組質(zhì)粒pcDNA3.1+3flag-NS3第六頁，共三十二頁，2022年，8月28日pCR雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序大腸桿菌(感受態(tài))引物設(shè)計(jì)回收純化載體目的片段酶切鑒定第七頁，共三十二頁，2022年，8月28日網(wǎng)上檢索引物設(shè)計(jì)DNA制備PCR擴(kuò)增擴(kuò)增產(chǎn)物純化與克隆載體連接感受態(tài)E.coli制備轉(zhuǎn)化、培養(yǎng)重組克隆篩選PCR或酶切鑒定測(cè)序生物信息學(xué)分析等質(zhì)粒提取實(shí)驗(yàn)流程第八頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)從GenBank下載全基因組序列（completegenome），記錄編號(hào)保存各目的基因的序列（如NS1、NS2A、NS5、Cap、E等）獲取載體質(zhì)粒的相關(guān)信息（抗性、標(biāo)簽、酶切位點(diǎn)）復(fù)制到PrimerPremier5分析其酶切位點(diǎn)，選擇共有的酶切位點(diǎn)在目的基因合適的位置添加引物，并在引物前/后加上酶切位點(diǎn)pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序引物設(shè)計(jì)第九頁，共三十二頁，2022年，8月28日ori是復(fù)制起點(diǎn),他被宿主細(xì)胞識(shí)別后才能在該細(xì)胞中復(fù)制。第十頁，共三十二頁，2022年，8月28日第十一頁，共三十二頁，2022年，8月28日PrimerPremier5pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序引物設(shè)計(jì)第十二頁，共三十二頁，2022年，8月28日PrimerPremier5pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序引物設(shè)計(jì)第十三頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物處理Procedure標(biāo)記，Sense→F，Antise→R，如“NS3SenseBamH1”，記為“NS3-F-BamH1”離心，使粉末在底部集聚，12000g，10min（注意是g，不是rpm）稀釋，ddH2O按報(bào)告單儲(chǔ)存濃度（100μM）的10倍量稀釋至使用濃度10μM保存，分裝-20℃pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序引物設(shè)計(jì)第十四頁，共三十二頁，2022年，8月28日Attention離心時(shí)待離心機(jī)達(dá)到最高轉(zhuǎn)速方可離開，防止不平衡造成損壞μM是濃度單位，如100μM=100μmol/L引物稀釋量向上取5倍整數(shù)，如383μl稀釋至385μlpCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序引物設(shè)計(jì)第十五頁，共三十二頁，2022年，8月28日1預(yù)變性94℃2min2c變性98℃10s3c退火X℃30s*4c延伸68℃

需計(jì)算*5總延伸68℃10min6冷卻16℃10min總循環(huán)數(shù)30-40（from2cto4c）引物設(shè)計(jì)雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序回收純化pCR成分體積（μl）滅菌ddH2O3310×KOD-plus-neoBuffer5dNTPs（2mM）5MgSO43Template1PrimerR（10μM）1PrimerF（10μM）1KOD-plus-neoPolymease1Total50AB*延伸時(shí)間計(jì)算：

，向上取整數(shù)（多預(yù)留延伸時(shí)間）*退火溫度計(jì)算：一般為上下游引物TM平均值—5℃第十六頁，共三十二頁，2022年，8月28日Attention試劑如不完全融化，會(huì)造成濃度不均，酶需冰上放置PCR管根據(jù)目的基因名稱、日期、編號(hào)做標(biāo)記模板(Template)可根據(jù)濃度確定加入體積，緩沖液(Buffer)必須在酶之前加入。注意不同引物對(duì)應(yīng)不同PCR管PCR結(jié)果優(yōu)化略，詳見《pCR常見問題解決方法》引物設(shè)計(jì)回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序pCR第十七頁，共三十二頁，2022年，8月28日瓊脂糖凝膠電泳瓊脂糖凝膠具有網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)，本身不帶電荷。具有分子篩效應(yīng)(凝膠色譜)與電泳效應(yīng)。目的：分離不同大小的核酸，以達(dá)到純化、鑒定的目的。原理：DNA分子遷移率與其大小成反比，電泳時(shí)

根據(jù)分子大小不同形成不同的條帶根據(jù)目的基因片段大小，配制不同濃度的凝膠引物設(shè)計(jì)pCR雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序回收純化凝膠濃度目的基因片段(bp)0.5%1000-300000.7%800-120001.0%500-100001.2%400-70001.5%200-30002.0%50-2000第十八頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)pCR雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序回收純化Attention瓊脂糖凝膠可根據(jù)情況分成數(shù)小塊（一般是每8孔），或插入孔徑不同的梳子EB具有強(qiáng)致癌性，應(yīng)在污染區(qū)操作為保持凝膠成像儀與點(diǎn)樣順序一致，點(diǎn)樣時(shí)應(yīng)從右往左點(diǎn)（靠近自己一段開始）Marker是已知大小的正對(duì)照DNA，電泳能分離出不同條帶，相當(dāng)于尺子上的刻度，可以用來測(cè)算未知DNA樣品的大小。紅色為正極，黑色為負(fù)極，DNA樣品由負(fù)極往正極泳動(dòng)（靠近加樣孔的一端為負(fù))。第十九頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)pCR雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序回收純化2000bp1000bp750bp500bp250bp100bpEECapCapCapCap2B2B2A2ANS1NS1第二十頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)pCR雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序回收純化Procedure打開紫外燈，在操作臺(tái)上根據(jù)熒光位置切膠，動(dòng)作要快并盡可能切小塊，切出的凝膠轉(zhuǎn)移至1.5mlEp管里，稱量凝膠重量*凝膠成像儀的紫外燈對(duì)DNA有突變作用，應(yīng)盡可能減少紫外燈對(duì)凝膠的照射按照TMGelExtractionKit(200)試劑盒說明書回收純化DNA：第二十一頁，共三十二頁，2022年，8月28日Objective原理：限制性內(nèi)切酶能特異地結(jié)合于一段特定的DNA序列的特異位點(diǎn)上,并切割雙鏈DNA目的DNA與質(zhì)粒載體同時(shí)進(jìn)行雙酶切（兩個(gè)不同的酶切位點(diǎn)，如BamH1和EcoR1），形成同樣的酶切位點(diǎn)為進(jìn)行連接引物設(shè)計(jì)pCR回收純化連接轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序雙酶切Procedure目的DNA酶切體系試劑用量目的DNA41μlBuffer（10×）5μlenzyme12μlenzyme22μlddH2O補(bǔ)至50μl載體酶切體系試劑用量Plasmid4μg(Xμl*)Buffer（10×）5μlenzyme12μlenzyme22μlddH2O補(bǔ)至50μl*根據(jù)質(zhì)粒濃度（如pcDNA3.1+3flag濃度為455ng/μl，4000bp，反應(yīng)體積約為9μl）混勻，37℃孵育4-6h（6h以上更佳）第二十二頁，共三十二頁，2022年，8月28日Objective通過凝膠電泳驗(yàn)證目的DNA、質(zhì)粒是否酶切成功，并通過膠回收DNA及質(zhì)粒（切去的片段除外）最終回收體積為30μl通過連接使目的DNA導(dǎo)入質(zhì)粒中，為下一步轉(zhuǎn)染準(zhǔn)備引物設(shè)計(jì)pCR回收純化雙酶切轉(zhuǎn)化挑菌提質(zhì)粒測(cè)序連接Procedure目的DNA與質(zhì)粒連接體系試劑用量目的DNA13-15μlplasmid2-4μl10×LigaseBuffer2μlT4DNALigase1μlTotal20μl混勻，4℃過夜或常溫條件下反應(yīng)4h第二十三頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)pCR回收純化雙酶切連接挑菌提質(zhì)粒測(cè)序轉(zhuǎn)化Objective將連接產(chǎn)物通過轉(zhuǎn)化轉(zhuǎn)入到感受態(tài)大腸桿菌中，從而使連接產(chǎn)物（重組質(zhì)粒）在大腸桿菌中大量復(fù)制LB培養(yǎng)基配制胰蛋白胨（Tryptone）10g/L酵母提取物（Yeastextract）5g/L氯化鈉（NaCl）10g/L瓊脂粉（Agar）*10-15g/L*配制固體LB時(shí)加入

每錐形瓶加入200/250ml（定量）第二十四頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化提質(zhì)粒測(cè)序挑菌Objective從大腸桿菌培養(yǎng)基中挑取優(yōu)勢(shì)菌落（單菌落）進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng)培養(yǎng)過夜后取出部分菌液進(jìn)行保菌第二十五頁，共三十二頁，2022年，8月28日Procedure消毒實(shí)驗(yàn)臺(tái)及器具，取酒精棉球擦拭桌面、鑷子，準(zhǔn)備無菌槍頭、試管、試管板兩個(gè)，點(diǎn)燃酒精燈，酒精消毒雙手取LB培養(yǎng)液加入抗生素，向各試管中倒入LB培養(yǎng)液約10-15ml從培養(yǎng)箱中取出培養(yǎng)皿，在火源附近打開，用鑷子夾取一個(gè)槍頭，挑取一個(gè)單菌落，輕輕沾取菌落，槍頭丟入試管內(nèi)，每菌種挑取2-3管培養(yǎng)皿用封口膜封好放入4℃保存將試管放入搖床震蕩培養(yǎng)過夜，次日出現(xiàn)渾濁消毒桌面，取1.5ml無菌Ep管標(biāo)記搖勻試管，使底部菌落分散，吸取1000μl菌液，加入200μl60%甘油，-20℃裝袋保存引物設(shè)計(jì)pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化提質(zhì)粒測(cè)序挑菌第二十六頁，共三十二頁，2022年，8月28日Objective從宿主細(xì)胞大腸桿菌中提取大量復(fù)制后的質(zhì)粒引物設(shè)計(jì)pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌測(cè)序提質(zhì)粒Procedure按照TMEndo-freePlasmidMiniKitⅡ(200)試劑盒說明書提取質(zhì)粒第二十七頁，共三十二頁，2022年，8月28日引物設(shè)計(jì)pCR回收純化雙酶切連接轉(zhuǎn)化挑菌測(cè)序