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系統(tǒng)生物學(xué)合成生物學(xué)與轉(zhuǎn)錄組學(xué)詳解演示文稿現(xiàn)在是1頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三優(yōu)選系統(tǒng)生物學(xué)合成生物學(xué)與轉(zhuǎn)錄組學(xué)現(xiàn)在是2頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三合成基因組---Science論文Science

2

July

2010:

Vol.

329.

no.

5987,

pp.

52

-

56Creation

of

a

Bacterial

Cell

Controlled

by

a

ChemicallySynthesized

GenomeDaniel

G.

Gibson,1

John

I.

GlassetalWereportthedesign,synthesis,andassemblyofthe1.08–mega–basepairMycoplasma

mycoidesJCVI-syn1.0genomestartingfromdigitizedgenomesequenceinformationanditstransplantationintoaM.capricolumrecipientcelltocreatenewM.

mycoidescellsthatarecontrolledonlybythesyntheticchromosome.TheonlyDNAinthecellsisthedesignedsyntheticDNAsequence,including"watermark"sequencesandotherdesignedgenedeletionsandpolymorphisms,andmutationsacquiredduringthebuildingprocess.Thenewcellshaveexpectedphenotypicpropertiesandarecapableofcontinuousself-replication.現(xiàn)在是3頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三現(xiàn)在是4頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三合成生命的關(guān)鍵步驟FirstSelf-ReplicatingSyntheticBacterialCell20-May-2010

1)合成供體的基因組DNA:首先,將蕈狀支原體的全基因組測(cè)序,并按照該序列信息將其合成為1078條平均長(zhǎng)度為1080bp的DNA片段。這些片段兩兩間具有80bp的部分重疊,所有片段拼接起來(lái)構(gòu)成蕈狀支原體的全長(zhǎng)基因組。值得注意的是這些合成的片段較天然基因組略有一些改動(dòng),包括去除了14個(gè)不重要的基因、為阻斷基因而設(shè)計(jì)的兩個(gè)插入序列、27處單核苷酸多態(tài)性(其中19處在意料之中)以及4條用來(lái)區(qū)分于天然序列模本的“水印”標(biāo)記(Watermark),這些改動(dòng)都不影響細(xì)胞正常的生命活動(dòng)。該過(guò)程涉及到計(jì)算機(jī)對(duì)合成序列的精密計(jì)算。現(xiàn)在是5頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三2)合成DNA片段的拼接:將以上合成的1078條DNA片段分別連接到載體,使其能在酵母細(xì)胞中通過(guò)同源重組拼接起來(lái)。于是,平均1080bp的DNA片段,10個(gè)一組拼接為大約10kb的片段(109個(gè)),然后將這些連接有目的基因片段的載體從酵母中分離出來(lái),轉(zhuǎn)入大腸桿菌E.coli中進(jìn)行擴(kuò)增,以限制酶篩選出陽(yáng)性克隆;之后再將陽(yáng)性克隆質(zhì)粒中的這109條10kb左右的片段按同樣的方法每組10個(gè)拼接成100kb的片段(11個(gè));這11條片段最終拼接成完整的總共1077947bp的基因組(由于攜帶太大片段的載體在E.coli中不能穩(wěn)定傳代,因此后兩步拼接中采用多重PCR來(lái)篩選陽(yáng)性克隆)。此過(guò)程除了2個(gè)銜接反應(yīng)是在體外用酶處理構(gòu)建,其余所有的片段都是在酵母細(xì)胞內(nèi)依靠同源重組拼接而成?,F(xiàn)在是6頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三3)人工基因組的甲基化修飾:由于供體細(xì)胞(蕈狀支原體)和受體細(xì)胞(山羊支原體)共用同一套限制酶系統(tǒng),而天然的供體基因組是經(jīng)甲基化修飾的。因此,拼接完成的基因組DNA還需在體外用甲基化酶(從蕈狀支原體或山羊支原體提取物中純化)進(jìn)行修飾,以避免受體細(xì)胞限制酶系統(tǒng)的阻礙。4)人工基因組移植入受體細(xì)胞:將構(gòu)建好的人工合成基因組移植入山羊支原體內(nèi)。細(xì)胞經(jīng)過(guò)不斷分裂傳代,具有人造基因組的細(xì)胞在含抗生素的培養(yǎng)基中篩選出來(lái),同時(shí)含有天然DNA的細(xì)胞逐漸消失殆盡。最終只剩下含有山羊支原體細(xì)胞質(zhì)但由合成DNA控制的人工嵌合體細(xì)胞。雖然蕈狀支原體和山羊支原體在基因組上75%是同源的,但該人造細(xì)胞明顯表現(xiàn)出蕈狀支原體的生長(zhǎng)特性?,F(xiàn)在是7頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三合成生命操作圖解

取名

Synthia:人造兒創(chuàng)造這個(gè)可復(fù)制的試驗(yàn)性單細(xì)胞生物花費(fèi)了4,000萬(wàn)美元現(xiàn)在是8頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三人工合成基因組中的水印Thesecretaminoacidmessagescontainedin"watermarks"thatwereembeddedintheworld’sfirstmanmadebacterialgenome.NCBIcheckedintothegeneticsequencesubmittedbyVenter’sInstituteandfoundthewatermarkshiddeninplainsight.ThefivecodedmessagesthatwillgodowninhistoryasembeddedinthefirstsyntheticgenomeVENTERINSTITVTECRAIGVENTERHAMSMITHCINDIANDCLYDEGLASSANDCLYDE代表5個(gè)作者:CraigVenter,HamiltonSmith,JohnGlass,ClydeHutchison現(xiàn)在是9頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三人工基因組組裝與檢測(cè)現(xiàn)在是10頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三合成基因組結(jié)構(gòu)圖現(xiàn)在是11頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Transcriptomics轉(zhuǎn)錄組學(xué)現(xiàn)在是12頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Transcriptome:Anevolvingdefinition(Thepopulationof)mRNAsexpressedbyagenomeatanygiventime(Abbott,1999)轉(zhuǎn)錄組(Transcriptom):細(xì)胞所包含mRNA的總和。與基因組不同的是,轉(zhuǎn)錄組的定義中包含了時(shí)間和空間的限定。轉(zhuǎn)錄組學(xué)(Transcriptomics):研究細(xì)胞在某一功能狀態(tài)下所含mRNA的類(lèi)型與拷貝數(shù);比較不同功能狀態(tài)下mRNA表達(dá)的變化,搜尋與功能狀態(tài)變化緊密相關(guān)的重要基因群。

現(xiàn)在是13頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三新定義Thecompletecollectionoftranscribedelementsofthegenome.(Affymetrix,2004)mRNArRNA,tRNAsnmRNAs(smallnon-messengerRNAs)microRNAsandsiRNAs(smallinterferringRNAs)snoRNAs(smallnucleolarRNAs)核仁小分子RNAsnRNAs(smallnuclearRNAs)Othernon-codingRNAsLongnon-codingRNA(lncRNA)現(xiàn)在是14頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三轉(zhuǎn)錄本All

transcripts

All

mRNAs現(xiàn)在是15頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Transcriptomics

DefinitionThestudyofcharacteristicsandregulationofthefunctionalRNAtranscriptpopulationofacell/sororganismataspecifictime.ScopethepopulationoffunctionalRNA

transcripts.themechanismsthatregulatetheproductionofRNAtranscriptsdynamicsofthetrancriptome(time,celltype,genotype,externalstimuli)現(xiàn)在是16頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三一、轉(zhuǎn)錄組學(xué)研究全部RNA的表達(dá)及功能轉(zhuǎn)錄組(transcriptome)指特定狀態(tài)下一種細(xì)胞或組織所能轉(zhuǎn)錄出來(lái)的所有RNA的總和。——包括編碼RNA,即mRNA和非編碼RNA(non-codingRNA,ncRNA)轉(zhuǎn)錄組學(xué)(transcriptomics):是在整體水平上研究細(xì)胞基因轉(zhuǎn)錄情況及轉(zhuǎn)錄調(diào)控規(guī)律的科學(xué)。RNA組學(xué)(RNomics):是分析、鑒定非信使小RNA(smallnon-messengerRNA,snmRNA)在特定狀態(tài)下表達(dá)情況、功能及其與蛋白質(zhì)的相互作用?,F(xiàn)在是17頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三轉(zhuǎn)錄組的特點(diǎn):受到內(nèi)外多種因素的調(diào)節(jié),因而是動(dòng)態(tài)可變的。能夠揭示不同物種、不同個(gè)體、不同細(xì)胞、不同發(fā)育階段及不同生理病理狀態(tài)下的基因差異表達(dá)信息。現(xiàn)在是18頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三基于測(cè)序:cDNA文庫(kù)、illumina測(cè)序基于雜交:cDNA芯片(GeneChip,microarray)基因表達(dá)聚類(lèi)轉(zhuǎn)錄組學(xué)的研究方法現(xiàn)在是19頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三(一)微陣列是大規(guī)?;蚪M表達(dá)譜研究的早期主要技術(shù)大規(guī)模表達(dá)譜或全景式表達(dá)譜(globalexpressionprofile):是生物體(組織、細(xì)胞)在某一狀態(tài)下基因表達(dá)的整體狀況。微陣列或基因芯片(DNAchip):利用光導(dǎo)化學(xué)合成、照相平板印刷以及固相表面化學(xué)合成等技術(shù),在固相表面合成成千上萬(wàn)個(gè)寡核苷酸探針,并與放射性同位素或熒光物標(biāo)記的來(lái)自不同細(xì)胞、組織或整個(gè)器官的DNA或mRNA反轉(zhuǎn)錄生成的第一鏈cDNA進(jìn)行雜交,然后用特殊的檢測(cè)系統(tǒng)對(duì)每個(gè)雜交點(diǎn)進(jìn)行定量分析?,F(xiàn)在是20頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三SpottedMicroarrayscDNAArraysOligoArrays

InSituOligoSynthesisPhotosynthesisPlanersurfaceMicrofluidicschipE-fieldsynthesisIntegratedChips

IntegrateduF,microarrayanddetectionchipswithPCR,fluorescenceore-detectionMicrofluidicsPlasticsCeramicsSiliconOthermaterials不同的生物芯片技術(shù)平臺(tái)點(diǎn)樣芯片原位合成芯片微流體芯片整合型芯片現(xiàn)在是21頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三基因芯片的探針現(xiàn)在是22頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三TaggedRNAfragmentsflushedoverarrayLaseractivationoffluorescenttagsOpticalscanningofhybridizationintensities基因芯片的雜交實(shí)驗(yàn)現(xiàn)在是23頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Experimentaloverview:HybridizationWashingScancy5channelScancy3channel“Overlayimages”Quantifypixelintensities.CellpopulationACellpopulationBRNAextractionAABBReversetranscriptionAABBKlenowlabelincorporationSampleBlabelledwithcy3dyeSampleAlabelledwithcy5dye現(xiàn)在是24頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Cy3和Cy5Cy3激發(fā)波長(zhǎng)532nmCy5激發(fā)波長(zhǎng)635nm現(xiàn)在是25頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三圖像掃描Cy5Cy3現(xiàn)在是26頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三歸一化現(xiàn)在是27頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三LimitofDetection:1in30,000transcripts

~20transcripts/cellRed–increaseofCy5sampletranscriptsGreen–increaseofCy3sampletranscriptsYellow–equalabundance現(xiàn)在是28頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三差異基因篩選原理:采用cy3/cy5的ratio值對(duì)差異基因進(jìn)行判斷,或采用統(tǒng)計(jì)方法對(duì)差異基因進(jìn)行統(tǒng)計(jì)推斷。方法:倍數(shù)法:cy3/cy5比值大于2或者小于0.5Z值法:Z=(X-μ)/σ

作用:發(fā)現(xiàn)兩個(gè)樣本間的差異表達(dá)基因,便于后續(xù)分析?,F(xiàn)在是29頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三MicroarrayandGeneChipApproachesAdvantages:RapidMethodanddataanalysiswelldescribedandsupportedRobustConvenientfordirectedandfocussedstudiesDisadvantages:ClosedsystemapproachDifficulttocorrelatewithabsolutetranscriptnumberSensitivetoalternativesplicingambiguities現(xiàn)在是30頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三現(xiàn)在是31頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三高通量測(cè)序高通量測(cè)序技術(shù)(High-throughputsequencing)是指能夠一次并行對(duì)幾十萬(wàn)到幾百萬(wàn)條DNA分子進(jìn)行序列測(cè)定,每一次序列測(cè)定的讀長(zhǎng)一般較短的測(cè)序技術(shù)。

高通量測(cè)序技術(shù)是對(duì)傳統(tǒng)測(cè)序一次革命性的改變,一次對(duì)幾十萬(wàn)到幾百萬(wàn)條DNA分子進(jìn)行序列測(cè)定,因此在有些文獻(xiàn)中稱(chēng)其為下一代測(cè)序技術(shù)(nextgenerationsequencing)足見(jiàn)其劃時(shí)代的改變,同時(shí)高通量測(cè)序使得對(duì)一個(gè)物種的轉(zhuǎn)錄組和基因組進(jìn)行細(xì)致全貌的分析成為可能,所以又被稱(chēng)為深度測(cè)序(deepsequencing)。現(xiàn)在是32頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三現(xiàn)在是33頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三高通量測(cè)序中重要名詞解釋1、測(cè)序深度:測(cè)序得到的總堿基數(shù)與待測(cè)基因組大小的比值。假設(shè)一個(gè)基因組大小為7M,測(cè)序總堿基數(shù)為70M,則測(cè)序深度為10×。2、覆蓋度:測(cè)序獲得的序列占整個(gè)基因組的比例。由于基因組中高GC含量,重復(fù)序列等復(fù)雜結(jié)構(gòu)的存在,測(cè)序最終拼接組裝的序列往往無(wú)法覆蓋所有的區(qū)域,這些區(qū)域就叫做Gap。二者的關(guān)系:測(cè)序深度與基因組覆蓋度之間是一個(gè)正相關(guān)的關(guān)系,測(cè)序帶來(lái)的錯(cuò)誤率或假陽(yáng)性結(jié)果會(huì)隨著測(cè)序深度的提升而下降。當(dāng)測(cè)序深度在10~15X以上時(shí),基因組覆蓋度和測(cè)序錯(cuò)誤率控制均得以保證?,F(xiàn)在是34頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三3、RPKM(readsperkilobasepermillionreads)是每百萬(wàn)讀段中來(lái)自于某基因每千堿基長(zhǎng)度的讀段數(shù)。其公式為:

其中,totalexonreads指映射到某個(gè)基因上的reads數(shù),mappedreads指map到所有基因的總的reads數(shù)。RPKM不僅對(duì)測(cè)序深度作了歸一化,而且對(duì)基因長(zhǎng)度也作了歸一化,使得不同長(zhǎng)度的基因在不同測(cè)序深度下得到的基因表達(dá)水平估計(jì)值具有了可比性,是目前最常用的基因表達(dá)估計(jì)方法?,F(xiàn)在是35頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三基于illumina測(cè)序的轉(zhuǎn)錄組分析:

RNA-seq樣品檢測(cè)文庫(kù)制備ClusterStationIlluminaSequencing生物信息分析現(xiàn)在是36頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三TotalRNA樣品檢測(cè)

Agilent2100檢測(cè)OD260/280:1.8~2.2RNA28S:18S≥1.0;RIN≥7

現(xiàn)在是37頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三第一天消化DNAmRNA的分離mRNA的打斷cDNA的合成↓↓第二天末端修復(fù)↓↓加接頭膠回收3’端加A第三天PCRPCR膠回收↓↓

文庫(kù)制備↓↓現(xiàn)在是38頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三cDNA:為具有與某RNA鏈呈互補(bǔ)的堿基序列的單鏈DNA即complementaryDNA之縮寫(xiě)。以mRNA為模板,經(jīng)反轉(zhuǎn)錄酶在體外反轉(zhuǎn)錄成cDNA,與適當(dāng)?shù)妮d體(常用噬菌體或質(zhì)粒載體)連接后轉(zhuǎn)化受體菌,則每個(gè)細(xì)菌含有一段cDNA,并能繁殖擴(kuò)增,這樣包含著細(xì)胞全部mRNA信息的cDNA克隆集合稱(chēng)為該組織細(xì)胞的cDNA文庫(kù)。cDNA文庫(kù)現(xiàn)在是39頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三真核mRNA的純化mRNA的純化主要通過(guò)磁珠吸附原理從而分離純化Oligo(dT)25磁珠純化原理主要是mRNA的3′的polyA與磁珠在bindingbuffer的作用下相結(jié)合。磁珠通過(guò)MPC(磁分離器)從溶液中分離出來(lái)。mRNA與磁珠結(jié)合后,再用Tris-HCL在加熱條件下解離洗脫到溶液中?,F(xiàn)在是40頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三mRNA反轉(zhuǎn)錄純化過(guò)的mRNA樣品加入1μl的fragmentbuffer70℃作用1.5min。加入1μl的stopbuffer終止反應(yīng)。加入沉淀劑(NaAc糖原無(wú)水乙醇)沉淀酶切產(chǎn)物?,F(xiàn)在是41頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三末端修復(fù)cDNA3′末端加AAdapter連接現(xiàn)在是42頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三不同方法比較現(xiàn)在是43頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三OHFlowCell接頭diol

P7

P5

dioldiol模板雜交dioldiol

延長(zhǎng)dioldiol

變性堿基片段雜交現(xiàn)在是44頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三CTAGCTA5’-3’-…-5’GT

合成第一個(gè)堿基Cycle1:按順序加入反應(yīng)試劑

清除未反應(yīng)的堿基和試劑

激發(fā)堿基熒光并收集熒光信號(hào)去除阻斷基團(tuán)和熒光基團(tuán)Cycle2-n: 重復(fù)前面的步驟GTCTAGTCTGCTAGA基于SBS測(cè)序技術(shù)現(xiàn)在是45頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Clusterstation剩下的復(fù)制鏈其一端“固定”在芯片上,另外一端隨機(jī)和附近的另外一個(gè)引物互補(bǔ),被“固定”住,形成“橋”(bridge)。形成的單鏈橋,以周?chē)囊餅閿U(kuò)增引物,在芯片表面進(jìn)行擴(kuò)增,形成雙鏈。雙鏈經(jīng)變性成單鏈,再次形成橋,并作為下一輪擴(kuò)增的模板繼續(xù)擴(kuò)增反應(yīng)。反復(fù)若干輪擴(kuò)增,每個(gè)單分子得到了大量擴(kuò)增,成為單克隆“DNA簇群”?,F(xiàn)在是46頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三生物信息分析現(xiàn)在是47頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三基因表達(dá)聚類(lèi)分析轉(zhuǎn)錄組學(xué)方法的應(yīng)用導(dǎo)致基因表達(dá)數(shù)據(jù)爆炸性增長(zhǎng)。如何對(duì)這些數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,從中提取有意義的生物學(xué)信息,已成為轉(zhuǎn)錄組學(xué)的研究熱點(diǎn)和技術(shù)瓶頸。聚類(lèi)分析技術(shù)能將待處理的對(duì)象分配到相應(yīng)的聚類(lèi)中,使得同一聚類(lèi)中的對(duì)象差別較小,不同聚類(lèi)之間的對(duì)象差別較大。聚類(lèi)分析技術(shù)在轉(zhuǎn)錄組學(xué)研究中,非常適合大批量分析基因群的功能。

現(xiàn)在是48頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三基因表達(dá)聚類(lèi)的數(shù)據(jù)表現(xiàn)Systematicvariationingeneexpressionpatternsinhumancancercelllines.

Nature,2000,Rossetal.現(xiàn)在是49頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三現(xiàn)在是50頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三現(xiàn)在是51頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三有參考基因組序列信息分析流程現(xiàn)在是52頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三Reads在基因組上的分布現(xiàn)在是53頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三基因結(jié)構(gòu)優(yōu)化(Nagalakshmi,U.etal.,2008)

通過(guò)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序鑒定出酵母3’和5’UTR區(qū)域現(xiàn)在是54頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三

鑒定基因可變剪接exon1exon2exon3exon1exon2exon3exon1exon3commonreadsjunctionreadsmRNA現(xiàn)在是55頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三鑒定融合基因現(xiàn)在是56頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三新轉(zhuǎn)錄本預(yù)測(cè)GenomicintergenicregionReadsclusterPairedReadsdistributionPaired-End(PE)Reads現(xiàn)在是57頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三NEngJMed2009SNP分析現(xiàn)在是58頁(yè)\一共有67頁(yè)\編輯于星期三DeepRNAsequencingatsinglebase-pairresolution

revealshighcomplexityofthericetranscriptomeGenomeRes2010RiceTranscriptomeMaterial

callus

rootatseedlingstage(14d)

shootatseedlingstage(14d)

flagleaves(2stages)

panicle(3stages)Methods

RNASeq(paired-end&singleend)

DGE

smallRNA(18-30nt

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