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文檔簡介

WB問題條帶分析

報告人:楊羚1、目的條帶啥也沒有原因:只重復(fù)做沒有思考。這次目的條帶和內(nèi)參的二抗種屬是不同的。網(wǎng)上查閱經(jīng)驗:一點沒有,甚至連內(nèi)參都沒有,可能抗體加錯了,轉(zhuǎn)膜問題甚至膜放反;

條帶細微接近沒有,上樣量少,一抗?jié)舛鹊?,顯色液失效...........解決辦法:實驗前檢查抗體種屬是否加錯,確認轉(zhuǎn)膜沒有問題。20150825_重復(fù)做CST1只有點內(nèi)參20150826_CST1重做2、高背景20150814_JNk高效價第一次.bmp原因:封閉不夠好,洗膜不充充分,抗體濃度特別是二抗過高。網(wǎng)上查閱經(jīng)驗:奶粉封閉時間夠,注意操作規(guī)范,不偷工減料洗膜實際解決方法:奶粉封閉時間延長了半個小時,對于這種剪小后的片,用小洗滌盒洗,總之保證其洗膜充分20150816_JNK高效價第二次.bmp3、出現(xiàn)許多黑點和斑原因:膜上其他部位與一抗或者二抗非特異性結(jié)合。網(wǎng)上查閱經(jīng)驗:不要封閉時才去匆忙配奶粉,要確保奶粉完全溶解,否則不溶顆粒附著膜上。溶解后靜止,輕吸上層牛奶封閉,封閉結(jié)束,三次洗膜徹底

201507內(nèi)參略成功.bmp20150829sirt3失敗品4、條帶拖尾可能原因:蛋白量太大,一抗?jié)舛群蜁r間太長;個人猜測,跑膠的問題解決辦法:調(diào)整蛋白量,同時一抗?jié)舛瓤s小和孵育時間縮短

201508-HSF-LXF..jpg5、出現(xiàn)非均一性背景原因:膜可能干過!解決辦法:確保蛋白面不要被風(fēng)干很長時間,一定要用不漏水的封閉盒并蓋上蓋子,防止過夜16個小時液體流失。

Gapdh.jpg6、條帶中出現(xiàn)規(guī)則白圈原因:轉(zhuǎn)膜出現(xiàn)氣泡!網(wǎng)絡(luò)經(jīng)驗:放膜時候,使膜U型放,兩邊下壓;蓋海綿前,確定氣泡除盡,蓋后放置動作要小幅輕微,防止產(chǎn)生不必要的氣泡。

7、最邊緣條帶彎曲原因:電泳電流不均解決辦法:盡量不使用兩邊的兩孔

BNP+Gapdh.jpg8、其他電泳過程出現(xiàn)的問題現(xiàn)象(1)整個條帶呈“︶”狀:凝膠冷卻不均一,電泳槽老化。(2)整個條帶呈“︵”:凝膠左右兩頭沒有凝固好(3)溴酚藍拖尾:樣品溶解不好。(4)縱向的紋理:上樣樣品中存在不溶性顆粒(5)溴酚藍很粗:濃縮膠濃縮效果不好,可能是濃縮膠太短,或者是濃縮膠配錯。(6)在分離膠中跑不動:Tris-ClPH值不對,或者忘記加SDS。8、配膠問題導(dǎo)致的失敗——條帶變形

原因:膠體中存在氣泡,或不溶性雜質(zhì),膠不均不平整解決辦法:配膠的小燒杯,水,SDS,tris等等干凈無雜質(zhì)。貼邊角加入液體,凝固時間避免大幅度動作觸碰。

9、配膠問題導(dǎo)致的失敗——條帶啞鈴狀原因:配膠問題,可能是插或拔梳子引起的凹凸不平整;還有可能,樣品含較多雜質(zhì)雜質(zhì)沉積空中間.......10、其他(1)蛋白分子量偏高或者偏低??赡苁悄z的濃度與目的蛋白的濃度不對應(yīng),比如說100KD的蛋白你用12%的膠跑,或者說20KD的蛋白你用6%的膠跑。(2)蛋白質(zhì)降解。蛋白質(zhì)降解后很可能會在比原來位置低的地方出現(xiàn)主帶,然后會出現(xiàn)一些其他帶,最主要特點是所有的條帶比正常的都低,并且條帶模糊不清晰。(3)所有條帶連成一片沒有間隔。原因最可能是上樣量過多,其次是樣品彌散(比如電泳長時間停止樣品彌散)。(4).

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