DNA重組實(shí)驗(yàn)中常用的技術(shù)電子版本

1、Good is good, but better carries it.精益求精，善益求善。DNA重組實(shí)驗(yàn)中常用的技術(shù)-DNA重組實(shí)驗(yàn)中常用的技術(shù)一、質(zhì)粒DNA的提取及鑒定（一）質(zhì)粒DNA的提取及鑒定1收獲細(xì)菌（1）將2ml含相應(yīng)抗生素的LB液體培養(yǎng)基加入到通氣良好的15ml的試管中，接入一單菌落，于37劇烈振蕩培養(yǎng)過(guò)夜。（2）將1.5ml培養(yǎng)物倒入1.5mlHYPERLINK/consumables/list.asp?sortid=7&typeid=88t_blank離心管中，用臺(tái)式離心機(jī)于4以12000g離心5min，將剩余的培養(yǎng)物貯存于4。（3）吸盡培養(yǎng)液，使細(xì)菌沉淀盡可能干燥。2堿裂解

2、法小量抽提質(zhì)粒（1）將細(xì)菌沉淀上述步驟（3）所得重懸于100l預(yù)冷的溶液（50mmol/L葡萄糖，25mmol/lTrisHClpH8.0,10mmol/LEDTA）中，劇烈振蕩。（2）加200l新配制的溶液（0.2mol/lNaOH,1%SDS），緩和振蕩，水浴5min。（3）加150l預(yù)冷溶液（50mol/LKAC60ml,冰乙酸11.5ml,水28.5ml），緩和振蕩，冰浴5min。（4）4以12000g離心5min，將上清轉(zhuǎn)移到另一HYPERLINK/consumables/list.asp?sortid=7&typeid=88t_blank離心管中。（5）可作不可作：加等量飽和酚，氯

3、仿，振蕩混勻，重復(fù)2，（4）。（6）用2倍體積無(wú)水乙醇室溫沉淀雙鏈DNA，振蕩混合，于室溫放置2min。（7）4以12000g離心5min。（8）小心吸盡上清液，將HYPERLINK/consumables/list.asp?sortid=7&typeid=88t_blank離心管倒置于一張紙巾上，再將附于管壁的液滴除盡。（9）用75%乙醇于4洗滌DNA，同上離心去上清真空抽干。（10）加50l的1TE（含20g/ml無(wú)DNA酶的胰RNA酶），振蕩，貯存于-20。（二）質(zhì)粒DNA的大量制備（1）同上1.（1）（2）將1ml含菌液倒入含相應(yīng)抗生素的Lb100ml中，37振蕩培養(yǎng)至A590=1.0

4、(56h)。（3）加氯霉素（170g/ml）擴(kuò)增，37溫箱中培養(yǎng)過(guò)夜。（4）收集菌液于離心管中，冰浴10min。3000rpm,離心10min，去上清。（5）加溶液5ml懸浮菌體，將懸液倒入高速離心管中，搖勻，冰浴5min。（6）加溶液10ml輕輕混勻，室溫下5min。（7）加溶液7.5ml輕輕混勻，冰浴30min。15000rpm，4離心20min。（8）取上清液于高速離心管中，加2倍體積的無(wú)水乙醇，混勻，入-2035h。（9）15000rpm4離心20min。（10）棄上清，將離心管倒放入真空泵中抽干（1015min）。（11）用5ml1TE溶解，加入RNaseA1520l，42水浴4h于

5、過(guò)夜。（12）加入5ml飽和酚，混勻，40005000rpm離心5min，取上清液入5ml離心管內(nèi)。（13）分別加入2.5ml飽和酚，2.5ml氯仿，混勻后同樣離心收集上清。（14）加等體積氯仿/異戊醇（24：1）混勻，同樣離心收集上清。（15）加入1/10體積的3mol/lNaAc及2倍體積的無(wú)水乙醇于-2035h。（16）10000rpm4離心20min。（17）棄上清，加入75%乙醇洗滌2次。（18）離心棄上清，真空抽干，加入適量1TE溶解質(zhì)粒DNA。（三）質(zhì)粒DNA的鑒定1酶切反應(yīng)（1）在0.5mlEppendorf管中加重蒸水6l，10Buffer1l，DNA2l，酶1l，混勻，37

6、水浴1h以上。（2）取反應(yīng)物點(diǎn)樣，觀察酶切效果。（3）酶切完全后，705min終止反應(yīng)。2瓊脂糖電泳（1）配制所需濃度瓊脂糖凝膠。（2）在待測(cè)的DNA樣品中加1/5體積的溴酚藍(lán)指示劑，混勻后點(diǎn)樣。（3）打開(kāi)電源開(kāi)關(guān)，5V/cm電泳。（4）在UV燈下觀察電泳結(jié)果。二、DNA的重組（一）DNA的酶切與連接（1）酶切反應(yīng)同質(zhì)粒DNA的鑒定，只不過(guò)是質(zhì)粒DNA換為HYPERLINK/reagent/list.asp?sortid=8載體DNA。若大量酶切，則成比例增加。（2）加2倍體積的預(yù)冷無(wú)水乙醇和1/10體積的3mol/lNaAc混勻，-202h以上。（3）15000rpm離心15min，棄上清。

7、（4）加入75%乙醇洗滌2次，離心棄上清，真空抽干。（5）加入適量1TE溶解。如此可得線性化HYPERLINK/reagent/list.asp?sortid=8載體DNA。（6）測(cè)定DNA的含量。（7）加入線性HYPERLINK/reagent/list.asp?sortid=8載體DNA和含量34倍于載體的待插入DNA片段，連接緩沖液及T4連接酶適量至總體積為20l，在1214反應(yīng)1216h。（8）連接反應(yīng)液可置-20保存，供轉(zhuǎn)化用。（9）關(guān)于待插入DNA片段的獲得參見(jiàn)附注。（二）大腸桿菌感受態(tài)的制備及重組DNA的轉(zhuǎn)化1感受態(tài)的制備（1）接種單菌落于2mlLB培養(yǎng)液中，37過(guò)夜。（2）取0

8、.25ml過(guò)夜菌入25mlLB培養(yǎng)液中，37振搖46h至A590=0.40.6。（3）倒入50ml管內(nèi)，水浴10min，以25003000rpm離心5min，棄上清。（4）緩慢加入75mmol/L預(yù)冷CaCl25ml懸浮菌體，冰浴20min，同上離心棄上清。（5）緩慢加入75mmol/L預(yù)冷CaCl21.0ml輕輕混勻后分裝在1.5mlEppendorf管中，每管200l，冰浴12h。2重組DNA的轉(zhuǎn)化（1）將3只Eppendorf管按下列轉(zhuǎn)化項(xiàng)目作好標(biāo)記，然后按下述進(jìn)行：轉(zhuǎn)化項(xiàng)目受體菌DNA總體積DNA對(duì)照組010l200l受體菌對(duì)照組200l0200l轉(zhuǎn)化組190l10l200l（2）冰浴

9、30min至1h。中間搖動(dòng)3次，以防受體菌沉底。（3）4290s。（4）37水浴5min。（5）加入無(wú)相應(yīng)抗生素的Lb200l，混勻后，37水浴3060min。（6）分別取3組反應(yīng)物各50l在含相應(yīng)抗生素的固體LB培養(yǎng)基平皿上涂布，室溫下干燥，然后倒置于37溫箱中培養(yǎng)過(guò)夜。（三）轉(zhuǎn)化子DNA的快速鑒定快速細(xì)胞破碎法（1）挑取轉(zhuǎn)化平板上的單菌接種于含相應(yīng)抗生素的2mlLB中，37振蕩培養(yǎng)至A590值為0.60.8。（2）取1ml菌液至1.5mlEppendorf管中，9000rpm離心9min，去盡上清。（3）加入70lCrackingGel緩沖液1mol/LTrisHCl(pH6.8)10ml

10、,20%SDS10ml,250mmol/LEDTA1.6ml,蔗糖27.2g,1.2%溴酚藍(lán)1.67ml，加雙蒸水至200ml，混勻后，37水浴30min以上。（4）15000rpm離心15min。（5）吸取上清點(diǎn)樣電泳，觀察。（四）轉(zhuǎn)化子DNA的酶切鑒定1轉(zhuǎn)化子DNA的快速少量抽提（1）同本節(jié)二.（三）.1.（2）菌液移至5mlEppendorf管中，9000rpm,離心9min，去上清。（3）加溶液100l，溶液200l，溶液150l，混勻，冰浴10min。（4）15000rpm離心15min。（5）吸取上清，加入異丙醇1ml混勻，置室溫1530min。（6）15000rpm離心15min

11、，棄上清，加入75%乙醇洗滌2次。（7）離心棄上清，真空抽干，加入適量1TE溶解DNA。（8）取少量DNA電泳，觀察濃度。2轉(zhuǎn)化子DNA的小量酶切鑒定同質(zhì)粒DNA的小量酶切鑒定，見(jiàn)本節(jié)一（三）。（五）重組子DNA的進(jìn)一步鑒定可用Southern印跡雜交法或斑點(diǎn)雜交法等進(jìn)一步鑒定，詳見(jiàn)本節(jié)四。附電泳洗脫法回收酶切DNA片段（1）用合適的酶切割DNA并電泳。（2）于紫外燈下從凝膠上切下所要的DNA帶，裝入含1TBE緩沖液的透析代內(nèi)，用夾子封好袋口，并檢查有無(wú)漏孔。（3）將透析袋（縱長(zhǎng)）與兩極間的邊線垂直放于電泳槽內(nèi)電泳，45V/cm電泳至DNA貼緊袋壁。（4）取出透析袋，擠出凝膠塊，吸出袋內(nèi)液體放

12、入1.5ml的離心管內(nèi)，10000rpm離心5min。（5）吸出上清放入離心管內(nèi)，加入等體積的飽和酚和等體積的氯仿，振蕩混勻，10000rpm離心5min，吸出上清放入新的離心管內(nèi)。（6）加入1/10體積的3mol/LAaAc,2倍體積預(yù)冷的無(wú)水乙醇，于-20放置45h。（7）于4，10000rpm離心15min，棄上清。（8）用75%的酒精洗滌2次，每次均于4，10000rpm離心5min，棄上清。（9）真空抽干，并用適量1TE溶解沉淀。如此即得所需DNA片段。三、地高辛配基隨機(jī)標(biāo)記DNA探針?lè)ǎㄒ唬└攀龌蛟\斷是以核酸分子雜交技術(shù)為基礎(chǔ)，在核酸水平檢測(cè)人類遺傳性疾病的基因缺陷和一些傳染病病

13、原體的方法。其基本過(guò)程是：制備DNA探針，標(biāo)記探針，檢測(cè)樣本。開(kāi)展這項(xiàng)工作的關(guān)鍵是要得到高靈敏度、高特異性的探針。以往人們是用放射性同位素來(lái)標(biāo)記探針DNA。近年來(lái)，非同位素標(biāo)記方法發(fā)展很快，已有取代同位素標(biāo)記法的趨勢(shì)。地高辛配基隨機(jī)標(biāo)記DNA探針?lè)?，是較為成功的一種非同位素標(biāo)記方法。其原理是：用化學(xué)方法把類固醇類半抗原地高辛分子連接在dUTP上（Dig-dUTP）。用隨機(jī)引物及DNA多聚酶，以探針DNA為模板，合成互補(bǔ)DNA，化學(xué)修飾過(guò)的dUTP同時(shí)摻入到標(biāo)記的DNA探針中。雜交后用堿性磷酸酶標(biāo)記的抗地高辛單抗與標(biāo)記探針DNA中的Dig-dUTP結(jié)合，加入顯色底物，在堿性磷酸酶作用下，轉(zhuǎn)變成深

14、棕色或藍(lán)色的化合物。1標(biāo)記本HYPERLINK/reagent/t_blank試劑盒采用隨機(jī)引物標(biāo)記方法，可標(biāo)記少至10ng，多至3g的DNA。能在新合成的DNA鏈每2025個(gè)核苷酸，摻入一個(gè)Dig-dUTP，反應(yīng)時(shí)間約為1h。2雜交按標(biāo)準(zhǔn)雜交方法進(jìn)行?？梢圆捎媚猃埬せ蛳跛崂w維素膜。用過(guò)的雜交液可凍存于-20，重復(fù)使用。3免疫學(xué)檢測(cè)封阻后，檢測(cè)反應(yīng)的第一步，抗體結(jié)合物與標(biāo)記DNA結(jié)合，出現(xiàn)雜交的半抗原-標(biāo)記DNA，顯色反應(yīng)起始是在堿性pH條件下加入無(wú)色的顯色劑X-磷酸鹽和NBT，在幾分鐘內(nèi)便開(kāi)始出現(xiàn)藍(lán)色，顯色反應(yīng)的過(guò)程持續(xù)3d。典型的例子是在24h后終止顯色反應(yīng)。用二甲基甲酰胺洗掉尼龍膜上的顏

15、色后，尼龍膜可重新用于雜交。4應(yīng)用地高辛配基標(biāo)記DNA探針及檢測(cè)試劑盒，能檢測(cè)0.1pg的同源DNA，能檢測(cè)1g哺乳動(dòng)物DAN中的單拷貝基因，與放射性標(biāo)記系統(tǒng)比較，此試劑盒能快速得到實(shí)驗(yàn)結(jié)果（從DNA的標(biāo)記和雜交至見(jiàn)到檢測(cè)結(jié)果24h內(nèi)能完成），而且消除了放射性的不安全問(wèn)題。這試劑的靈敏度與特異性使它適用于所有的雜交技術(shù)（包括DNA-印跡轉(zhuǎn)移，菌落雜交，噬菌斑雜交及原位雜交）以替代同位素標(biāo)記和放射自顯影術(shù)。（二）試劑盒成份1無(wú)標(biāo)記對(duì)照DNA1此管內(nèi)有20lpBR328DNA100g/ml,pBR328分別用BamH,BgltHinf消化，它們的混合比例為2：3：3，共有16個(gè)Pbr328片段，這

16、些片段的大小分別為：4907，2176，1766，1230，1033，653，517，453，298，234，234，220和1542bp。2無(wú)標(biāo)記對(duì)照DNA2此管內(nèi)有20lpBR328DNA200g/ml，已用EcoR線性化。3DNA稀釋緩沖液有兩管，每管1ml成分為：Tris-HCl(10mmol/L),EDTA(1mmol/L),pH8.0(20)內(nèi)含鮭魚(yú)精DNA（50g/ml）。4標(biāo)記對(duì)照DNA此管內(nèi)有50l線性化pBR328DNA，按標(biāo)記方法已標(biāo)記有地高辛配基dUTP,含20g模板DNA，每毫升含5g合成的標(biāo)記DNA。5六聚核苷酸混合物6標(biāo)記用混合底物此管內(nèi)有50l10倍濃度的dNT

17、P標(biāo)記用混合底物，含dATP（1mmol/L）dCTP(1mmol/L),dGTP(1mmol/L),dTTP(0.65mmol/L)和Dig-dUTP(0.35mmol/L),pH6.5(20)。7DNA聚合酶大片段（標(biāo)記級(jí)）此管內(nèi)有25lDNA聚合酶大片段（Klenow），2U/l。8（Dig）AP結(jié)合物此管內(nèi)有200l多克隆羊抗地高辛配基Fab-片段，結(jié)合有堿性磷酸酶750U/ml。9NBT有兩管，每管1.25ml，是溶于70%（V/V）二甲基甲酰胺的硝基藍(lán)四唑鹽溶液（75mg/ml）。10X-磷酸鹽有兩管，每管0.9ml，是溶于二甲基甲酰胺的5-溴-4-氯-3-吲哚磷酸鹽的甲苯胺溶液（

18、50mg/ml）。11封阻試劑有兩瓶，每瓶有50g粉劑。（三）需配制的溶液EDTA（0.2mol/L）,pH8.0(20);LiCl(4mol/L);70%(V/V)乙醇；Tris-HCl(10mmol/L);EDTA(1mmol/L),pH8.0(20);10%(V/V)N-十二烷基肌氨酸鈉鹽；10%（V/V）SDS；20SSC：3mol/lNaCl;0.3mol/L檸檬酸三鈉；pH7.0Tris-HCl(100mmol/L);NaCl(150mmol/L);pH7.5TrisHCl(100mmol/L);NaCl(100mmol/L);MgCl2(50mmol/L)pH9.5(20)。（四

19、）操作方法1標(biāo)記DNA探針每次標(biāo)準(zhǔn)的反應(yīng)可標(biāo)記10ng至3g線性的DNA，也可標(biāo)記更大量的DNA，但所有的成分和體積要相應(yīng)增加。（1）DNA探針熱變性，煮沸10min，迅速冷卻于冰/乙醇中5min以上，待用。（2）取Eppendorf管（1.5ml）置于冰上，加下列及試劑：新鮮變性的DNA1-3g六聚核苷酸混合物2l（管5）dNTP標(biāo)記用混合底物2l（管6）加無(wú)菌重蒸水至19lDNA聚合酶大片段（Klenow）1l（管7）（3）在37保溫至少60min，可到20h。（4）煮沸5min，終止反應(yīng)。（5）15000rpm離心30s，置于冰上待用。2預(yù)雜交按100cm2膜用2040ml預(yù)雜交溶液，預(yù)

20、雜交時(shí)使溶液處于流動(dòng)狀態(tài)。預(yù)雜交液組成：5SSC0.5%（W/V）封阻試劑（管11）0.1%（W/V）N-十二烷酰肌氨酸鈉0.02%（W/V）SDS膜放入塑料袋，灌入預(yù)雜交液，排除氣體后密封，在65預(yù)雜交過(guò)夜。3雜交按100cm2膜用2.5ml雜交液，雜交時(shí)偶爾搖動(dòng)雜交袋，使里面的溶液重新分配。雜交液組成：50%甲酰胺（V/V）5%（W/V）封阻試劑5SSC0.1（W/V）N-十二烷酰肌氨酸鈉002%(W/V)SDS新變性標(biāo)記DNA（150ng/ml）雜交液取代預(yù)雜交液，替換間膜不能干，成功地替換應(yīng)是膜與塑料袋間形成一層雜交液膜。于42雜交過(guò)夜（1620h）。4洗膜按100cm2膜用250ml

21、洗膜液計(jì)算。（1）在室溫下用2SSC/0.1%（W/V）SDS溶液漂洗，5min，2次。（2）在65條件下用0.1SSC/0.1%SDS溶液漂洗，10min，2次。（3）在室溫下用2SSC溶液漂洗1次。5免疫測(cè)定（1）配制溶液緩沖液1：Tris-HCl(100mmol/L);NaCl(150mmol/L)pH7.5(20）緩沖液2：0.5%(W/V)封阻試劑(管11),配制于緩沖液1中(封阻試劑不會(huì)快速溶解,因此應(yīng)預(yù)早1h前配制此溶液,將試劑溶于5070,此溶液保持混濁)。緩沖液3：Tris-HCI(100mmol/L);NaCI(100mmol/L);MgCI2(500mmol/L)pH9.

22、5(20)。緩沖液4：Tris-HCl(10mmol/l);EDTA(1mmol/L);pH8.0(20)顯色溶液：新鮮配制，在10ml緩沖液3中，加45lNBT溶液（管9）和35lX-磷酸鹽緩沖液（管10）。2顯色過(guò)程A膜在緩沖液1中短暫洗滌（1min）。B在100ml緩沖2中保溫30min。C再用緩沖液1短暫洗滌。D.用緩沖液1稀釋的抗體結(jié)合物(管8)至150U/L(1:5000);稀釋后的抗體結(jié)合物在4只能穩(wěn)定12h。E.膜在20ml稀釋的抗體結(jié)合物溶液中保溫30min。F.用100ml緩沖液1洗膜,以除去未結(jié)合的抗體結(jié)合物,15min,2次。G.膜在緩沖液3中平衡2min。H.在黑暗條

23、件下,膜與10ml顯色溶液放入塑料袋內(nèi)密封或放入合適的盒子內(nèi),幾分鐘內(nèi)開(kāi)始出現(xiàn)顏色,一般顯色反應(yīng)在1天后全部完成。當(dāng)顏色顯影時(shí)，不可振蕩或攪拌。I當(dāng)要求的點(diǎn)或帶已被檢測(cè)時(shí)，可用50ml緩沖液4洗膜5min終止反應(yīng)。J攝相。說(shuō)明：上述各反應(yīng)均在室溫下進(jìn)行，除了顯色反應(yīng)外，均需振蕩或攪拌。（五）排除實(shí)驗(yàn)中問(wèn)題的方法1DNA不能有效地被標(biāo)記時(shí)考慮（1）用酚/氯仿抽提和/或乙醇沉淀，重新純化DNA。（2）標(biāo)記反應(yīng)的保溫時(shí)間延長(zhǎng)（增至20h）。（3）DNA變性或許不完全，這時(shí)對(duì)大片段DNA特別重要。2不能達(dá)到預(yù)期的靈敏度時(shí)考慮（1）DNA標(biāo)記率。（2）增加標(biāo)記DNA的濃度或增加雜交時(shí)間。（3）顯色反應(yīng)的

24、時(shí)間可延長(zhǎng)至3d。3若顯色時(shí)背景過(guò)深，可采?。?）在雜交溶液中減少標(biāo)記DNA量。（2）增加雜交溶液的體積，使膜隨意漂浮在溶液中。（3）某些類型的尼龍膜可能產(chǎn)生深色背景，因此可采用其它類型的尼龍膜或改用硝酸纖維素膜。（4）在雜交和檢測(cè)過(guò)程中增加封阻試劑的濃度。四、核酸的分子雜交核酸分子的固相雜交是將待測(cè)核酸樣品結(jié)合在某種固相支持物上，然后與溶液中的標(biāo)記探針進(jìn)行雜交。目前使用最多的固相支持物是硝酸纖維膜。這里重點(diǎn)介紹直接點(diǎn)樣技術(shù)，轉(zhuǎn)移技術(shù)及其它常用的雜交技術(shù)。（一）斑點(diǎn)雜交的直接點(diǎn)樣法斑點(diǎn)雜交或叫打點(diǎn)雜交（dot-blothybridization），其主要特點(diǎn)是事先不用限制內(nèi)切酶消化或用凝膠電泳

25、分離核酸樣品，操作簡(jiǎn)便，靈敏度高。一個(gè)點(diǎn)樣品只含0.251pg的DNA也能檢測(cè)到。但不知道雜交片段的大?。▔A基對(duì)數(shù)）。1DNA的打點(diǎn)法（DNaDotBlot）（1）膜的處理：戴上干凈手套，取出硝酸纖維膜，按需要剪成一定大小，量好各樣點(diǎn)間距離，用軟鉛筆標(biāo)記。（2）DNA變性：將DNA溶液于1TE（pH8.0）緩沖液中或蒸餾水中，取一定量DNA樣品加于小塑料管中，在100沸水中煮10min，迅速入冰水中。（3）點(diǎn)樣：用塑料或硅化玻璃或微量加樣器取15l變性DNA，將滴管放在硝酸纖維膜上，使DNA慢慢吸在濾膜上，點(diǎn)樣完后涼干。（4）固定：將涼干的濾膜夾在濾紙中，于80干烤23h，然后進(jìn)行雜交。2RN

26、A的打點(diǎn)法（RNaDotBlot）（1）膜的處理：同DNA的打點(diǎn)法。（2）RNA變性：將提取的RNA與50l20SSC/甲醛（30l20SSC加20l甲醛）混合，65水浴15min。（3）點(diǎn)樣：同DNA的打點(diǎn)法。（4）固定：同DNA的打點(diǎn)法。（二）DNA的吸印轉(zhuǎn)移法（SouthernBlot）DNA經(jīng)過(guò)限制性內(nèi)切酶消化和凝膠電泳后，放入堿性溶液中使其變性，將變性后的單鏈DNA從凝膠中按原來(lái)位置和順序用濾紙吸印轉(zhuǎn)移到硝酸纖維膜上，然后再與標(biāo)記探針雜交。此方法比較準(zhǔn)確地保持了特異DNA序列在電泳圖譜中的位置，而且能測(cè)定分子量。試劑：變性液：0.5mol/LNaOH,1.5mol/LNaCl中和液：

27、1mol/lTris-HCl,1.5mol/LNaClpH8.020SSC:0.3mol/L檸檬酸鈉，3mol/lNaCl1電泳取DNA約5g加限制性內(nèi)切酶進(jìn)行酶切，電泳鑒定酶切完全后，取酶消化后的DNA點(diǎn)樣于0.8%1.2%的凝膠上，以0.81V/cm電壓電泳過(guò)夜，在溴酚藍(lán)離凝膠前緣0.5cm處停止電泳。將電泳后的凝膠翻轉(zhuǎn)，紫外燈照射1020min后拍照。2變性與中和將電泳后的凝膠放入變性液中25振蕩60min。蒸餾水洗膠1min，將凝膠放入中和液中25振蕩60min。3轉(zhuǎn)移取托盤(pán)一只，放入10SSC溶液約5001000ml，托盤(pán)上搭一塊比凝膠稍寬的長(zhǎng)方形玻璃，取一長(zhǎng)方形Watemanpap

28、er（濾紙）搭在橋上，兩邊浸入10SSC溶液中，仔細(xì)去掉玻璃與濾紙之間的氣泡（用玻棒在濾紙上滾動(dòng)）。將凝膠放在濾紙上，去掉凝膠與濾紙之間的氣泡。將硝酸纖維膜放入2SSC溶液中浸濕后放在凝膠上（如NC膜浸濕不均勻，則考慮更換NC膜，操作時(shí)手切勿觸及NC膜），去掉凝膠與NC膜之間的氣泡。將一張濾紙（長(zhǎng)和寬均比NC膜小1mm）放在NC膜上，仔細(xì)去掉氣泡。將吸水紙切成與濾紙大小，重疊放在濾紙上，再壓一重物約5001000g。轉(zhuǎn)膜24h，中間更換吸水紙。圖23-7Southern轉(zhuǎn)膜示意圖4固定用2SSC溶液洗膜5min去掉殘余凝膠，讓膜自然涼干。將凝膠放入EB液中30min，取出在UV燈下觀察是否有D

29、NA殘余。80烤膜2h，然后將膜封入塑料袋進(jìn)行雜交。（三）RNA的吸印轉(zhuǎn)移法（Northernblot）在RNA凝膠電泳之前，先用乙二醛等變性劑處理RNA，再在適宜條件下電泳使充分變性的RNA直接吸印到硝酸纖維膜上。固定后除去變性劑，然后進(jìn)行雜交。試劑：乙二醛：4mol/L（約為30%），經(jīng)過(guò)陰陽(yáng)離子交換樹(shù)脂純化，使pH為5.56.0磷酸緩沖液：80mmol/LpH6.57.0磷酸緩沖液：10mmol/LpH6.57.0Tris-HCl:20mmol/LpH7.8二甲基亞砜：分析純20SSC：0.3mol/L檸檬酸鈉，3mol/lNaCl1.RNA變性吸取1l80mmol/L磷酸緩沖液，1lR

30、NA樣品（最多100g），2l，4mol/l乙二醇，4l二甲基亞砜。混勻后，50水浴1h，然后放入冰中。2電泳變性結(jié)束后，加入含有50%甘油的10mmol/L磷酸緩沖液2l和少量溴酚藍(lán)，混勻后點(diǎn)樣于1.0%的凝膠上，以45V/cm電壓電泳。凝膠電泳液為10mmol/L磷酸緩沖液，pH6.57.0。3轉(zhuǎn)移變性處理后的RNA可以轉(zhuǎn)移并結(jié)合到硝酸纖維膜上，轉(zhuǎn)移過(guò)程和轉(zhuǎn)移變性與DNA相同。4固定用20SSC轉(zhuǎn)移RNA。膜夾在兩層干凈濾紙中涼干后，80烤膜2h5乙二醛附加物消除RNA膜固定后，放入20mmol/lTris-HCl中，100處理510min，去除乙二醛，然后進(jìn)行雜交。（四）硝酸纖維膜固相雜

31、交核酸樣品經(jīng)過(guò)直接點(diǎn)樣或轉(zhuǎn)移到硝酸纖維膜上，固定后，可以進(jìn)行雜交反應(yīng)。在雜交溶液中，硝酸纖維膜上變性的核酸樣品和變性后的探針在一定的條件下形成雙鏈雜交核酸分子。然后進(jìn)行酶標(biāo)顯色。試劑及操作方法見(jiàn)本節(jié)三。五、真核細(xì)胞HYPERLINK/biology/postgenomics/t_blank基因組DNA的制備從不同組織細(xì)胞或血細(xì)胞中提取DNA是進(jìn)行基因診斷的先決條件。制備DNA的原則是既要將蛋白質(zhì)、脂類、糖類等物質(zhì)分離干凈，又要保持DNA分子的完整。蛋白酶K的應(yīng)用使這兩個(gè)原則得到了保證。在提取DNA的反應(yīng)體系中，SDS是離子型表面活性劑，主要作用是：（1）溶解膜蛋白而不破壞細(xì)胞膜；（2）解聚細(xì)胞

32、中的核蛋白；（3）與蛋白質(zhì)結(jié)合，使蛋白質(zhì)變性而沉淀下來(lái)。蛋白酶K可將蛋白降解成小的多肽和氨基酸，使DNA分子盡量完整地分離出來(lái)。具體方法如下：（一）白細(xì)胞DNA的制備（1）采集外周靜脈血10ml，加1.7mlACD（檸檬酸0.48g、檸檬酸鈉1.32g、葡萄糖1.47g、加水至100ml,0.6kg/cm2滅菌30min）抗凝。（2）將血液放入已滅菌的50ml塑料離心管內(nèi)，加30mlSTMT0.32mol/L蔗糖、10mmol/lTris-HCl(pH7.5)、5mmol/LMgCl2、1%TritonX100，輕輕上下振蕩至透明，紅細(xì)胞完全溶解。（3）冰浴10min，離心，3000rpm，1

33、0min。棄上清，STMT重復(fù)處理13次。（4）棄上清，白色沉淀物加10mlSTE0.1mol/LNaCl、10mmol/lTris-HCl(pH8.0)、1mmol/LEDTA(pH8.0)，先少量，充分混勻，然后加10mg/ml蛋白酶K100l，20%SDS30l，搖勻，置37水浴1520h。（5）用等體積飽和酚抽提，3000rpm離心5min。（6）用大口鈍緣吸管小心吸取上層水相，加飽和酚和氯仿-異戊醇（24：1）抽提，3000rpm離心5min。（7）小心吸取上層水相，用等體積氯仿-異戊醇（24：1），抽提，3000rpm離心5min。（8）小心吸取上層水相，加入1/10體積3mol/

34、lNaAc,2.5體積預(yù)冷無(wú)水乙醇混勻，-20過(guò)夜。（9）將白色絮狀沉淀物用玻璃棒挑出，放入Eppendorf管內(nèi)，加1ml75%乙醇4靜置1h，離心，10000rpm10min。（10）棄上清，用蠟?zāi)⒐芸诜夂茫槾虜?shù)個(gè)小孔，真空抽提（1015min）。（11）加200l1TE溶解，置4保存。（12）對(duì)所提DNA用紫外分光光度計(jì)進(jìn)行定量和純度檢測(cè)。（13）取24lDNA樣品，經(jīng)瓊脂糖凝膠（Agarose）電泳，檢查所提DNA的質(zhì)量及降解情況。（二）組織DNA的制備（1）將200mg組織在冰浴條件下用消毒剪刀充分剪碎，加4ml1RSB緩沖液（10mmol/LTris,pH7.4;10mmol/

35、lNaCl;25mmol/LEDTA,pH7.4）放入10ml帶蓋的塑料管中。（2）加SDS至濃度為1%（可加0.4ml10%SDS），混勻。由于DNA從核中釋放出來(lái)，樣品變得粘稠。（3）加10mg/ml蛋白酶k44l，終濃度為100l/ml，37保溫13d，直到組織完全解體。中間可振動(dòng)樣品管幾次。加0.4ml5mol/LNaCl。（4）用等體積飽和酚、1/2體積飽和酚和1/2體積氯仿-異戊醇及等體積氯仿-異戊醇（24：1）各抽提一次，3000rpm離心5min，用大口鈍緣吸管小心吸取上層水相。（5）加2.5倍體積預(yù)冷無(wú)水乙醇沉淀DNA。用一玻璃棒收集白色纖維絲狀的大片段DNA，并移入一新管，

36、吸干DNA中的無(wú)水乙醇。（6）DNA溶于4ml0.1SSC中，4過(guò)夜可作進(jìn)一步純化。（7）加20lRNaseA(10mg/ml),37保溫5h。加0.4ml5mol/LNaCl。（8）同上法用飽和酚、氯仿-異戊醇抽提，乙醇沉淀離心，棄上清。（9）75%乙醇洗滌2次，離心，棄上清，真空抽干。適量1TE溶解，保存在4。六、轉(zhuǎn)移基因最常用的將克隆重組的DNA片段導(dǎo)入哺乳動(dòng)物細(xì)胞的方法是用磷酸鈣介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染的DNA可能是通過(guò)吞飲作用進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)，然后進(jìn)行細(xì)胞核。（1）配制下列溶液2HEPES-緩沖鹽溶液（HBS）2mol/LCaCl20.1TE(pH8.0)用0.22m濾器過(guò)濾除菌，分裝貯存于4。D

37、NA：將DNA（約20g/106細(xì)胞）溶于0.1TE（pH8.0），使用濃度為40g/ml。為使轉(zhuǎn)化效率達(dá)到最高，質(zhì)粒DNA應(yīng)用CsCl-溴化乙錠密度梯度平衡離心法純化。如果所用DNA量較少，應(yīng)加入載體DNA將DNA濃度調(diào)至40g/ml。實(shí)驗(yàn)室制備的真核載體DNA轉(zhuǎn)染效率通常要比商品化的牛胸腺DNA、鮭魚(yú)精DNA高。載體DNA用前應(yīng)通過(guò)乙醇沉淀或氯仿抽提進(jìn)行滅菌。（2）轉(zhuǎn)染前24h用胰蛋白酶進(jìn)行消化以獲得對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞，以12105細(xì)胞/cm2的密度重新種入60mm組織培養(yǎng)皿中。在37、5%7%CO2及一定濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2024h。（3）每轉(zhuǎn)染一個(gè)60mm培養(yǎng)皿中的單層細(xì)胞，須依如下方法

38、制備磷酸鈣-DNA共沉淀物：取步驟一所制備的DNA40g/ml，溶于0.1TE(pH8.0)220l,2HBs250l,放入一次性使用的滅菌5ml塑料管中，緩慢加入31l2mol/l氯化鈣（溫和混合30s左右）。于室溫育2030min，其間將形成細(xì)小沉淀。溫育結(jié)束時(shí)，用吸管將混合液吹打一次，使沉淀物懸浮。通常采用的另一方案是將氯化鈣和DNA的稀釋混合液加入2HBS溶液中，逐滴加入并小心混合250l按步驟一制備并溶于氯化鈣（250mmol/L）的DNA。按照前述方法溫育之。如果需要轉(zhuǎn)染更為大量的細(xì)胞，上述兩種反應(yīng)混合液的體積均可翻一番或翻兩番。如果體積翻兩番，則須使用更大的塑料管，一般在25cm

39、2HYPERLINK/reagent/search.asp?txtitle=細(xì)胞培養(yǎng)細(xì)胞培養(yǎng)瓶或60mmHYPERLINK/consumables/list.asp?sortid=3&typeid=21t_blankHYPERLINK/reagent/search.asp?txtitle=細(xì)胞培養(yǎng)細(xì)胞培養(yǎng)皿上，可將0.5ml磷酸鈣-DNA共沉淀物加入5ml培養(yǎng)液中，而在90mmHYPERLINK/consumables/list.asp?sortid=3&typeid=21t_blankHYPERLINK/reagent/search.asp?txtitle=細(xì)胞培養(yǎng)細(xì)胞培養(yǎng)皿上，一般將1ml

40、沉淀物加入10ml培養(yǎng)液中。已經(jīng)發(fā)表的方案中，混合各組分的方式與速率大不相同。其中有一些認(rèn)為除了溫和振搖之外，其它措施均無(wú)濟(jì)于事，并建議用電動(dòng)移液裝置吹出的空氣來(lái)混合溶液。其它一些方案則規(guī)勸在加入DNA溶液時(shí)連續(xù)而緩慢地混勻，然后再溫和振蕩。其目的是為了避免急速形成粗沉淀物，以致降低轉(zhuǎn)化效率。實(shí)際上，除了混合的速度之外，還有其它若干因素包括DNA的濃度和大?。ㄗ尭叻肿恿緿NA從細(xì)針頭中通過(guò)，可將之剪切變?。⒕彌_液的精確pH（有些工作者配制了幾批pH范圍從6.95至7.1不等的HBS緩沖液，逐批試驗(yàn)沉淀物的質(zhì)量及轉(zhuǎn)染效率）。如果必須使轉(zhuǎn)染效率達(dá)到最高，就要花時(shí)間針對(duì)特定的系統(tǒng)優(yōu)化上述幾種因素。

41、一旦得到一批靈驗(yàn)的試劑，只需依照前面方法進(jìn)行配制和貯存，即可在長(zhǎng)期內(nèi)獲得可重復(fù)的結(jié)果。（4）將磷酸鈣-DNA懸液轉(zhuǎn)移至細(xì)胞單層上的培養(yǎng)液中在60mm培養(yǎng)皿中，可將0.5ml懸液加入5ml培養(yǎng)液中，輕輕左右晃動(dòng)一下培養(yǎng)皿使培養(yǎng)液得以混合，此時(shí)可見(jiàn)培養(yǎng)液成黃橙色渾濁狀。另一方法是吸出培養(yǎng)液，直接把沉淀物加到細(xì)胞上，將細(xì)胞置于室溫溫育15min，然后再將培養(yǎng)液加回到培養(yǎng)皿中，此時(shí)細(xì)胞上有許多細(xì)小顆粒。采用以上兩種方法，都要在37、5%7%CO2及一定濕度的培養(yǎng)箱中將轉(zhuǎn)染細(xì)胞培養(yǎng)長(zhǎng)達(dá)24h時(shí)間的長(zhǎng)短取決于后續(xù)處理步驟的不同，見(jiàn)步驟（5）。（5）然后，轉(zhuǎn)染細(xì)胞可依以下任一種方法處理：如果不進(jìn)行其它處理（如用氯喹、甘油或丁酸鈉等試劑處理，見(jiàn)后），可在細(xì)胞培養(yǎng)1624h后，吸出培養(yǎng)液和沉淀物，用PBS將單層細(xì)胞再洗一次。然后按下述d操作。在許多情況下，同時(shí)用氯喹處理細(xì)胞，可提高DNA攝入率。氯喹可能是通過(guò)抑制溶酶體水解