
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1、載體構(gòu)建一、原理依賴于限制性核酸內(nèi)切酶,DNA連接酶和其他修飾酶的作用,分別對(duì)目的基因和載體DNA進(jìn)行適當(dāng)切割和修飾后,將二者連接在一起,再導(dǎo)入宿主細(xì)胞,實(shí)現(xiàn)目的基因在宿主細(xì)胞內(nèi)的正確表達(dá)。二、操作步驟1、搖菌(制作感受態(tài)細(xì)胞備用) 取裝有液體培養(yǎng)基的3ml試管兩支(依情況而定),每管加40-100l菌種,過(guò)夜搖。2、提質(zhì)粒(也就是載體) 依照提質(zhì)粒試劑盒中的說(shuō)明書操作(根據(jù)情況最后一步洗脫時(shí)可以多洗1-2次)。3、酶切(雙酶切產(chǎn)生粘性末端)反應(yīng)所需試劑 體積(單位:ul)質(zhì)粒 10所需內(nèi)切酶反應(yīng)緩沖液 2所需限制性內(nèi)切核酸酶 1H2O 7 將加好的EP管置于37保溫1-2h。(依照提酶切的具
2、體步驟操作;為了達(dá)到最佳酶切的效果,最好根據(jù)所選用的酶確定所需要的反應(yīng)溫度)4、電泳檢測(cè)將酶切產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,檢測(cè)酶切是否成功?;厥漳z:瓊脂糖與緩沖液一比一制膠,經(jīng)過(guò)切膠回收目的產(chǎn)物,也有目的產(chǎn)物純化的功能;檢測(cè)膠:瓊脂糖與緩沖液一比二制膠,為了檢測(cè)目的條帶與預(yù)期是否相符。切膠回收與產(chǎn)物純化是差不多的過(guò)程,所達(dá)到的目的是一樣的:切膠回收也是一種純化過(guò)程,它能去除非目的片段,然后用回收試劑盒進(jìn)行純化,能將很不純的DNA溶液純化;產(chǎn)物純化是將較純的DNA溶液進(jìn)一步除去多余的雜質(zhì),用純化試劑盒,你會(huì)發(fā)現(xiàn)純化試劑盒和回收試劑盒的步驟幾乎一樣。5、載體與目的基因連接如果電泳檢測(cè)酶切成功的話,則仔
3、細(xì)將所需的片段切割下來(lái),將膠體回收(依照膠回收試劑盒說(shuō)明書操作);之后將回收的片段和載體連接。置于溫箱,12-16,保溫8-16h6、轉(zhuǎn)化(連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到感受態(tài)細(xì)胞中)依照轉(zhuǎn)化具體操作步驟做感受態(tài),將上述連接產(chǎn)物進(jìn)行轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn),涂板培養(yǎng),37,12-16h。7、單克隆檢測(cè)(1)挑單克隆先將AMP從冰箱中取出,待融化后,在3ml裝有LB液體培養(yǎng)基的試管中加入3L的AMP,用槍頭混勻;取1.5 mlEP管5支(依情況可以多挑幾管),給每支管中加500L上述培養(yǎng)液,然后用接種環(huán)(或黃槍頭)挑單克隆,挑完后用槍吹打;之后,將挑好的菌搖4-5小時(shí),至混濁即可。(2)單克隆檢測(cè)以每管搖好的菌液為模板,以原有
4、的引物進(jìn)行PCR,然后將PCR產(chǎn)物跑電泳,觀察電泳圖像中那幾管的條帶正確,將正確條帶相對(duì)應(yīng)管的菌液再抽取100L,加到3ml(有LB液體培養(yǎng)液,AMP+)試管中,過(guò)夜搖;第二天重?fù)u,將搖好的菌取1ml于1.5mlEP管中送測(cè)序,并保種。 注:挑單克隆時(shí),一定要挑單一圓潤(rùn)的菌落,有衛(wèi)星斑的不挑。 別忘記往培養(yǎng)基中加AMP。 用接種環(huán)挑菌后,要在酒精燈上反復(fù)灼燒,然后再進(jìn)行下一次挑菌。三、注意事項(xiàng)1 連接產(chǎn)物可短時(shí)間在-20保存,使用時(shí)可以取出進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn);2 在細(xì)胞轉(zhuǎn)化時(shí),冰浴和熱激要嚴(yán)格控制好時(shí)間;3 連接反應(yīng)是DNA重組過(guò)程中的關(guān)鍵步驟,其成敗的重要參數(shù)之一就是溫度,因此要控制好連接溫度。4進(jìn)行黏末端連接時(shí),會(huì)產(chǎn)生一定數(shù)量的載體自身環(huán)化分子
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