探析體外血管生成三維培養(yǎng)模型的構(gòu)建_第1頁
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文檔簡介

1、探析體外血管生成三維培養(yǎng)模型的構(gòu)建摘要:目的 建立臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEQs的體外血管生成的三維培養(yǎng)模 型。方法 以酶消化法獲得以HUVEC為主的混合細(xì)胞懸液,經(jīng)反復(fù)貼壁法分離 純化HUVEC,s通過免疫細(xì)胞化學(xué)染色鑒定。采用夾心培養(yǎng)法構(gòu)建HUVEC的體外血管生成三維培養(yǎng)模型。結(jié)果HUVECs在膠原凝膠之間,24 h左右血管樣結(jié)構(gòu)的分支之間相互溝通連接形成復(fù)雜的狀結(jié)構(gòu),2d后凝膠內(nèi)的細(xì)胞開始退化,3 d 發(fā)現(xiàn)大部分細(xì)胞出現(xiàn)崩解。24 h凝膠經(jīng)1 E染色可見細(xì)胞索及原始血管腔形成。 結(jié)論成功建立體外血管生成的三維培養(yǎng)模型。夾心培養(yǎng)法是較為成熟的體外血 管生成的三維培養(yǎng)方法,具有操作簡便、三維血

2、管樣結(jié)構(gòu)形成數(shù)量多、絡(luò)結(jié)構(gòu)復(fù) 雜等特點。關(guān)鍵詞:內(nèi)皮,血管;內(nèi)皮細(xì)胞;細(xì)胞,培養(yǎng)的;細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù); 臍靜脈;新生血管化,病理性血管生成即由原有血管出芽生長形成新生血管的過程,血管生成參與多種生理 和病理過程,如發(fā)育、再生、炎癥和腫瘤的生長與轉(zhuǎn)移等 1丄。腫瘤血管生成 已成為當(dāng)前腫瘤研究的熱點,通過抑制腫瘤血管生成進(jìn)行抗腫瘤治療, 被認(rèn)為是 非細(xì)胞毒性治療腫瘤中最具前途的方法之一口 L。內(nèi)皮細(xì)胞的三維培養(yǎng)法是利用血管內(nèi)皮細(xì)胞在三維條件下形成血管狀 結(jié)構(gòu)的特點,模擬體內(nèi)的血管形成過程,是揭示體內(nèi)血管形成的最佳體外模型。 本研究利用分離純化的臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC)選用夾心培養(yǎng)法構(gòu)建體外血 管生

3、成的三維培養(yǎng)模型,目的在于獲得體外三維血管樣結(jié)構(gòu),以便進(jìn)一步在體外 研究血管生成的抑制實驗。這對評估各種影響因素對血管生成的影響具有實際應(yīng) 用價值,并為今后針對腫瘤性血管生成的腫瘤治療方法提供實驗依據(jù)。1 材料與方法材料主要器材及試劑超凈工作臺(HW 山(X),蘇州蘇凈集團(tuán));體積分?jǐn)?shù)為的CO2恒溫培養(yǎng)箱(美國REVC公司);倒置顯微鏡(Olympus CK40日本)、 臺式冷凍高速離心機(jī)(HERMLEBORTECHNZ323K德國);數(shù)顯鼓風(fēng)干燥箱(MBE GZX 907,上海博迅公司);胎牛血清及M199培養(yǎng)液(美國Hyclone產(chǎn)品)、鼠尾 膠、I型或U型膠原酶、胰酶(1 : 250)消

4、化液(美國Sigma公司)、血管內(nèi)皮生 長因子(VEGF美國Peptrotech 公司),鼠抗人單克隆 CD31抗體、CD34抗體、 第毗因子抗體(美國 Santa Cruz公司),UltraSensitiveTM SP 超敏試劑盒(福 州邁新公司)。對象取福建醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院住院育齡健康產(chǎn)婦剖腹產(chǎn)后 的新鮮胎兒臍帶組織,長約 20 cm置于含100卩/mL青霉素、100卩g/mL鏈霉 素的4 C PBS緩沖液中分離純化。方法HUVEC啲分離純化并鑒定酶消化法獲取HUVEC混懸液參照文獻(xiàn)方法。在無菌條件下,將新鮮的胎兒臍帶臍靜脈一端置入已磨平的16號針頭,止血鉗固定,注入PBS緩沖液反復(fù)沖

5、洗至無血跡。止血鉗夾住靜脈另一端,以20 mL的注射器向臍靜脈內(nèi)徐徐注入交原酶溶液,至血管充盈。立即將臍帶放入37 C培養(yǎng)箱內(nèi),1525 min 后取出。松開止血鉗,通過注射器向臍靜脈內(nèi)灌注PBS液,收集流出液置離心管 內(nèi),1 000 r/min 離心10 min。棄上清,以M199完全培養(yǎng)液重新懸浮細(xì)胞,并 接種于預(yù)先以明膠覆蓋的100 mL的玻璃培養(yǎng)瓶內(nèi)。反復(fù)貼壁法純化HUVECs將接種HUVEC混懸液的培養(yǎng)瓶于培養(yǎng)箱 內(nèi)靜置20 min。倒置顯微鏡下觀察見部分細(xì)胞貼壁,稍加搖蕩不浮起,將培養(yǎng) 液連同尚未貼壁的細(xì)胞一起倒入或吸到另一培養(yǎng)瓶中。重復(fù)上述操作23次后,將HUVEC和成纖維細(xì)胞分

6、離開,所得的細(xì)胞混懸液為HUVEC與血液系統(tǒng)細(xì)胞的 混合液。將混合液靜置培養(yǎng),24 h后換液,使用PBS漂洗貼壁生長的HUVEC,s 洗脫懸浮生長的血液系統(tǒng)細(xì)胞,得到純化的HUVECS見到貼壁生長的HUVEC,s 以后隔天換液,待長滿后1 : 23傳代培養(yǎng)。A:4 h左右開始貼壁,形成單層多細(xì)胞集落,細(xì)胞呈梭形(X 100); B:接種培養(yǎng)5 d后細(xì)胞融合生長,并 鋪滿培養(yǎng)瓶底,呈鋪路石狀(X 100); C: HUVEC呈圓形,胞核及核仁清晰可見(X 400)HUVEC啲鑒定 應(yīng)用免疫細(xì)胞化學(xué)染色法檢測 CD31 CD34第毗因子 的表達(dá),使用SP染色法,操作按試劑盒說明書進(jìn)行。用已知標(biāo)準(zhǔn)片

7、作為陽性對 照,同時用PBS替代第一抗體做陰性對照。體外血管生成的三維培養(yǎng)模型的構(gòu)建參照文獻(xiàn)方法加于改良。取7份鼠尾膠溶液、1份10X M199培養(yǎng)液、1份胎牛血清和1份mol/L HEPES液 及終濃度40 ng/mL的VEGF在冰浴下迅速混合成膠原工作液。于 12孔細(xì)胞培 養(yǎng)板每孔加入500卩L,置細(xì)胞培養(yǎng)板于體積分?jǐn)?shù)為的 CO2孵箱約23 h,直到 膠原工作液形成凝膠。取指數(shù)生長期細(xì)胞用培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞濃度成1X 106 mL1細(xì)胞懸液。每孔加入1 mL細(xì)胞懸液,置體積分?jǐn)?shù)為的 CO2孵箱中約12 h,直 到細(xì)胞在膠原凝膠上貼附。吸盡孔內(nèi)培養(yǎng)液,再加入500卩L膠原工作液,置體積分?jǐn)?shù)為的C

8、O2孵箱 23 h,至上層膠原形成凝膠。之后每孔加入 1 mL M199完全培養(yǎng)液,持續(xù)培養(yǎng),倒置顯微鏡下觀察內(nèi)皮細(xì)胞生長情況。培養(yǎng)24 h后,取部分孔板將凝膠進(jìn)行4呦性甲醛固定、脫水、石蠟包埋、水平連續(xù)切片、E染色等處理,顯微鏡下觀察內(nèi)皮細(xì)胞在凝膠中的生長情況??蓳?jù)實驗要求于12孔培養(yǎng)板重復(fù)配制數(shù)孔,便于分組比較。2 結(jié)果原代培養(yǎng)的HUVEC形態(tài)原代培養(yǎng)的HUVEC在4 h左右開始貼壁,形成單層多細(xì)胞集落,細(xì)胞呈梭形;伴隨細(xì)胞迅速生長,集落增大初長出的細(xì)胞 為梭形,一般5d左右融合成片,細(xì)胞互不重疊,呈單層鋪路石狀鑲嵌排列,此 時細(xì)胞呈多角形、梭形或卵圓形;11 E染色時,密集區(qū)細(xì)胞核呈橢圓

9、形,淡藍(lán) 色,密集區(qū)邊緣和稀疏區(qū)的梭形細(xì)胞胞核呈梭形,著色深,呈紫藍(lán)色(圖1)。HUVEC免疫化學(xué)染色鑒定分離純化獲得的HUVEC,鏗CD31CD34第毗因子染色顯示,在細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)有棕黃色顆粒沉著, 三者在內(nèi)皮細(xì)胞均為陽 性表達(dá)(圖2)。體外血管生成的三維培養(yǎng)模型的構(gòu)建情況倒置相差顯微鏡下可見HUVEC在膠原凝膠之間起初呈單個排列,細(xì)胞圓形或卵圓形,隨著培養(yǎng)時間 延長細(xì)胞形態(tài)逐漸發(fā)生改變,伸長成梭形、形成突起,相鄰細(xì)胞突起相互連接, 逐漸從凝膠表面向凝膠內(nèi)遷移,出現(xiàn)少量的由細(xì)胞遷移連接形成的血管樣結(jié)構(gòu), 12 h后血管樣結(jié)構(gòu)數(shù)量增多,并且相互之間出現(xiàn)連接溝通,隨著時間推移,血 管樣結(jié)構(gòu)越趨復(fù)

10、雜,24 h左右血管樣結(jié)構(gòu)的分支之間相互溝通連接形成復(fù)雜的 狀結(jié)構(gòu),2 d后凝膠內(nèi)的細(xì)胞開始退化,3 d發(fā)現(xiàn)大部分細(xì)胞出現(xiàn)崩解。HUVECs 在體外三維培養(yǎng)24 h,凝膠水平連續(xù)切片后行11 E染色,可見到由內(nèi)皮細(xì)胞索 形成的管狀結(jié)構(gòu)(圖3)。A:12 h后,相鄰細(xì)胞突起相互連接,逐漸從凝膠表面向凝膠內(nèi)遷移,細(xì)胞遷移連接形成血管樣結(jié)構(gòu),并且相互之間出現(xiàn)連接溝通; B:24 h,血管樣結(jié)構(gòu)的分支之間相互溝通連接形成復(fù)雜的狀結(jié)構(gòu) ;C:2 d,凝膠內(nèi) 的細(xì)胞開始退化;D:3 d,大部分細(xì)胞出現(xiàn)崩解;E:培養(yǎng)24 h,凝膠水平連續(xù)切 片后行II E染色,可見到由內(nèi)皮細(xì)胞索形成的管狀結(jié)構(gòu)。3 討 論血

11、管內(nèi)皮細(xì)胞的分離和培養(yǎng)在認(rèn)識正常的血管新生和腫瘤血管生成及 血管病理生理等過程中發(fā)揮了關(guān)鍵作用。內(nèi)皮細(xì)胞的體外三維培養(yǎng)模型是模擬及 揭示體內(nèi)血管形成過程的最佳體外模型。血管內(nèi)皮細(xì)胞是位于循環(huán)血液與血管壁內(nèi)皮下組織之間的單層細(xì)胞,具有多種重要的生理功能。本實驗采用的是人 HUVECs它是體外研究血管內(nèi)皮細(xì)胞的重要來源,除具有來源充足、獲取方便、能獲得較多細(xì)胞等優(yōu)點外,與來源 于動物的內(nèi)皮細(xì)胞相比,實驗條件和結(jié)果更符合人體情況。1980年,F(xiàn)olkman等首次觀察到內(nèi)皮細(xì)胞在體外培養(yǎng)體系中具有形成血管樣結(jié)構(gòu)的趨勢,由此揭開了內(nèi)皮細(xì)胞體外三維培養(yǎng)的序幕。Marti ns等證實在三維培養(yǎng)體系與二維培養(yǎng)

12、體 系中內(nèi)皮細(xì)胞的生物學(xué)行為存在著顯著差異,三維培養(yǎng)體系中內(nèi)皮細(xì)胞的生長更類似于體內(nèi)血管生成。近20余年來,內(nèi)皮細(xì)胞的體外三維培養(yǎng)技術(shù)日臻成熟。 體外三維培養(yǎng)技術(shù)主要包括表面培養(yǎng)法、夾心培養(yǎng)法、混合培養(yǎng)法、微載體培養(yǎng) 法以及基質(zhì)內(nèi)細(xì)胞聚集體侵襲法等,這些方法目的相同、價值相似,但選用何種方法在不同的基質(zhì)及條件中有不同的選擇。本實驗所采用的是被廣大學(xué)者所采用的夾心培養(yǎng)法,它操作簡單方便,較適合常規(guī)倒置顯微鏡連續(xù)觀察內(nèi)皮細(xì)胞形態(tài) 改變及遷移、血管樣結(jié)構(gòu)形成的過程,并可借助計算機(jī)輔助技術(shù)進(jìn)行血管樣結(jié)構(gòu) 的數(shù)目及長度的計數(shù)。它為離體細(xì)胞的生長更好的提供三維空間,是在體血管生 成最簡單的模型。本研究所采

13、用的細(xì)胞外基質(zhì)I型膠原是一種比較常用的細(xì)胞外基質(zhì),它可以增強(qiáng)細(xì)胞的貼附性,凝固后形成具有一定的展性的凝膠,用“三明治法”在 其夾心中接種細(xì)胞,可見細(xì)胞的移行和向膠原內(nèi)浸潤,并形成管腔樣結(jié)構(gòu)。這與Ingber等所闡述的理論相符,即內(nèi)皮細(xì)胞包埋在有展性的膠原中可以分化,形 成靜態(tài)管型;而在硬度較大的膠原中只增殖,形成單層細(xì)胞。本實驗顯示,細(xì)胞 接種12 h后相鄰的細(xì)胞伸展、延長進(jìn)而相連形成血管樣結(jié)構(gòu),24 h可見到血管樣結(jié)構(gòu)互相連接形成絡(luò)樣結(jié)構(gòu),但 2d后凝膠內(nèi)的細(xì)胞開始退化,3 d后發(fā)現(xiàn)大 部分細(xì)胞出現(xiàn)崩解,這可能由于凝膠內(nèi)的促血管生長因子如VRGF勺逐漸耗竭以及其他因素的變化有關(guān)。如何延長三維

14、培養(yǎng)模型中形成的復(fù)雜血管樣結(jié)構(gòu)的時間, 對于利用其作為體外血管生成機(jī)制和抗血管生成的研究可能具有更重要的意義, 筆者已在做進(jìn)一步的研究?!緟⒖嘉墨I(xiàn)】Fonsatti E,Altomonte M,Nicotra M R,et al. Endoglin (CD105): apowerfi 1 T.herc.peiT Jctci.rger on tkimor y.ssoci y.ted angiogeni c bl ood vessels .1 I. (Jncogono 20XXs 22:6557 6563.Fonsatti E,Sigalotti L,Arslan P,et al. Emergin

15、g role of endoglin (CD105) as a markerof an gioge nesis with cli ni cal pote ntial in huma nmalignanciesLJL Curr Cancer Drug Targets, 20XXs3(6):427 432.Guerrero Esteo M,Sanchez Elsner T,Letamendia A,et al. Extracellular and cytoplasmic doma ins of en dogli n in teract with the tran sformi ng growth

16、fcidor bdarcccpiors 1 and II Biol Chom, 20XX, 277(32),197 29,209.Takahashi N,Kawa nishi Tabata R,Haba A,et al. Associati on of serum endoglin with metastasis in patients with colorectal, breast, and other solid tumors, and suppressive effect of chemotherapy on the serum eiKloglinr.jL Clin Cancer Ros

17、, 20XX57(3) :524 532.Vailhe B,Vittet D,Feige J J. In vitro models of vasculoge nesis and angiogenesis TIL Lab Invest,:4 45NJeffe E A,Nachman R L,Becher C G,et al. Culture of human en dothelial cells derived from umbilicaleins. Identification by morphologic andhnniunologic criicrialjL Clin Invost, 52:2745 2756.Pepper M S,Ferrara N,Orci L,et al. Potentsyn ergism betwee n vascular en dothelial growth factor and basic fibroblast growth factor in the induction of angiogenesis invitroJ . Bio and Biophy Res Com , 1992,189(2):824.Folkman J,Haudenschild C. Angiogenesis in vitroJ. Nature,1980

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