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實驗:細(xì)菌基因組DNA的提取制作人:蔡甘露(113516229)于妍(113516230)楊開莉(113516220)杜輝(113516222)主講人:杜輝1精選2021版課件目錄一、實驗?zāi)康亩?、實驗原理三、儀器、試劑四、實驗方法和步驟五、實驗注意事項六、DNA提取常見問題七、問題與討論2精選2021版課件一、實驗?zāi)康膶W(xué)會細(xì)菌基因組DNA的提取方法觀察提取出來的DNA物質(zhì)3精選2021版課件二、實驗原理DNA在生物體內(nèi)是與蛋白質(zhì)形成復(fù)合物的形式存在,因此提取出脫氧核糖核蛋白復(fù)合物后,必須將其中蛋白質(zhì)去除。在堿性條件下,用表面活性劑SDS將細(xì)菌細(xì)胞壁破裂,然后用高濃度的NaCl沉淀蛋白質(zhì)雜質(zhì),經(jīng)過氯仿抽提進(jìn)一步去掉蛋白質(zhì)等雜質(zhì),經(jīng)乙醇沉淀,得到較純的DNA。4精選2021版課件三、儀器、試劑1、儀器
離心管、離心機、試管、吸量管2、試劑(1)活材料:大腸桿菌(E.coli)或枯草桿菌(Bacillussubtilis)(2)培養(yǎng)基:LB液體培養(yǎng)基(3)溶菌酶:100μg/ml(4)裂解液:40mmol/Ltris-HCl,pH8.0,20mmol/L乙酸鈉,1mol/LEDTA,1%SDS5精選2021版課件(5)1%SDS(十二烷基硫酸鈉):1gSDS溶于100ml蒸餾水,滅菌后-4℃保存(6)mol/LNaCl:稱取292.5gNaCl,溶于1000ml蒸餾水,滅菌后-4℃保存。(7)無水乙醇及70%乙醇(8)超純水(9)TE緩沖液:10mmol/LTris-HCl,1mmol/LEDTA-Na2(pH:8.0)(10)飽和酚(11)氯仿:異戊醇(25:1)6精選2021版課件四、實驗方法和步驟1、DNA提取的一般方法破碎細(xì)胞提取純化I.材料準(zhǔn)備II.破碎細(xì)胞或包膜-內(nèi)容物釋放III.核酸分離、純化IV.沉淀或吸附核酸,并去除雜質(zhì)
V.核酸溶解在適量緩沖液或水中7精選2021版課件四、實驗方法和步驟2、DNA提取的實驗步驟菌體培養(yǎng)37℃、16—18h菌體收集12000r/min、30sNaCl充分混勻12000r/min,10min棄上清液200μL裂解緩沖液轉(zhuǎn)移上清置新離心管加Tris飽和苯酚混勻12000rmin,3min取水層加氯仿混勻12000r/min、3min取上層清液加無水乙醇12000r/min、3min棄上清沉淀加400μL70%乙醇洗兩次真空干燥溶解DNA-20℃冰箱8精選2021版課件五、實驗注意事項1、材料應(yīng)適量,過多會影響裂解,導(dǎo)致DNA量少,純度低。2、采用有機(酚/氯仿)抽提時應(yīng)充分混勻,但動作要輕柔。3、離心分離兩相時,應(yīng)保證一定的轉(zhuǎn)速和時間。4、沉淀后應(yīng)用70%的乙醇洗滌,以除去鹽離子等。5、晾干DNA,讓乙醇充分揮發(fā)(不要過分干燥)。9精選2021版課件1、DNA中含有蛋白、多糖、多酚類雜質(zhì)2、DNA在溶解前,有酒精殘留,酒精抑制后續(xù)酶解反應(yīng)3、DNA中殘留有金屬離子1、重新純化DNA,去除蛋白、多糖、多酚等雜質(zhì)2、重新沉淀DNA,讓酒精充分揮發(fā)3、增加70%乙醇洗滌的次數(shù)(2-3次)六、DNA提取常見問題問題一:DNA樣品不純,抑制后續(xù)酶解和PCR反應(yīng)原因?qū)Σ?0精選2021版課件1、材料不新鮮或反復(fù)凍融2、未很好抑制內(nèi)源核酸酶的活性3、提取過程操作過于劇烈,DNA被機械打斷4、外源核酸酶污染5、反復(fù)凍融問題二:DNA降解對策
原因1、盡量取新鮮材料,低溫保存材料避免反復(fù)凍融2、液氮研磨或勻漿組織后,應(yīng)在解凍前加入裂解緩沖液3、在提取內(nèi)源核酸酶含量豐富的材料的DNA時,可增加裂解液中螯合劑的含量4、細(xì)胞裂解后的后續(xù)操作應(yīng)盡量輕柔5、所有試劑用無菌水配制,耗材經(jīng)高溫滅菌6、將DNA分裝保存于緩沖液中,避免反復(fù)凍融11精選2021版課件1、簡要敘述酚氯仿抽提DNA體系后出現(xiàn)的現(xiàn)象及其成因。
酚氯仿抽提DNA后,會使溶液分層,上層為水相,含有DNA;中間為蛋白(有時看不到);下層為有機相。原因是酚氯仿可以使蛋白質(zhì)變性,從而從溶液中析出,但是蛋白密度會小于酚氯仿,所以離心后它分布在中間;而DNA溶于水而不溶于有機相。2、沉淀DNA?xí)r為什么要用無水乙醇?
是因為D
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