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文檔簡介
誘變物質(zhì)的微核試驗實驗十一、十二實驗原理
微核(Micronucleus,MN):當(dāng)染色體受到損傷后,染色單體或染色體的無著絲粒斷片,或因紡錘體受損而丟失的整個染色體,在細(xì)胞分裂后期,仍然游離在細(xì)胞質(zhì)中。末期之后,單獨形成一個或幾個規(guī)則的次核,被包含在子細(xì)胞的胞質(zhì)內(nèi),因比主核小,故稱為微核。微核試驗(Micronucleustest,MNT)
:凡能使染色體發(fā)生斷裂或使染色體和紡錘體聯(lián)結(jié)有損傷的化學(xué)物,都可用微核試驗來檢測。各種類型的骨髓細(xì)胞都可形成微核,但有核細(xì)胞的胞質(zhì)少,微核與正常核葉及核的突起物難以鑒別。所以多用無主核的細(xì)胞來進(jìn)行微核試驗。嗜多染紅細(xì)胞(polychromaticerythrocyte,PCE):是分裂后期,處于幼年紅細(xì)胞向成熟紅細(xì)胞發(fā)展中間階段的一群紅細(xì)胞。此時的紅細(xì)胞主核已排出,但因胞質(zhì)內(nèi)含有核糖體,用姬姆薩染色呈灰藍(lán)色;成熟紅細(xì)胞的核糖體已消失,則被染成橘紅色;而幼紅細(xì)胞則有較大的核,且被染成紫紅色。骨髓中嗜多染紅細(xì)胞數(shù)量充足,微核被染成紫紅色或藍(lán)紫色,很容易辨認(rèn),而且微核自發(fā)率低。因此,骨髓中嗜多染紅細(xì)胞成為微核試驗的首選細(xì)胞群。成熟紅細(xì)胞嗜多染紅細(xì)胞幼紅細(xì)胞嗜多染紅細(xì)胞微核實驗?zāi)康?、了解微核發(fā)生的機(jī)制;2、掌握微核實驗的一般程序和實踐意義;3、掌握對實驗動物進(jìn)行藥物處理的一般程序、方法和注意事項;4、掌握進(jìn)行實驗設(shè)計的一般程序和規(guī)則,學(xué)會用生物統(tǒng)計學(xué)方法對實驗結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計分析,并鍛煉實踐能力。儀器和器械
離心機(jī)、生物顯微鏡、解剖剪刀、鑷子、注射器、尖底刻度離心管、載玻片、蓋玻片、塑料吸瓶、吸水紙等。試劑及配制
(1)小牛血清(滅活)
將濾菌的小牛血清置于56℃恒溫水浴保溫30min滅活。滅活的小牛血清通常保存于冰箱冷凍室里。
(2)姬姆薩(Giemsa)染液(原液)
成分:Giemsa染料3.8g、甲醇 375mL、甘油125mL。
配制:將染料和少量甲醇于乳缽里仔細(xì)研磨,再加入甲醇至375mL和125mL甘油,混合均勻,放置37℃恒溫箱中保溫48h。保溫期間,振搖數(shù)次,促使染料充分溶解,取出后過濾,兩周后使用。(3)0.1mol/L磷酸鹽緩沖液(pH6.8)成分:磷酸氫二鈉(Na2HPO4·12H2O)71.64g/L(A液)
磷酸二氫鈉(NaH2PO4
·2H2O)31.21g/L(B液)分別加蒸餾水1000mL配成A、B液;取A液51ml,B液49ml混合,再加入100ml蒸餾水混勻,即為pH6.8的0.1mol/L磷酸緩沖液。(4)Giemsa應(yīng)用液取2mlGiemsa染液原液與40ml0.1mol/L磷酸鹽緩沖液混合而成。臨用現(xiàn)配。實驗動物:
小鼠是微核試驗的常規(guī)動物。體重一般為25g~35g(也可選用成年大鼠,體重為150g~200g)。正常小鼠嗜多染紅細(xì)胞自發(fā)微核頻率為2.6‰,陽性物(一般用環(huán)磷酰胺150mg/kg體重劑量)對照組微核頻率為30.4‰。(斑馬魚微核頻率范圍為0.25‰
~1.2‰
)劑量分組:
每種受試藥物一般至少設(shè)3個劑量。每個劑量組5-10只動物。另外,還應(yīng)設(shè)溶劑對照(陰性對照)和陽性物對照組。常用環(huán)磷酰胺作為陽性物對照,劑量可為40mg//kg體重(或150mg/kg體重)。如用斑馬魚(體重約0.5g,體長2.8~3.0cm
)測試水體污染物誘導(dǎo)微核的實驗,則陽性對照物為氟化鈉(NaF),劑量為30mg/kg。一般為腹腔或腹部皮下注射。受試物:秋水仙素,對苯二酚,氯化汞(以往實驗設(shè)計)受試物劑量mg/Kg組別各受試小鼠1000個受檢細(xì)胞中含微核細(xì)胞數(shù)1234567對苯二酚1201802403秋水仙素1015213氯化汞312213陰性對照蒸餾水陽性對照環(huán)磷酰胺(40mg/kg)受試物:秋水仙素,對苯二酚,氯化汞(本次實驗設(shè)計)受試物(濃度)劑量mg/30g/只組別各受試小鼠1000個受檢細(xì)胞中含微核細(xì)胞數(shù)1234567對苯二酚(1.2mg/ml)240(0.2ml)1480(0.4ml)2720(0.6ml)3秋水仙素(0.1mg/ml)20(0.2ml)440(0.4ml)560(0.6ml)6氯化汞(0.03mg/ml)6(0.2ml)112(0.4ml)218(0.6ml)3陰性對照蒸餾水0(0.2ml)7陽性對照(200mg/ml)環(huán)磷酰胺40(0.2ml)8染毒途徑和方式
染毒途徑視實驗?zāi)康亩?,常用腹腔注射?4小時取材。
試驗方法(1)骨髓的制取
①用斷頸法處死小鼠。用剪刀剪開腿部的皮膚,用鑷子夾住小鼠的股骨,剪去股骨周圍的肌肉,將小鼠的兩股骨取出(注意股骨的完整性),擦凈股骨上的肌肉。去股骨的髖面,將吸有0.85%Nacl生理等滲液小注射器的針頭插入,反復(fù)數(shù)次吹出骨髓細(xì)(注意吹干凈)。反復(fù)吹打使其混合均勻,制成細(xì)胞懸液。
②將細(xì)胞懸液在1000轉(zhuǎn)/分離心5分鐘,棄除上清液。(2)涂片在離心管中加入少量滅活的小牛血清(約0.3ml)混勻后,按血常規(guī)涂片法涂片,長度約2cm~3cm(涂片時一次涂成)。在空氣中晾干。(3)固定
將干燥的涂片放入無水甲醇液(或甲醇:冰乙酸=3:1的固定液)中固定5~10
min。即使當(dāng)日不染色,也應(yīng)固定后于冰箱中保存。(4)染色
將固定過的涂片放入Giemsa應(yīng)用液中,染色20min~30min,然后立即用0.1mol/L磷酸鹽緩沖液沖洗。(5)封片
用濾紙及時擦干染片背面的水滴,再用雙層濾紙輕輕按壓染片,以吸附染片上殘留的水分,再在空氣中晃動數(shù)次,以促其盡快晾干,然后放入二甲苯中透明5min,取出滴上適量光學(xué)樹脂膠,蓋上蓋玻片,寫好標(biāo)簽。(6)觀察與計數(shù)
先用低倍鏡,后用高倍鏡粗略檢查,選擇細(xì)胞分布均勻,細(xì)胞無損,著色適當(dāng)?shù)膮^(qū)域,再在油浸鏡下計數(shù)。雖然不計數(shù)含微核的有核細(xì)胞(主要為幼紅細(xì)胞),但需用形態(tài)和染色完好的有核細(xì)胞來做判斷制片優(yōu)劣的標(biāo)準(zhǔn)。
選擇細(xì)胞完整、分散均勻,著色適當(dāng)?shù)膮^(qū)域,在油鏡下觀察;以有核細(xì)胞形態(tài)完好作為判斷制片優(yōu)劣的標(biāo)準(zhǔn),計數(shù)1000個嗜多染紅細(xì)胞中有微核的細(xì)胞數(shù)。
本法系觀察嗜多染紅細(xì)胞的微核。用Giemsa染色法,嗜多染紅細(xì)胞呈藍(lán)灰色,成熟紅細(xì)胞呈粉紅或橘紅色。典型的微核多為單個的、圓形、邊緣光滑整齊,嗜色性與核質(zhì)一致,呈紫紅色或藍(lán)紫色,直徑通常為紅細(xì)胞的1/20~1/5。也有兩個及多個微核的細(xì)胞。微核率每只動物計數(shù)1000個嗜多染紅細(xì)胞(也可以4個同學(xué)為一個小組,每位同學(xué)計數(shù)250個細(xì)胞),最后合并計算嗜多染紅細(xì)胞數(shù)中含有微核的細(xì)胞數(shù)。微核率一般以“千分率”(‰)表示。
數(shù)據(jù)處理
利用統(tǒng)計學(xué)軟件SPSS的單因素方差分析或t檢驗等方法,進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,分析實驗結(jié)果(如下表)。
組別劑量動物數(shù)受檢細(xì)胞數(shù)含微核細(xì)胞數(shù)微核率P值(g/kg體重)(只)(個)(個)(‰)受試物
溶劑對照
陽性物對照(mg/kg體重)
例表:對苯二酚對動物骨髓嗜多染紅細(xì)胞的微核發(fā)生率組別劑量動物數(shù)受檢細(xì)胞數(shù)含微核細(xì)胞數(shù)微核率P值
(g/kg體重)(只)(個)(個)(‰)受試物120
對苯二酚8040溶劑對照(蒸餾水)陽性對照環(huán)磷酰胺
(mg/kg體重)50實驗報告為設(shè)計性綜合性報告(交打印稿),內(nèi)容包括:(1)受試物名稱、配制方法、所用溶劑;(2)
動物種屬和品系、體重、數(shù)量、性別、來源;(3)劑量分組,染毒途徑和方式;(4)試驗方法:簡述操作步驟,所用統(tǒng)計學(xué)方法,結(jié)果判定標(biāo)準(zhǔn);(5)結(jié)果:以列表方式報告受試物對動物骨髓細(xì)胞微核發(fā)生率;(6)結(jié)論。要求參閱的文獻(xiàn):
[1]孟紫強(qiáng),阮愛東,桑楠等.SO2污染對小鼠骨髓嗜多染紅細(xì)胞微核的誘發(fā)作用.環(huán)境科學(xué),2002,23(4)123-125.[2]孟紫強(qiáng),桑楠,張波等.二氧化硫體內(nèi)衍生物誘發(fā)小鼠骨髓嗜多染紅細(xì)胞微核的效應(yīng).環(huán)境科學(xué)學(xué)報,2000,20(2
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