細(xì)菌漆酶LacA在大腸桿菌中的異源表達(dá)_第1頁
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文檔簡(jiǎn)介

細(xì)菌漆酶LacA在大腸桿菌中的異源表達(dá)組員(按學(xué)號(hào)排序如下):劉艷紅、王瑞、姚偉靜、張明珠、康興、程飛、孫元元、劉燕紅、程旭、査倩、潘偉民、傅聲祥匯報(bào)人:程飛實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)介實(shí)驗(yàn)原理實(shí)驗(yàn)?zāi)康膶?shí)驗(yàn)材料實(shí)驗(yàn)過程一、實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)介漆酶(Laccase)是一種含酮的多酚氧化酶,能夠催化多種酚類和非酚類化合物發(fā)生氧化,同時(shí)伴隨由分子氧還原成水。漆酶一般由500-600個(gè)氨基酸組成,不同來源的漆酶氨基酸序列的相似程度較低,但是其催化位點(diǎn)序列相當(dāng)保守。對(duì)漆酶的晶體結(jié)構(gòu)進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)其分子具有3個(gè)銅離子結(jié)合位點(diǎn),共結(jié)合四個(gè)銅離子。野生漆酶的產(chǎn)量低,重組表達(dá)是提高漆酶產(chǎn)量的一種常用方法。本實(shí)施主要通過由保守區(qū)設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物擴(kuò)增部分漆酶LacA片段,以及反向PCR擴(kuò)增已知序列臨近的未知序列,并且通過序列拼接獲得完整的LacA基因序列,并轉(zhuǎn)化大腸桿菌,進(jìn)行異源高效表達(dá)。二、實(shí)驗(yàn)?zāi)康墨@得細(xì)菌LacA基因。LacA在大腸桿菌中異源表達(dá)。三、實(shí)驗(yàn)原理DNA重組。簡(jiǎn)并引物。酶。TA克?。簩?′端具有單個(gè)“A”突出末端的PCR產(chǎn)物克隆到3′端具有單個(gè)“T”突出末端的載體的克隆法。反向PCR:反向PCR是一種新型的基因擴(kuò)增方法,它能擴(kuò)增一段已知序列旁側(cè)的DNA。載體選擇。藍(lán)白篩選:

質(zhì)粒載體含有大腸桿菌β-半乳糖苷酶基因(lacz)的啟動(dòng)子(受IPTG誘導(dǎo))及其編碼α肽鏈(β-半乳糖苷酶的氨基末端短片段)的DNA序列(特稱為lacz基因)。受體大腸桿菌細(xì)胞的β-半乳糖苷酶發(fā)生了突變,失去的氨基末端。當(dāng)lacz基因編碼的α肽鏈同失去了正常氨基末端的β-半乳糖苷酶突變體互補(bǔ)時(shí),便會(huì)產(chǎn)生出有活性的β-半乳糖苷酶分子,在IPTG誘導(dǎo)下,會(huì)啟動(dòng)表達(dá),分解X-gal產(chǎn)生藍(lán)色背景。當(dāng)MCS中插入外源基因后,會(huì)阻斷α肽鏈合成,不能形成互補(bǔ),不能產(chǎn)生功能活性的β-半乳糖苷酶,也就不會(huì)產(chǎn)生藍(lán)色背景。所以含有重組質(zhì)粒載體的克隆是白色的。四、實(shí)驗(yàn)材料1.實(shí)驗(yàn)儀器(1)超微量分光光度計(jì)。(2)制冰機(jī)。(3)高壓滅菌器。(4)PCR儀。(5)電子天平。(6)磁力攪拌器。(7)電泳儀。(8)冷凍離心機(jī)。(9)高速離心機(jī)。(10)凝膠成像系統(tǒng)。(11)冷凍研磨儀。(12)超凈工作臺(tái)。(13)烘箱。(14)液氮罐。(15)pH劑。2.實(shí)驗(yàn)試劑(1)載體:質(zhì)粒pMD18-T,質(zhì)粒pET-28a(+)。(2)產(chǎn)漆酶LacA細(xì)菌。(實(shí)驗(yàn)室自備)。(3)限制性內(nèi)切酶:BamHI,SalⅠ。(4)T4DNA連接酶;TaqDNA聚合酶。(5)0.1mol/LCaCl2溶液。(6)LB瓊脂固體平板(含Kana)。(7)LB液體培養(yǎng)基。(8)20mg/mLX-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷)。(9)200mg/mLIPTG(異丙基硫代-β-D-半乳糖苷)。(10)瓊脂糖。(11)無菌雙蒸水。(12)JM109感受態(tài)細(xì)胞。(13)卡那霉素50mg/L。(14)液氮。(15)合成引物。(16)PARAFILM。(17)Tubes。(18)溴化乙錠。(19)Agarose。(20)Sodiumchloride。(21)TRYPTONE。(22)YEASTEXTRACT。(23)TE緩沖液T10E1。(24)甘油。(25)CutSmartBuffer。(26)ABTS。(27)上樣緩沖液。(28)T4DNALigaseBuffer。(29)Trans2KplusDNAMarker。(30)2XPowerTaqPCRMaster。(31)酚/氯仿/異戊醇。(32)高純質(zhì)粒小量制備試劑盒100次。(33)普通DNA產(chǎn)物純化試劑盒(離心柱形)。(34)乙醇。(35)裂解液(40mMTris-醋酸,20mM醋酸鈉,1mMEDTA,1%SDS,pH8.0)。(36)Tris-飽和酚、氯仿。五、實(shí)驗(yàn)步驟(一)、依據(jù)蛋白質(zhì)保守區(qū)設(shè)計(jì)引物(二)、PCR擴(kuò)增保守區(qū)之間的基因序列(三)、反向PCR獲得全長(zhǎng)基因(四)、構(gòu)建重組表達(dá)載體(五)、異源表達(dá)以及蛋白活性檢測(cè)1.引物設(shè)計(jì)原則2.上游引物與下游引物1.堿裂解法提取細(xì)菌基因組DNA2.PCR擴(kuò)增保守區(qū)之間的序列3.膠回收以及純化DNA4.目的片段與載體連接以及目的片段測(cè)序測(cè)序。1.反向PCR引物設(shè)計(jì)2.細(xì)菌基因組酶切3.自身環(huán)化連接4.反向PCR5.測(cè)序以及序列拼接獲全長(zhǎng)基因1.細(xì)菌基因組DNA提取以及引物設(shè)計(jì)2.表達(dá)載體選擇3.獲得LacA基因并與載體連接4.陽性重組子篩選1.異源表達(dá)2.LacA蛋白分離純化3.LacA活性檢測(cè)(一)依據(jù)蛋白質(zhì)保守區(qū)設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物1.依據(jù)蛋白質(zhì)保守區(qū)設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物2.上游引物以及下游引物1.依據(jù)蛋白質(zhì)保守區(qū)設(shè)計(jì)簡(jiǎn)并引物引物設(shè)計(jì)原則:盡量降低簡(jiǎn)并度;起始密碼子ATG,終止密碼子TAA,TAG,TGA不使用。密碼子偏好性;大腸桿菌中的稀有密碼子;2.上游引物PFHWHGIRL(取兩個(gè)堿基即可)CATTGGCATGGTATTCGTCTCACCACGGCATCCGCCTGGAATACGACTGGGATGCGGCTAGATTAGGTTCAYTGGCAYGGNATHMGNYTM代表AorCY代表CorTH代表AorCorTD代表AorGorTN代表GorAorTorC紅色代表不可用

FR:CAYTGGCAYGGNATHMGNYT簡(jiǎn)并度:576/4用次黃嘌呤代替N(因?yàn)榇吸S嘌呤能很好的和4種堿基配對(duì))降低簡(jiǎn)并度。53下游引物PR35R代表AorG

FR:TGRTCNGTNACRTGRCARTG簡(jiǎn)并度:256(二)PCR擴(kuò)增保守區(qū)之間的基因序列2.PCR獲取保守區(qū)之間的序列。1.提取細(xì)菌基因組DNA,利用SDS法。3.膠回收以及膠回收純化試劑盒純化DNA4.目的片段與載體連接以及目的片段測(cè)序測(cè)序。1.SDS法提取細(xì)菌基因組DNA1.5ml菌液4℃12000rpm離心30sec加入400μl裂解液,用移液槍槍頭反復(fù)抽吸輔助裂解,37℃水浴30min加入Xμl的5MNaCl溶液,顛倒試管,充分混勻后,13000rpm離心15min,取上清。純化DNA,等體積苯酚/氯仿/異戊醇沉淀DNA,1/10體積3mol/lNaAc,2,5倍體積預(yù)冷無水乙醇70%乙醇沉淀50ulTE含20ug/mlRase-20℃?zhèn)溆?.PCR獲取保守區(qū)之間的序列細(xì)菌基因組200ng10XTaqBuffer(Mg2+)5uldNTPs200μmol/LFPRPTaqDNA聚合酶0.5-1.5mMddH20TOTAL50ul94℃94℃55℃72℃依據(jù)聚合酶聚合速度cycles4min40s35s100s30sTaqDNA聚合酶能產(chǎn)生3’A的尾巴,因此PCR產(chǎn)物可以用于TA克隆首次使用PCR之前,要仔細(xì)閱讀說明書。除特別指出外,加入反應(yīng)成分的每一步都需在冰上操作。加入TaqDNA聚合酶后,都要混勻體系,并且用離心機(jī)輕甩一次。3.膠回收以及純化DNA配置含1%agarase的凝膠將PCR產(chǎn)物點(diǎn)樣至膠孔里,添加Loadingbuffer,并點(diǎn)上markerPCR試劑盒回收目的片段測(cè)出DNA濃度。注意A260/A280(不小于1.8)以及A260/A230的值(不小于2.0)DNA樣品添加上樣緩沖液,其中含有甘油或者蔗糖,幫助DNA沉入膠的底部,其中還有溴酚藍(lán)或者二甲苯青,指示樣品遷移情況。5’端磷酸化純化:等量的苯酚/氯仿/異戊醇沉淀:1/10體積3mol/lNaAc,2,5倍體積預(yù)冷無水乙醇。TE溶解。回收DNA10Xbutter10mmol/LATPT4多核苷酸激酶20UPCR產(chǎn)物回收:a.熔化:3倍體積bufferDE-A,75℃,溫浴。b.結(jié)合:混合液加入DNA制備管12000rpm,1min。3.洗滌:加500μlbufferW1.加700μLbufferW2.重復(fù)一次。3.洗脫:75℃無菌水洗脫,12000rpm,1min,收集,測(cè)濃度。T克隆載體1.載體用EcoRV產(chǎn)生突出的T2.經(jīng)Taq聚合酶PCR產(chǎn)物3’段有突出的A。3.經(jīng)連接酶連接就能將基因片段和載體連接。4.目的片段與載體連接以及測(cè)序連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E.coliJM109感受態(tài)細(xì)胞設(shè)立對(duì)照回收產(chǎn)物連接到pMD18-T載體上提取質(zhì)粒(試劑盒:高純質(zhì)量少量制備試劑盒(離心柱型)測(cè)濃度測(cè)序載體:外源基因(摩爾比)=1:2~1:10載體/外源片段=載體含量(ng)X插入片段的長(zhǎng)度

插入片段所需量(ng)X載體長(zhǎng)度連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化JM109感受態(tài)細(xì)胞。a:加10ul連接產(chǎn)物到含有50ulcompetentcell的1.5mlEP管中,冰上放置30min。b:將EP管放入42度水浴鍋中熱激45sc:重新放入冰中2min。d:加入1mLLB培養(yǎng)基,放到37度復(fù)蘇1h。e:將復(fù)蘇后的菌體離心收集,涂含有Kana抗生素的LB固體板。f:將板放到37度培養(yǎng)箱培養(yǎng)16h后,對(duì)長(zhǎng)出來的菌落做菌落PCR鑒定陽性克隆。19(三)反向PCR獲得全長(zhǎng)基因1.反向PCR原理。2.PCR引物設(shè)計(jì)3.細(xì)菌基因組酶切4.自身環(huán)化連接5.長(zhǎng)距離反向PCR6.測(cè)序以及序列拼接全長(zhǎng)基因1.長(zhǎng)距離反向PCR原理2.反向PCR引物設(shè)計(jì)(1)根據(jù)LacA的部分基因序列,設(shè)計(jì)兩個(gè)特異的反向PCR引物。(由于測(cè)序結(jié)果未知,所以此處無法給出具體的引物序列)(2)IPs(3)IPa

注意:IPs和Ipa3’方向是相互背離的。不同于常規(guī)的PCR。3.細(xì)菌基因組酶切酶切體系基因組2μgbuffer限制性內(nèi)切酶20U溫度37℃時(shí)間4hddH2Ototal100μl(1)選用4種限制性內(nèi)切酶(X1,X2,X3,X4。對(duì)基因組的DNA分別進(jìn)行單酶切,前提是保證這四種酶在LacA上沒有酶切位點(diǎn)。

方法:通過細(xì)菌基因組序列以及保守序列周圍的序列,根據(jù)一般漆酶基因的大小,確定這四種限制性內(nèi)切酶。(2)酶切產(chǎn)物純化(PCR產(chǎn)物純化試劑盒)。(3)測(cè)濃度。自身環(huán)化連接體系酶切后基因組DNA0.5μg10XT4Buffer100μlT4DNA連接酶300U溫度16℃時(shí)間16hddH2OTOTAL1000μl4.自身環(huán)化連接(1)自身連接產(chǎn)物純化(TIANquickMidiPurificationKit普通DNA產(chǎn)物純化收試劑盒同前面內(nèi)容)。(2)測(cè)濃度。5.反向PCR94℃94℃70℃cycles2min40S13min34s(1)配置含1%agarase的凝膠。(2)將PCR產(chǎn)物點(diǎn)樣至膠孔里,添加Loadingbuffer,并點(diǎn)上marker,染料使用EB。(3)用刀片切取含有目的片段的瓊脂糖凝膠,試劑盒純化DNA。(4)DNA磷酸化處理。(5)測(cè)濃度。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化E.coliJM109感受態(tài)細(xì)胞回收產(chǎn)物連接到pMD18-T載體上提取質(zhì)粒(試劑盒:高純質(zhì)量少量制備試劑盒(離心柱型)測(cè)濃度測(cè)序以及序列拼接。序列拼接采用DNASTAR軟件的SeqMan程序。由重疊部分即可拼接出完整的全長(zhǎng)基因。6.測(cè)序以及序列拼接全長(zhǎng)基因獲得的全長(zhǎng)基因提交GeneBank(四)構(gòu)建重組表達(dá)載體1.細(xì)菌基因組DNA的提取以及引物設(shè)計(jì)。2.表達(dá)載體的選擇pET-28-a(+)。3.獲取LacA基因并與載體連接。1.細(xì)菌基因組DNA的提取以及引物設(shè)計(jì)(1)SDS法提取細(xì)菌基因組DNA(2)引物設(shè)計(jì)原則a、由已知的LacA基因序列設(shè)計(jì)引物。b、在引物5’端設(shè)計(jì)酶切位點(diǎn),以及添加保護(hù)堿基。軟件使用Primer5。FPa5’CGGGATCCNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN3’含有BamHI酶切位點(diǎn)。FRa5’ACGCGTCGACNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN3’含有SalI酶切位點(diǎn)。

2.表達(dá)載體的選擇pET-28a(+)3.獲取LacA基因并與載體連接PCR獲得LacA基因序列細(xì)菌基因組200ng10XTaqBuffer(Mg2+)5uldNTPsFPaRPaTaqDNA聚合酶ddH20TOTAL50ul(1)PCR獲得LacA基因序列(2)雙酶切PCR產(chǎn)物,試劑盒純化,測(cè)濃度。(3)雙酶切載體,純化,測(cè)濃度。(4)LacA與載體連接。(5)轉(zhuǎn)化JM109。雙酶切PCR產(chǎn)物10xcutsmartbuffer2ulBamHI-HF0.5ulSalI-HF0.5ulPCRLacA1ngddH2OTOTAL20ul溫度與時(shí)間37℃4h雙酶切pET-28a10xcutsmartbuffer2ulBamHI-HF0.5ulSalI-HF0.5ulpET-28a1ngddH2OTOTAL20ul溫度與時(shí)間37℃4hLacA與載體連接10xT4Ligasebuffer2ulT4Ligase0.5ulpET-28a0.5ul酶切后LacA1ngddH2OTOTAL20ul溫度與時(shí)間16℃過夜4.陽性重組子篩選(1)重組子涂平板篩選重組子的培養(yǎng)基:Kana50ug/mg,x-gal是2%,每個(gè)平板取40uL涂布,IPTG是20%每個(gè)平板取7uL涂布。

特注:Kana添加是在倒平板溫度降到可以用手觸摸再添加。X-gal和IPTG在平板凝固之后涂布。

(2)設(shè)對(duì)照組。陽性對(duì)照與陰性對(duì)照。

(3)在Kana抗性的平板可以生長(zhǎng),陽性菌落產(chǎn)生的是白色菌落。(4)陽性重組子進(jìn)行菌落PCR鑒定。(5)液體擴(kuò)大培養(yǎng)。提取質(zhì)粒,測(cè)序。

涂布添加X-gal,IPTG和Amp的平板(五)異源表達(dá)以及蛋白檢測(cè)挑選的白色菌落,擴(kuò)大培養(yǎng),提取質(zhì)粒,測(cè)序。如果測(cè)序?yàn)長(zhǎng)acA則保存菌種(1:5

=甘油:菌種保存于-70℃冰箱。)異源表達(dá):液體培養(yǎng)。大量產(chǎn)生發(fā)酵液。1.異源表達(dá)2.LacA蛋白的分離純化(1)實(shí)驗(yàn)材料準(zhǔn)備-LB培養(yǎng)工程菌并離心收集(2)預(yù)處理-清洗菌體并重懸(3)蛋白質(zhì)粗提-超聲破碎離心(4)蛋白質(zhì)

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