薜荔籽中果膠的提取和測定方法和測定方法畢業(yè)設計

常州工學院學士學位論文PAGE目錄第一部分設計任務與調(diào)研…………第二部分設計說明………………………第三部分設計成果……………………第四部分結(jié)束語…………第五部分致謝…………第六部分參考文獻…………………

第一部分設計任務與調(diào)研果膠是人體七大營養(yǎng)素中膳食纖維的主要成分，具有良好的凝膠性和乳化穩(wěn)定性，在食品工業(yè)中應用廣泛，也是醫(yī)藥和化妝品工業(yè)不可缺少的輔料?？勺鳛楣u凍類、冰淇淋及果汁的穩(wěn)定劑、乳化劑和增稠劑。果膠是鉛、汞和鈷等金屬中毒的良好解毒劑和預防劑，果膠及果膠的鋁鹽可抑制腸道對膽固醇和三酸甘油酯的吸收，可用作動脈硬化等心血管疾病的輔助治療。果膠主要是從植物組織中提取的，常用的方法有鋁鹽鹽析法、離子交換法、微生物法等。超聲波是頻率高于人耳所能聽到頻率范圍的聲波，頻率一般在20KHz以上。超聲波在水中傳播，可以產(chǎn)生能釋放巨大能量的激化和突發(fā)，即“空化效應”。超聲“空化效應”可以產(chǎn)生高達數(shù)百個大氣壓的局部瞬間壓力，形成沖擊波，使固體表面及液體介質(zhì)受到極大沖擊力，從而破碎細胞，這是超聲應用于果膠原料破壁的理論基礎。畢業(yè)設計主要的任務是了解薛荔瘦果中果膠提取的目地及現(xiàn)狀；果膠提取常用方法；薛荔中果膠提取的工藝；薛荔中果膠提取的研究方法。我會采用超聲波提取法，利用超聲波具有的機械效應，空化效應和熱效應，通過增大介質(zhì)分子的運動速度、增大介質(zhì)的穿透力以提取生物有效成分。超聲波提取法提取率高、提取時間短、提取溫度低、適用廣、提取藥液雜質(zhì)少，有效成分易于分離、純化提取工藝運行成本低，綜合經(jīng)濟效益顯著；操作簡單易行，設備維護、保養(yǎng)方便。

第二部分設計說明主要學會了使用常用的分析儀器，學習了超聲波提取法提取和測定薜荔耔果膠的基本流程。主要過程如下：采用超聲波提取法提取薜荔耔果膠的基本工藝流程如下：設計思路薜荔瘦果(除雜過篩)→薜荔籽(加水)→超聲輔助提取→離心→上清液→真空干燥→稱重(果膠含量測定)→提取率計算提取步驟稱取薜荔殼粉20g，薜荔籽粉20g，按液固比為28:1ml/g，加入560ml蒸餾水，聲輔助提取。離心：六支離心管內(nèi)沉淀均為25g，轉(zhuǎn)速為4000r/min，離心20min，取上清液。干燥：將果膠放入已恒重的培養(yǎng)皿中，置于電熱恒溫鼓風干燥箱中，55℃下干燥5h。3、標準曲線的制作：準確稱取分析純G.A0.0500g,用蒸餾水溶解后定容于50mL容量瓶中(濃度1mg/ml),于6個5mL容量瓶中分別吸取此液O、1、2、3、4、5mL,配成0、20、40、60、80、100mg/ml。取6支比色管分別加入上述溶液1ml，然后各加入6ml濃硫酸,用自來水邊加邊冷卻至室溫后,各加入0.30mL0.15%咔咔唑無水乙醇溶液,搖勻。在室溫下暗處放置1.5h,在540nm處測吸光度(A)，以試劑空白作參比,繪制標準曲線。樣品測定：準確稱取0.035一0.040g果膠粉于50mL燒杯中,加入10mL0.5mol濃硫酸，15mL水,攪勻,在75℃水中水解15min，冷卻至室溫后定容于50mL容量瓶中。然后,準確移取5.00mL該液于另一50mL容量瓶,稀釋至刻度。標準稀釋液的測定。

第三部分設計成果超聲波提取薜荔果膠的工藝操作要點：過篩：將挑揀除雜質(zhì)后的薜荔籽20目、40目過篩除去花瓣，然后置于85℃烘箱中干燥，至水分含量為8％左右，備用。稱取：稱取薜荔殼粉20g，薜荔籽粉20g，按液固比為28:1ml/g，加入560ml蒸餾水超聲提?。撼暡üβ蕿?00W、提取40min離心：六支離心管內(nèi)沉淀均為25g，轉(zhuǎn)速為4000r/min，離心20min，取上清液。干燥：將果膠放入已恒重的培養(yǎng)皿中，置于電熱恒溫鼓風干燥箱中，55℃下干燥5h3.1.5低溫水萃取法提取薜荔耔果膠的基本工藝流程：薜荔瘦果(除雜過篩)→薜荔籽(加水)→加熱浸提(濾布)→過濾→乙醇沉淀→離心→乙醇洗滌(沉淀)→干燥→稱重(果膠含量測定)→提取率計算操作要點：提?。悍Q取薜荔粉20g，按液固比為28:1ml/g，加入560ml蒸餾水，于65℃水浴鍋中加熱，提取60min，將提取完的果膠水溶液過120目濾布，再用玻璃棒擠壓濾布至干為止。濃縮：將過濾后的果膠溶液置于60℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀內(nèi)濃縮。沉淀：按體積比為1:2加入95%乙醇沉淀，冷卻置于4℃冰箱中靜置過夜。離心：六支離心管內(nèi)沉淀均為25g，轉(zhuǎn)速為4000r/min，離心20min，將上清液倒棄，加入濃度為78%乙醇并進行第二次離心。干燥：將果膠放入已恒重的培養(yǎng)皿中，置于電熱恒溫鼓風干燥箱中，55℃下干燥5h。3.1.6計算公式式中：Ml一干燥后果膠的重量(g)Mo一容器重量(g)M2一薜荔籽重量(g)3.1.7標準曲線的制作準確稱取分析純G.A0.0500g,用蒸餾水溶解后定容于50mL容量瓶中(濃度1mg/ml),于6個5mL容量瓶中分別吸取此液O、1、2、3、4、5mL,配成0、20、40、60、80、100mg/ml。取6支比色管分別加入上述溶液1ml，然后各加入6ml濃硫酸,用自來水邊加邊冷卻至室溫后,各加入0.30mL0.15%咔咔唑無水乙醇溶液,搖勻。在室溫下暗處放置1.5h,在540nm處測吸光度(A)，以試劑空白作參比,繪制標準曲線。3.1.8樣品測定準確稱取0.035～0.040g果膠粉于50mL燒杯中,加入10mL0.5mol濃硫酸，15mL水,攪勻,在75℃水中水解15min，冷卻至室溫后定容于50mL容量瓶中。然后,準確移取5.00mL該液于另一50mL容量瓶,稀釋至刻度。標準稀釋液的測定。計算公式：式中：c為從標準曲線查得的所測果膠液中G.A的濃度(mg/l)，W為果膠粉質(zhì)量(g)。根據(jù)不同果實果膠G.A的含量不同,可換算出相應果實中果膠的含量。選題新穎、獨特，選取很少有人研究的薜荔作為研究對象，同時具有一定的實用性，為藤本植物的開發(fā)利用提供了一定的指導意義。

第四部分結(jié)束語1、初次接觸這個畢業(yè)設計題目的時候，感覺滿頭霧水，不知所措。解決方案：經(jīng)廣泛的查閱相關資料，尋求指導老師、同學的幫助之后，大概了解了這個實驗，開始有了一些眉目。2、最開始聽到薜荔中果膠的提取和測定方法時，感覺是個很復雜的設計，之前從沒有過相似的接觸，深入了解之后發(fā)現(xiàn)其實不是想象中的那么難，但是問題在于可以利用的資料有限。解決辦法：了解相關的基本原理之后再查閱相關的資料，然后確定設計方案。

第五部分致謝我歷時將近兩個月時間終于把這篇論文寫完了，在這段充滿奮斗的歷程中，帶給我的學生生涯無限的激情和收獲。在論文的寫作過程中遇到了無數(shù)的困難和障礙，都在同學和老師的幫助下度過了。在校圖書館查找資料的時候，圖書館的老師給我提供了很多方面的支持與幫助，尤其要強烈感謝我的論文指導老師，沒有他對我進行了不厭其煩的指導和幫助，無私的為我進行論文的修改和改進，就沒有我這篇論文的最終完成。在此，我向指導和幫助過我的老師們表示最衷心的感謝！同時，我也要感謝本論文所引用的各位學者的專著，如果沒有這些學者的研究成果的啟發(fā)和幫助，我將無法完成本篇論文的最終寫作。至此，我也要感謝我的朋友和同學，他們在我寫論文的過程中給予我了很多有用的素材，也在論文的排版和撰寫過程中提供熱情的幫助！金無足赤，人無完人。由于我的學術水平有限，所寫論文難免有不足之處，懇請各位老師和同學批評和指正！

第六部分參考文獻[1]唐翠娥.薜荔籽果膠的提取工藝及其性質(zhì)研究[D].南昌:南昌大學,2007.[2]張小玲.果膠的咔哇硫酸分光光度測定法研究[J].甘肅農(nóng)業(yè)大學學報,1999,34（1）：75-78.[3]董姐,郭立瑋,文紅梅,劉佳等.中藥水提液中果膠含量測定方法研究[J].現(xiàn)代中藥研究與實踐,2007,21(5):39