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文檔簡介

本文格式為Word版,下載可任意編輯——過氧化氫酶km值是多少篇一:過氧化氫酶動力學(xué)常數(shù)測定

測驗工程二、過氧化氫酶的活力和動力學(xué)常數(shù)測定

姓名:

趙家熙指導(dǎo)教師:

譚志文測驗室:

6503組員:①章恒炯②③勞績:

第三片面:測驗記錄與分析一、酶活力測定(一)原始數(shù)據(jù)

1.樣品原始質(zhì)量:5.032g2.標定數(shù)據(jù):

(1)KMnO4質(zhì)量數(shù)及配制:158(2)Na2C2O4質(zhì)量數(shù):134(3)標定數(shù)據(jù):0.02mol/L

(4)KMnO4實際濃度:0.019mol/L3.樣品滴定數(shù)據(jù)

消耗高錳酸鉀溶液(ml):測驗(1)0.65

測驗(2)0.50對照(1)1.45對照(2)1.30

(二)結(jié)果計算

1.換算系數(shù)(1mLKMnO4溶液相當于多少mgH2O2)

1.7

2.樣品酶活計算(每克鮮重樣品1min內(nèi)分解H2O2的毫克數(shù)表示:mgH2O2/g?min)

(A?B)?VT?1.7FW?V1?t酶活(mgH2O2/g·min)=

酶活(mgH2O2/g·min)=0.218

(A-B)=0.8VT=20.25FW=5.032V1=2.5mlt=10min

二、動力學(xué)常數(shù)的測定(一)原始數(shù)據(jù)

(二)求出各管回響前的底物濃度[S]0和回響速度

V0

(三)以1/V0對1/[S]0作圖(用excel作圖)

1/s1/v

200111.1

149.280.6

121.979.3

8045.1

4021.2

(四)求出Km(mol/L)和Vmax(mmol/min)

Km11??vv[S]v如(三)中圖

maxmax

y=0.5572x+1.5829x=0時y=1/Vmax

y=0時x=-1/Km

Km=0.35Vmax=0.63

第四片面:課后研討題

1.總結(jié)本測驗操作過程的留神事項。

1酶的提取和存放一般在0-4℃下舉行。

2每個三角瓶內(nèi)的酶促回響時間要精確操縱在5min。

3各回響瓶的滴定終點微紅色為同一標準。

4使用前應(yīng)檢查滴定管是否滲漏,滴定過程中理應(yīng)保證逐滴參與。

2.影響過氧化氫酶活力測定的因素有哪些?

1、溫度,溫度過高或者過低會降低過氧化氫酶的活性。

2、酸堿度,酸或堿濃度太高會使過氧化氫酶失活。

3.過氧化氫酶與哪些生化過程有關(guān)?

R(Fe2+)+H2O2=R(Fe3++OH-)R(Fe3+OH-)2+H2O2=R(Fe2+)2+2H2O+O2

4.在回響速度的測定中,參與硫酸有哪些作用?

終止回響,為下一步的滴定供給酸的環(huán)境。

5.米氏方程中的Km有何實際應(yīng)用?

米氏常數(shù)是酶促回響速度n為最大酶促回響速度值一半時的底物濃度。可用于判斷回響級數(shù);

判斷是否為不同種酶;

判斷酶的最適底物;

確定酶活性測試時所需底物的濃度。

6.在什么條件下,酶的Km可以作為鑒定酶的一種手段,為什么?

當ν=Vmax/2時,Km=[S]。Km值是酶促回響速度為最大速度一半時的底物濃度。

Km值對某一特定酶來說是個常數(shù)。一半根據(jù)酶的Km值來判斷這些酶是否是完全一致的酶,或是催化同一回響的一類酶。

Km值越大,酶與底物親和力越小;

Km值越小,酶與底物親和力越大。

7.測定酶活力為什么要在進程曲線的初速度時間范圍內(nèi)舉行?

進程曲線是在酶回響的最適條件下采用每隔確定時間測產(chǎn)物生成量的方法,以酶回響時間為橫坐標,產(chǎn)物生成量為縱坐標繪制而成。從進程曲線可知,在曲線起始一段時間內(nèi)為直線,其斜率代表初速度。隨回響時間延長,曲線趨于平坦,斜率變小,說明酶的回響速度下降。回響速度隨回響時間的延長而降低這一現(xiàn)象可能是由于底物濃度的降低和產(chǎn)物濃度的增高致使逆回響加強等理由所致。

8.過氧化氫酶的活力測定還有另外一種方法,即紫外吸收法,原理是H2O2在240nm波長下有猛烈吸收,過氧化氫酶能分解過氧化氫,使

回響溶液吸光度(A240)隨回響時間而降低。根據(jù)測量吸光率的變化速度即可測出過氧化氫酶的活力。請你查閱資料一個應(yīng)用該方法測定過氧化氫酶活力的測驗。

測驗概要

本測驗用紫外吸收法測定了過氧化氫酶的活性。

主要試劑

0.2mol/LpH7.8磷酸緩沖液(內(nèi)含1%聚乙烯吡咯烷酮);

0.1mol/LH2O2(用0.1mol/L高錳酸鉀標定)。

主要設(shè)備

紫外分光光度計;

離心機;

研缽;

250ml容量瓶1個;

0.5ml刻度吸管2支,2ml刻度吸管1支;

10ml試管3支;

恒溫水浴。

測驗步驟

1.酶液提?。悍Q取嶄新小麥葉片或其它植物組織0.5g置研缽中,參與2~3ml4℃下預(yù)冷的pH7.0磷酸緩沖液和少量石英砂研磨成勻漿后,轉(zhuǎn)入25ml容量瓶中,并用緩沖液沖洗研缽數(shù)次,合并沖洗液,并定容到刻度?;旌掀絼?qū)⒘科恐?℃冰箱中靜置10min,取上部澄清液在4000rpm下離心15min,上清液即為過氧化氫酶粗提液。5℃下保存?zhèn)溆谩?/p>

2.測定:取10ml試管3支,其中2支為樣品測定管,1支為空白管,按表依次參與試劑。

表紫外吸收法測定H2O2樣品液配置表

25℃預(yù)熱后,逐管參與0.3ml0.1mol/L的H2O2,每加完一管立刻記時,并急速倒入石英比色杯中,240nm下測定吸光度,每隔1min讀數(shù)1次,共測4min,待3支管全部測定完后,按下式計算酶活性。

篇二:測定過氧化氫酶Km

測驗一過氧化氫酶Km的測定

本測驗測定紅細胞中過氧化氫酶的米氏常數(shù)。過氧化氫酶(CAT)催化以下回響:

?????2H2O+O2↑2H2O2?過氧化氫酶

H2O2濃度可用KMnO4在硫酸存在下滴定測知。

2KMnO4+5H2O2+3H2SO4???2MnSO4+K2SO4+5O2↑+8H2O

求出回響前后H2O2的濃度差即為回響速度。作圖求出過氧化氫酶的米氏常數(shù)。

1.0.05mol/L草酸鈉標準液將草酸鈉(AR)于100~105℃烘12h。冷卻后,

切實稱取0.67g,用水溶解倒入100ml量瓶中,參與濃H2SO45ml,加蒸餾水至刻度,充分混勻,此液可貯存數(shù)周。

2.約0.02mlKMnO4儲存液稱取KMnO43.4g,溶于1000ml蒸餾水中,加熱攪拌,待全部溶解后,用外觀皿蓋住,在低于沸點溫度上加熱數(shù)小時,冷后放置過夜,玻璃絲過濾,棕色瓶內(nèi)保存。

3.0.004mol/LKMnO4應(yīng)用液取0.05mol/L草酸鈉標準液20ml,于錐形瓶中,加濃H2SO4ml,于70℃水浴中用KMnO4貯存液滴定至微紅色,根據(jù)滴定結(jié)果算出KMnO4貯存液的標準濃度,稀釋成0.004mol/L,每次稀釋都務(wù)必重新標定儲存液。

4.約0.08mol/LH2O2液取20%H2O2(AR)40ml于1000.0ml量瓶中,加蒸餾水至刻度,臨用時用0.004mol/LKMnO4標定之,稀釋至所需濃度。

5.0.2mol/L磷酸鹽緩沖液(pH7.0)。

l.血液稀釋吸取嶄新(或肝素抗凝)血液0.1ml,用蒸餾水稀釋至10ml,混勻。取此稀釋血液1.0ml,用磷酸鹽緩沖液(pH7.0,0.2mol/L)稀釋至10ml,得1:1000稀釋血液。

2.H2O2濃度的標定:取清白錐形瓶兩只,各加濃度約為0.08mol/L的H2O22.0ml和25%H2SO42.0ml,分別用0.004mol/LKMnO4滴定至微紅色。從滴定用去KMnO4ml數(shù),求出H2O2的mol濃度。

3.回響速度的測定:取枯燥清白50ml錐形瓶5只,編號,按下表操作。

參與物(ml)H2O2(約0.08mol/L)

蒸餾水

10.503.0

21.002.50

31.502.00

42.001.50

52.501.00

將各瓶置37℃水浴預(yù)熱5min,依次參與1:1000稀釋血液每瓶0.5ml,邊加

邊搖,持續(xù)保溫準5min,按依次向各瓶加25%H2SO42.0ml,邊加邊搖,使酶促回響立刻終止。

結(jié)果用0.004mol/LKMnO4滴定各瓶至微紅色,記錄KMnO4消耗量(ml)。

1.回響瓶中H2O2濃度(mol/L)?

H2O2mol濃度?參與H2O2ml數(shù)

4

?

H2O2mmol數(shù)

4

(式中:4為回響液量4ml)2.回響速度的計算:以回響消耗的H2O2mmol數(shù)表示。

回響速度=參與的H2O2mmol數(shù)-剩余的H2O2mmol數(shù)

即:H2O2mol濃度×參與的毫升數(shù)-KMnO40.004mol/L×消耗的KMnO4毫升數(shù)×5/2(式中:5/2為KMnO4與H2O2回響中mol換算系數(shù))3.求Km值:

下面引用一次測驗結(jié)果為例,求過氧化氫酶的Km值,供計算參考。

己知KMnO4為0.004mo1/L,標定出H2O2濃度為0.08mol/L,列表計算如下:

計算程序

①加人H2O2數(shù)

②加人H2O2mmol=①×0.08③底物濃度[S]=②÷4④酶作用后,KMnO4滴定ml

10.500.040.011.35

21.000.080.023.700.0370.043

31.500.120.036.400.0640.056

42.000.160.049.800.0980.062

52.500.200.0513.200.1320.068

⑤剩余H2O2mmol=④×0.004×5/20.0135⑥回響速度V=②一⑤

0.0265

⑦[S]/V=③÷⑥0.3770.4650.5360.6450.735

按前述方法作圖求得Km=0.032mol/L。

l.Km值的意義是什么?

2.測酶Km值的測驗中,需要更加留神哪些操作?

篇三:酶工程測驗(2022.3)

測驗一過氧化氫酶米氏常數(shù)的測定

一、目的

了解米氏常數(shù)的意義,測定過氧化氫酶的米氏常數(shù)。

二、測驗原理

H2O2被過氧化氫酶分解出H2O和O2,未分解的H2O2用KMNO4在酸性

環(huán)境中滴定,根據(jù)回響前后H2O2的濃度差可求出回響速度。

本測驗以馬鈴薯供給過氧化氫酶,以1/ν~1/[S]作圖求Km

三、測驗器材

1.錐形瓶100~150ml(×6)。

2.吸管1.0ml(×2)、0.5ml(×2)、2.0ml(×2)、5ml(×2)、10.0ml(×1)。

3.溫度計(0~100℃)。

4.微量滴定管5ml(×1)。

5.容量瓶1000ml(×1)。

四、測驗試劑

1、0.02mol/L磷酸緩沖液(Ph7.0)

取磷酸二氫鉀0.68g,加0.1mol/L氫氧化鈉溶液29.1ml,用水稀釋至100ml,即得。

2、酶液:稱取馬鈴薯5g,加上述緩沖液10ml,勻漿,過濾。

3、0.02mol/LKMnO4:稱取KMnO4(AR)3.2g,加蒸餾水1000ml,煮沸15min,2d后過濾,棕色瓶保存。

4、0.004mol/LKMnO4:切實稱取恒重草酸鈉0.2g,加250ml冷沸水及10ml

濃硫酸,攪拌溶解,用0.02ml/L的KMnO4滴定至微紅色,水浴,加熱至65℃,持續(xù)滴定至溶液微紅色并30s不褪,算出KMnO4的切實濃度稀釋成0.004mol/L即可。

5、0.05mol/LH2O2:取30%H2O223ml參與1000ml容量瓶中,加蒸餾水至刻

度(約0.2mol/L),用標準KMnO4(0.004mol/L)標定其切實濃度,稀釋成0.05mol/L(標定前稀釋4倍,取2.0ml,加25%H2SO42.0ml,用0.004mol/LKMnO4滴定至微紅色)。

6、25%H2SO4

五、操作

取錐形瓶6只,按下表依次參與試劑:

表一過氧化氫酶米氏常數(shù)的測定

先加好0.05mol/LH2O2及蒸餾水,加酶液后立刻混合,依次記錄各瓶的起始回響時間。各瓶時間達5min時立刻加2.0ml25%硫酸終止回響,充分混勻。用0.004mol/LKMnO4滴定各瓶中剩余的H2O2至微紅色,記錄消耗的KMnO4體積。

六、計算

分別求出各瓶的底物濃度[S]和回響速度v。

[S]=c1V1/10

式中[S]:底物物質(zhì)的量濃度(mol/L);

c1:H2O2物質(zhì)的量濃度(mol/L);

V1:H2O2體積(ml);

10:回響的總體積(ml);

υ:回響速度(mmol/min);

c2:KMnO4物質(zhì)的量濃度(mol/L);

V2:KMnO4體積(ml);

以1/υ對1/[S]作圖求出Km。

測驗二酶促回響中初速度時間范圍測定

一、測驗?zāi)康?/p>

1.了解酶促回響中初速度時間范圍測定的根本原理;

2.掌管酶促回響中初速度時間范圍的測定方法。

二、測驗原理

酸性磷酸酯酶(acidphosphatase,EC3.1.3.2)廣泛分布于動植物體中,尤其是植物的種子、動物肝臟和人體的前列腺中。它對生物體內(nèi)核苷酸、磷蛋白和磷脂的代謝起著重要作用。

酸性磷酸酯酶能專一性水解磷酸單酯鍵。以人工合成的對硝基苯磷酸酯(4-nitrophenylphosphate,NPP)作底物,水解產(chǎn)生對硝基苯酚和磷酸。在堿性溶液中,對硝基酚的鹽離子于405nm處光吸收猛烈,而底物沒有這種特性。

利用產(chǎn)物的這種特性,可以定量的測定產(chǎn)物的生成量,從而求得酶的活力單位。即通過測定單位時間內(nèi)405nm處光吸收值的變化來確定酸性磷酸酯酶的活性。

酸性磷酸酯酶的一個活力單位是指在酶回響的最適條件下,每分鐘生成1μmol產(chǎn)物所需的酶量。

要舉行酶活力測定,首先要確定酶回響時間。而酶的回響時間理應(yīng)在初速度時間范圍內(nèi)選擇??梢酝ㄟ^進程曲線的制作來求出酶的初速度時間范圍。進程曲線的制作是指在酶回響的最適條件下,采用每隔確定時間測定產(chǎn)物生成量,以酶回響時間為橫坐標,產(chǎn)物生成量為縱坐標繪制而成。從進程曲線可知,在曲線起始的一段時間內(nèi)為直線,其斜率代表初速度。隨著回響時間的延長,曲線趨于平坦,斜率變小,回響速度下降。要真實反映出酶活力大小,就應(yīng)在初速度時間內(nèi)測定。

三、測驗試劑與器材1.試劑

(1)酸性磷酸酯酶原液(從綠豆芽中提?。?)酸性磷酸酯酶液(通過原酶液稀釋得到)

取原酶液,用0.05mol/L、pH5.0檸檬酸鹽緩沖液稀釋,使進程曲線中第11號管吸光度A405在0.6~0.7之間。

(3)1.2mmol/L對硝基苯磷酸酯

精確稱取NPP0.4454g,加緩沖液定容至100mL。

(4)0.3mol/LNaOH溶液2.器材

恒溫水浴槽,可見分光光度計,試管,刻度吸管,離心機。

四、操作步驟

1.酸性磷酸酯

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