標(biāo)準(zhǔn)解讀
《GB/T 18936-2020 高致病性禽流感診斷技術(shù)》相比于《GB/T 18936-2003 高致病性禽流感診斷技術(shù)》,主要在以下幾個(gè)方面進(jìn)行了更新和調(diào)整:
-
技術(shù)方法的更新:新版標(biāo)準(zhǔn)納入了近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的新診斷技術(shù),如實(shí)時(shí)熒光RT-PCR檢測(cè)方法,高通量測(cè)序技術(shù)等,以提高檢測(cè)的靈敏度和特異性。這些新技術(shù)的應(yīng)用有助于更快、更準(zhǔn)確地識(shí)別高致病性禽流感病毒。
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檢測(cè)程序的優(yōu)化:對(duì)樣本采集、處理、保存以及實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)流程進(jìn)行了優(yōu)化,明確了更加標(biāo)準(zhǔn)化的操作步驟,旨在減少檢測(cè)過(guò)程中的誤差,提升診斷效率。
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診斷標(biāo)準(zhǔn)的修訂:根據(jù)病毒學(xué)研究的最新進(jìn)展,重新界定了高致病性禽流感病毒的鑒別診斷標(biāo)準(zhǔn)和閾值,確保診斷結(jié)果的科學(xué)性和準(zhǔn)確性。
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生物安全要求的加強(qiáng):鑒于高致病性禽流感對(duì)公共衛(wèi)生及畜牧業(yè)的重大威脅,新標(biāo)準(zhǔn)加強(qiáng)了樣本處理和實(shí)驗(yàn)操作中的生物安全要求,增加了針對(duì)實(shí)驗(yàn)室人員防護(hù)、廢棄物處理等方面的指導(dǎo)。
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信息報(bào)告系統(tǒng)的完善:規(guī)范了高致病性禽流感疑似或確診病例的報(bào)告流程,強(qiáng)調(diào)了疫情信息的及時(shí)上報(bào)和共享,以利于快速響應(yīng)和有效防控。
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參考菌株與質(zhì)控品的更新:提供了最新的參考病毒株列表和質(zhì)量控制品標(biāo)準(zhǔn),確保各檢測(cè)實(shí)驗(yàn)室能夠使用統(tǒng)一、可靠的基準(zhǔn)進(jìn)行校準(zhǔn)和驗(yàn)證。
如需獲取更多詳盡信息,請(qǐng)直接參考下方經(jīng)官方授權(quán)發(fā)布的權(quán)威標(biāo)準(zhǔn)文檔。
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- 正在執(zhí)行有效
- 2020-12-14 頒布
- 2020-12-14 實(shí)施
文檔簡(jiǎn)介
?ICS11.220B41
中華人民共和
國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)
GB/T18936—2020
代替GB/T189362003
高致病性禽流感診斷技術(shù)
Diagnostictechniquesforhighlypathogenicavianinfluenza
2020-12-14發(fā)布 2020-12-14實(shí)施
I轟裏霞審暮霱雲(yún)養(yǎng)唇
GB/T18936—2020
目次
I1細(xì) 1
2規(guī)范性引用文件 1
3術(shù)語(yǔ)和定義 1
4臨床診斷 2
5樣品采集、保存與運(yùn)輸 2
6病毒分離與鑒定 3
7血凝和血凝抑制試驗(yàn) 3
8禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn) 4
9禽流感病莓實(shí)時(shí)熒光KT-PCR試驗(yàn) 5
10綜合判定 6
附錄A(規(guī)范性附錄)試驗(yàn)所用溶液和1%雞紅細(xì)胞的配制 7
附錄B(資料性附錄)髙致病性禽流感病毒IVPI測(cè)定試驗(yàn) 8
附錄C(資料性附錄)血清非特異性凝集和非特異性抑制因子的處理方法 10
附錄D(資料性附錄)禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn)用引物 12
附錄E(資料性附錄)RT-PCR反應(yīng)液配制 13
附錄F(資料性附錄)實(shí)時(shí)熒光RT-PCR引物探針序列及反應(yīng)液配方 14
本標(biāo)準(zhǔn)按照GB/T1.1—2009給出的規(guī)則起草。
本標(biāo)準(zhǔn)代替GB/T18936-2003<髙致病性禽流感診斷技術(shù)》.與GB/T18936-2003相比.主要技術(shù)變化如下:
——增加了禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn)(見(jiàn)第8章〉>
增加丫禽流感病毒實(shí)時(shí)熒光RT-PCR試驗(yàn)(見(jiàn)第9章);
—?jiǎng)h除f瓊脂凝膠免疫擴(kuò)散(AGID)試驗(yàn)(見(jiàn)2003年版的第4章),
刪除了間接酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)(見(jiàn)2003年版的第5章)。
請(qǐng)注意本文件的某些內(nèi)容可能涉及專(zhuān)利。本文件的發(fā)布機(jī)構(gòu)不承擔(dān)識(shí)別這些專(zhuān)利的責(zé)任。本標(biāo)準(zhǔn)由中華人民共和國(guó)農(nóng)業(yè)農(nóng)村部提出。
本標(biāo)準(zhǔn)由全國(guó)動(dòng)物衛(wèi)生標(biāo)準(zhǔn)化技術(shù)委員會(huì)(SAC/TC181)歸口。
本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院哈爾濱苒醫(yī)研究所、中華人民共和國(guó)北京海關(guān)、中國(guó)動(dòng)物衛(wèi)生與流行病學(xué)中心。
本標(biāo)準(zhǔn)主要起草人:王秀榮、田國(guó)彬、劉環(huán)、鄧國(guó)華、蔣文明、施建忠、曾顯營(yíng)、李雁冰、谷強(qiáng)、孫曉東、陳化蘭,
本標(biāo)準(zhǔn)所代將標(biāo)準(zhǔn)的歷次版本發(fā)布情況為:
——GB./T18936-2003。
GB/T18936—2020
高致病性禽流感診斷技術(shù)
1范圍
本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了髙致病性禽流感臨床診斷,樣品采集.保存與運(yùn)輸.病毒分離與鑒定.血凝和血凝抑制試驗(yàn).禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn)和禽流感病毒實(shí)時(shí)熒光RT-PCR試驗(yàn)的技術(shù)要求。
本標(biāo)準(zhǔn)適用于髙致病性禽流感的診斷、檢疫、檢測(cè)、監(jiān)測(cè)和流行病學(xué)調(diào)査等。
2規(guī)范性引用文件
下列文件對(duì)于本文件的應(yīng)用是必不可少的。凡是注日期的引用文件.僅注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新,坂本(包括所有的修改單)適用于本文件。
GB19489實(shí)驗(yàn)室生物安全通用要求
NY/T765髙致痃性禽流感樣品采集、保存及運(yùn)輸技術(shù)規(guī)范
3術(shù)語(yǔ)和定義
下列術(shù)語(yǔ)和定義適用于本文件,
3.1
商致病性禽流感highlypathogenicavianinfluenza?HPAl
由正黏病毒科流感病毒屬A型流感病賚引起的以禽類(lèi)為主的急性傳染病。
3.2
血凝hemagglutinin;HA
流感病毒顆粒表面的血凝索蛋白,具有識(shí)別紅細(xì)胞表面受體并使紅細(xì)胞凝集的特性。
3.3
血凝抑制hema朗lutinininhibition;HI
抗體特異性地附著在HA分子的抗原位點(diǎn)上,干擾流感病毒HA與紅細(xì)胞受體之間的結(jié)合.抑制了流感病毒HA凝集紅細(xì)胞的能力。
3.4
反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)reversetranscription-polymerasechainreaction;RT-PCR
一種用于放大擴(kuò)增特定的RNA片段的分子生物學(xué)技術(shù)。先用RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,然后以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增的過(guò)程。
3.5
實(shí)時(shí)熒光RT-PCRreal-timeRT-PCR
利用熒光信號(hào)累積實(shí)時(shí)監(jiān)測(cè)整個(gè)PCR進(jìn)程的一種擴(kuò)增核酸方法。
Ct值cyclethreshold
毎個(gè)反應(yīng)管內(nèi)的熒光倌號(hào)量達(dá)到設(shè)定的閾值所經(jīng)歷的循環(huán)次數(shù)。
4臨床診斷4.1易感動(dòng)物
雞、火雞、鴨、鵝、鶴鶉、雉雞、鵝鴣、蛇鳥(niǎo)、孔雀等多種禽類(lèi)易感.多種野烏也可感染發(fā)病。4.2臨床癥狀
4.2.1
4.2.2
4.2.3
4.2.4
精神沉郁.嗜睡,頭翅下垂.呆立I食欲不振;呼吸困難,有呼吸道癥狀。
雞冠發(fā)鉗、發(fā)紫;眼結(jié)膜發(fā)紅;排 未完全消化的飼料;腳鱗或有出血。
產(chǎn)蛋下降.軟殼蛋、畸形
鴨、鵝等水禽可貝
略物.甚至失明。
4.3剖檢變化
神大出*:直
出血。
4.4結(jié)
]為髙
出
3中的
鹽似病
一步開(kāi)
:診斷。
.2
5樣品
集.
存與運(yùn)轍
5.1總則
免交叉污染。死禽或其他動(dòng)物采集氣贊、肺和腦等
5.2拭子樣品
歪脖于等神經(jīng)癥狀。
和腹
.出血?有少黏液;肺部有炎性癥狀r
,卵泡充血、出
胎肪出血:腺胃乳頭司
5.2.1采集咽喉拭子時(shí)將拭
頭及上W
轉(zhuǎn).取分泌液。
便。
遮腔拭子I小珍禽用拭子取樣易造成損傷,可
4.3.1氣管彌
4.3.2腹腔
血、萎縮、
4.3.3心置及
njf梅黃性腹祺炎”:興腺邊絕有出血、:K死.
樣品采
禽進(jìn)行,采樣i
禽樣品應(yīng)包括咽
期、遵樣具寥典型臨床癥狀的[樣<,進(jìn)行分別處理;活
5.2.2采集泄殖腔拭子時(shí)將拭子深人 i取少量糞便。
5.2.3將采樣后的拭子分別放人盛有1.2mL樣品稀釋液(配制方法見(jiàn)附錄A中的A.1)的2mL采樣管中.編號(hào)并填寫(xiě)相應(yīng)采樣單。
5.3組織樣品
發(fā)病禽鳥(niǎo)町無(wú)歯采集氣管、肺、腦、腸(包括內(nèi)容物)、肝、脾、腎、心等組織臟器.裝入15mL或
50mL帶螺口的有機(jī)材料保存管中.編號(hào)并填寫(xiě)相應(yīng)采樣單。
5.4血清樣品采集
無(wú)菌采集禽類(lèi)的血液,毎只約2mL,編號(hào)并填寫(xiě)相應(yīng)采樣單。待血液凝固.血清析出后.收集血清用于HI檢測(cè)。
5.5樣品保存和運(yùn)輸
樣品采集后置保溫箱中,加入預(yù)冷的冰袋.密封.宜24h內(nèi)送實(shí)驗(yàn)室。樣品應(yīng)盡快處理.沒(méi)有條件的可在4r存放不超過(guò)d.也可在低溫條件下保存(一70’C貯存為宜)。
6病毒分離與鑒定
6.1適用范圍
病毒分離與鑒定方法適用于對(duì)HPAI的病原學(xué)診斷,應(yīng)在有資質(zhì)的髙等級(jí)生物安全實(shí)驗(yàn)室操作.按照GB19489的規(guī)定執(zhí)行。
6.2樣品處理
將棉拭子充分捻動(dòng)、擠十后棄去拭子;糞便、研碎的組織加樣品稀釋液充分研磨.按照1g組織加10mLPBS的比例配成懸液。樣品液經(jīng)3000r/min離心10min.取上清作為接種或者核酸檢測(cè)材料。
6.3樣品接種及收獲
取處理好的樣品,以0.2mL/胚的i經(jīng)尿囊腔途徑接種9d?11d無(wú)特定病原體雞胚.毎個(gè)樣品接種3?5枚雞胚.在37‘C孵化箱內(nèi)孵育.毎天上午和下午定點(diǎn)觀察雞胚死亡情況。無(wú)菌收取死胚及96h仍存活璁胚的雞胚尿囊液.測(cè)HA活性。
6.4病番鑒定
若無(wú)HA活性.則收取尿囊液進(jìn)行肓傳.至少育傳1代,若仍陰性,則認(rèn)為病毒分離陰性I若有HA活性說(shuō)明可能有正黏病灌科的流感病哿.可進(jìn)一步采用血凝和血凝抑制試驗(yàn)(見(jiàn)第7章)、高致病性禽流感病毐IVPI(靜脈內(nèi)接種致病指數(shù))測(cè)定試驗(yàn)(參見(jiàn)附錄B)、禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn)(見(jiàn)第8章)、禽流感病堆實(shí)時(shí)熒光RT-PCR試驗(yàn)(見(jiàn)第9章〉等方法進(jìn)行驗(yàn)證。
7血凝和血凝抑制試驗(yàn)
7.1適用范圍
血凝和血凝抑制試驗(yàn)適用于血凝素亞型的診斷和抗體效價(jià)擁定。
7.2試劑
7.2.1阿氏(Alsevers)液,配方參見(jiàn)A.2。
7.2.21%雞紅細(xì)胞懸液.配方參見(jiàn)A.3.
7.2.3pH7.2、0.01mol/LPBS,配方參見(jiàn)A.4。
7.2.4禽流感病毒血凝素分型標(biāo)準(zhǔn)抗原、標(biāo)準(zhǔn)陽(yáng)性血清、陰性血清。
7.3HA試驗(yàn)(微量法)試驗(yàn)步驟
7.3.1在96孔V型微B反應(yīng)板中,每孔加0.025mLPBS。
7.3.2第1孔加0.025mL抗原或病莓液.反復(fù)吹吸3次?5次混勻。
7.3.3從第1孔吸取0.025mL抗原或病毒液加人第2孔.混勻后吸取0.025mL加人第3孔.進(jìn)行2倍系列稀釋至第11孔.從第11孔吸取0.025mL棄去。第12孔為PBS對(duì)照孔。
5
GB/T18936—2020
7.3.4毎孔加0.025mL?BS。
7.3.5每孔加人0.025ml1%(體積分?jǐn)?shù))鴉紅細(xì)胞懸液。
7.3.6結(jié)果判定。輕扣反應(yīng)板混合反應(yīng)物.室溫(約20’C)靜置40min,環(huán)境溫度過(guò)髙時(shí)可在4t條件下靜置60min,^對(duì)照孔的紅細(xì)胞呈顯著紐扣狀時(shí)判定結(jié)果。判定時(shí),將反應(yīng)板傾斜60觀察紅細(xì)胞有無(wú)淚珠狀流淌.完全無(wú)淚珠樣流淌(100%凝集)的最髙稀釋倍數(shù)判為血凝效價(jià)。
7.4HI試驗(yàn)(微量法)試撿步驟
7.4.1根據(jù)HA試驗(yàn)測(cè)定的效價(jià)配制4個(gè)血凝單位(即4HAU)的病毒抗原。4HAU抗原應(yīng)根據(jù)檢驗(yàn)結(jié)果調(diào)整準(zhǔn)確。
示例:如果血凝的終點(diǎn)滴變?yōu)? =64(EP1:64);取PBS6.3mL,加抗原
0.1mL.即通過(guò)1:64稀釋獲得#.將配制的4HAU抗原進(jìn)行系列稀釋?zhuān)Q終稀釋度為1!2J|^1' 和1:7。取,加人PBS0.025mL,再加人
min,如果配制的抗原液為集終點(diǎn);如果高于4HAU,可能1|5或1:6為_(kāi)<如于4HAU,可能1:2或
log:
1%雞紅細(xì)胞懸液凝板在室溫(約20’C)條件下靜置41
4HAU,則1>4
1,3為終點(diǎn)?/ /
7.4.2第1 孔加人0.025mLPBS.第12孔加人0.05mLPBS作為炎白
7.4.3第l/加A"0.025mL血清(鴨、的jfa濟(jì)車(chē)
PBS充分者勻漆取0.】|驗(yàn)抒2孔,依次2
11孔作5
7.4.43
60mino
7.4.5?
4?C60!
7.4.6名
2log2),
4HAU抗J
效價(jià)不髙于
吋建i義進(jìn)行頂處埋,_見(jiàn)_
釋至第W孔.從第10孔吸觀.
f第1孔血清與
6mL棄去。第
充原曩照。
某亞型禽流感q
價(jià)不髙于118U
其他病毒檢測(cè)方法
第112加入1IHA'
\0.025 分?jǐn)?shù)〉雞
對(duì)照孔~孔、呈盧扣狀吋解定
氣抗原對(duì)照孔(第ii孔)寵全凝彙.且與性對(duì)照血清抗體紋&血清抗_玫價(jià)與a知效
種釋倍數(shù)判為該盧清的hi抗體效價(jià),用丁檢測(cè)擾體.
t體抑制.HI效價(jià)不低于1|16(24或4log2)時(shí)^^為陰性,對(duì)于疑似H5亞型等抗原性
8禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn)
8.1適用范圍
抗原.在章街(約20r)下
胞鉍液蕩混
<約20?<
3i
i爺?shù)巫儠r(shí).試齄方我
抗體效價(jià).用T檢
適用于檢測(cè)禽組織、分泌物、排泄物、雞胚培養(yǎng)物等物質(zhì)中禽流感病毒核酸。
min或4"C
IS40min或
iSF1:4(2、或蜷以完全抑制淸時(shí),HI抗體I測(cè)抗原.能夠被
用
陽(yáng)性;HI抗體效
f差別的病毒,應(yīng)結(jié)合
8.2儀器設(shè)備
8.2.1PCR擴(kuò)增儀及配套反應(yīng)管。
8.2.2髙速臺(tái)式冷凍離心機(jī)(離心速度不低于12000r/min)。
8.2.3n級(jí)生物安全柜。
8.2.4微童移液器(5gL、10pL、100ML、1000gL)及配套吸頭與1.5mL離心管。
8.2.5電泳儀。
8.2.6電泳槽。
4
GB/T18936—2020
8.2.7紫外凝膠成像儀。
8.3試劑
8.3.1推薦的禽流感病埠RT-PCR引物序列.參見(jiàn)附錄D。
8.3.2RT-PCR反應(yīng)液.配方參見(jiàn)附錄E的E.1。
8.3.3無(wú)核酸酶水,配方參見(jiàn)E.2。
8.3.4無(wú)水乙醇。
8.3.5陰性對(duì)照為SPF雞胚尿囊液。
8.3.6陽(yáng)性對(duì)照為滅活的相應(yīng)亞型禽流感病毒胚培養(yǎng)物。
8.4RNA提取
可選市售商品化RNA提取試劑盒,按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。
8.5RT-PCR操作
取2.5(約250ng)提取的RNA加人RT-PCR反應(yīng)液中,置于PCR儀中.循環(huán)參數(shù)為:45’C逆轉(zhuǎn)錄45min;94'C預(yù)變?生2min;94.C30s、52-C45s、68‘C45s,35個(gè)循環(huán);最后68'C延伸8min。
8.6電泳
PCR產(chǎn)物用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行分析。
8.7結(jié)果判定
在陽(yáng)性對(duì)照出現(xiàn)相,3擴(kuò)增帶、陰性對(duì)照無(wú)此擴(kuò)增帶時(shí)判定結(jié)果。出現(xiàn)預(yù)期大小的擴(kuò)増片段時(shí).判定為核酸檢測(cè)陽(yáng)性,否則判定為陰性。
9禽流感病毒實(shí)時(shí)熒光RT-PCR試驗(yàn)
9.1適用范圍
實(shí)時(shí)熒光RT-PCR適用于檢測(cè)禽組織、分泌物、排泄物、雞胚尿囊液等物質(zhì)中禽流感病毒核酸。9.2儀器設(shè)備
9.2.1熒光PCR儀。
9.2.2其余器材同8.2.2?8.2.4。
9.3試劑及引物探針序列
推薦的實(shí)時(shí)熒光RT-PCR引物探針序列參見(jiàn)附錄F的F.1。
9.4樣本核酸的提取
可選市售商品化RNA提取試劑盒.按說(shuō)明書(shū)進(jìn)行。
9.5實(shí)時(shí)熒光RT-PCR操作
9.5.1實(shí)時(shí)熒光RT-PCR擴(kuò)増?jiān)噭┑臏?zhǔn)備與配飼
宜在專(zhuān)門(mén)的反應(yīng)混合物配制區(qū)配制實(shí)時(shí)熒光RT-PCR擴(kuò)增試劑。根據(jù)需要檢測(cè)的樣品數(shù).按推薦
5
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的實(shí)時(shí)熒光RT-PCR反應(yīng)液配方(參見(jiàn)F.2)配制反應(yīng)液.充分混勻后分裝,毎個(gè)反應(yīng)管15mL。轉(zhuǎn)移反應(yīng)管至樣本制備區(qū)。
9.5.2加樣
宜在專(zhuān)門(mén)的樣本制備區(qū)進(jìn)行。在9.5.1配好的反應(yīng)管中分別加入9.4中制備的RNA溶液5mL(約500ng).使每管總體積達(dá)到20ML,記錄反應(yīng)管對(duì)應(yīng)的樣品編號(hào)。蓋緊管蓋后,500r/min離心30s。
9.5.3實(shí)時(shí)熒光RT-PCR反應(yīng)設(shè)定
宜在專(zhuān)門(mén)的檢測(cè)區(qū)進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光RT-PCR反應(yīng)。將9.5.2中加樣后的反應(yīng)管放人實(shí)時(shí)熒光RT-PCR檢測(cè)儀內(nèi),編輯樣品表后,選定與探針標(biāo)記熒光基團(tuán)相符合的檢測(cè)通道讀取熒光信號(hào)值,淬滅基團(tuán)選擇none。推薦的實(shí)時(shí)熒光RT-PCR反應(yīng)參數(shù)設(shè)定參見(jiàn)F.3。
9.6結(jié)果判定
9.6.1結(jié)果分析條件設(shè)定
綜合分析儀器讀取的各項(xiàng)數(shù)據(jù)及擴(kuò)增曲線,設(shè)定合理的閾值(threshold)和基線(baseline),使儀器顯示正確的結(jié)果。
9.6.2質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)陰性對(duì)照檢測(cè)通道讀取數(shù)據(jù)無(wú)Ct值或Ct值>35并且無(wú)特征性擴(kuò)增曲線。
陽(yáng)性對(duì)照檢測(cè)通道讀取數(shù)據(jù)出現(xiàn)特征性擴(kuò)增曲線,且Ct值應(yīng)<30。
如陰性和陽(yáng)性對(duì)照不滿足以上條件.此次試驗(yàn)視為無(wú)效。
9.6.3結(jié)果描述及判定
若測(cè)定樣品Ct值<30,判為所用引物探針禽流感病毒特定型或亞型核酸陽(yáng)性。
若測(cè)定樣品30<Ct值<35.判為可疑。重復(fù)測(cè)定后仍在可疑區(qū)間的樣本判為陽(yáng)性。若測(cè)定樣品無(wú)Ct值或Ct值>35,判為陰性。
10綜合判定
10.1疑似
出現(xiàn)4.23.3中的情況,初步判為商致病性禽流感臨床疑似病例,若其H5或H7亞型的RT-PCR或?qū)崟r(shí)熒光RT-PCR檢測(cè)陽(yáng)性.可判為髙致病性禽流感疑似病例。
10.2確診
病毒分離物經(jīng)HA和HI試驗(yàn)確定為流感病毒.且分離物的IVPI值大于1.2,判定為高致病性禽流感病毒;如果IVPI值小于1.2的H5或H7亞型禽流感病毒.在HA裂解位點(diǎn)處具有與HPAI病毒相似的氨基酸序列?亦判定為髙致病性禽流感病毐。分離到髙致病性禽流感病毐的病例判定為卨致病性禽流感確診病例。
GB/T18936—2020
附錄A
(規(guī)范性附錄)
試驗(yàn)所用溶液和1%雞紅細(xì)胞的配制
A.1樣品稀釋液
樣品稀釋液的配制方法如下:
a) A液:0.2mol/L磷酸二氫鈉水溶液。NaH2PO4?H2O27.6g.溶于蒸餾水中.最后定容至1000mL。
b) B液,0.2mol/L磷酸氫二鈉水溶液.N&HPCX.7H,053.6g,或Na2HPO4.12H:O71.6g或Na2HPO4?2H,035.6g,加蒸餾水溶解.最后定容至1000mL.
c) 0.01mol/LpH7.2磷酸鹽緩沖液(PBS)(含抗生索和穩(wěn)定劑)的配制。取A液14mL.B液36mL,加NaCl8.5g,用蒸餾水定容至1000mL。經(jīng)121?(:士2rjSmin髙壓滅菌.冷卻后.無(wú)菌條件下分別加入青霉索2000U/mL、鏈?zhǔn)Y索(2mg/mL)、慶大霉素(50Mg/mL)、霉菌抑制索(1000U/mL)和牛血清白蛋白(5mg/mL)。
上述抗生素濃度宜用于組織和咽喉拭子.如果用作糞便和泄殖腔拭子的緩沖液.抗生索濃度可提髙5儕。
A.2阿氏(Alsevers)液配制
稱(chēng)取葡萄糖2.05g,擰橡酸鈉0.8g、擰檬酸0.055g、氣化納0.420g,加蒸餾水至100mL,散熱溶解后調(diào)pH值至6.1.69kPa15min髙壓滅蘭,4‘C保存?zhèn)溆谩?/p>
A.3 1%雞紅細(xì)胞懸液
采集至少三只SPF雞或無(wú)禽流感和新城疫等抗體的健康公雞的血液與等體積阿氏液混合.用pH7.2的0.01mol/LPBS洗滌3次.每次均以1000r/min離心10min.洗滌后用PBS配成1%(體積分?jǐn)?shù))紅細(xì)胞懸液.4T保存?zhèn)溆谩?/p>
A.4pH1mol/LPBS的配制
pH7.2,0.01mol/LPBS的配制方法如下:
a) 配制25XPB,稱(chēng)量2.74g磷酸氫二鈉和0.79g磷酸二氫鈉加蒸餾水至100mL。
b) 配制1XPBS:量取40mL25XPB,加人8.5g孰化鈉,加蒸餾水至1000mL。
c) 用氫氧化衲或鹽酸調(diào)pH至7.2。
d) 滅菌或過(guò)濾。
e) PBS-經(jīng)使用,于4’C保存不超過(guò)3周。
附錄B
(資料性附錄)
高致病性禽流感病毒IVPI測(cè)定試驗(yàn)
B.1試驗(yàn)雞
6周齡SPF雞,10只。
B.2接種材料
感染雞胚的尿囊液,血凝價(jià)在1:16(24或4log2)以上.未混有任何細(xì)菌、霉菌、支原體或其他病毒。
B.3接種方法
將感染雞胚尿囊液用PBS1:10稀釋?zhuān)?.1mL/羽的劑量翅靜脈接種。每日觀察每只雞的發(fā)病及死亡情況,連續(xù)觀察10d。
B.4記錄方法
根據(jù)每只雞的癥狀用數(shù)字方法毎天進(jìn)行記錄:正常雞記為0,病雞記為1,重病雞記為2,死雞記為3。病雞和重病雞的判斷主要依據(jù)臨床癥狀表現(xiàn).一般而言,“病雞”表現(xiàn)有下述一種癥狀.而“重病雞”則表現(xiàn)下述多個(gè)癥狀.如呼吸癥狀、沉郁、腹瀉、雞冠和/或肉髯發(fā)紺、臉和/或頭部腫脹、神經(jīng)癥狀。列舉1個(gè)假設(shè)試驗(yàn)來(lái)說(shuō)明IVPI的計(jì)算方法,參見(jiàn)表B.1和公式(B.1)。
表B.1假設(shè)髙致病性禽流感病毒致病性試驗(yàn)記錄結(jié)果
臨床癥狀
第1天
第2天
第3天
第4天
第5天第6天
第7天
第8天
第9天
第10天
分類(lèi)總計(jì)
得分
正常(a=0)
10
5
3
3
2
1
0
0
0
0
24
0
病雞(6=1)
0
0
0
0
C
0
0
0
0
0
0
0
重病雞(c=2)
0
5
2
0
1
1
1
0
0
0
10
20
死亡(rf=3)
0
0
5
1
7
8
9
10
10
10
66
198
總計(jì)
一
—
—
—
—
100
218
注1:當(dāng)IVPI值大于1.2時(shí),判定分離株為髙致病性禽流感病毒(HPAIV)。
注2:本試驗(yàn)中IVPI=(0+0+20+198)/100=2.18>1.2,因此,本試驗(yàn)中的分離株為HPAIV.
B.5IVPI值計(jì)算
IVPI值計(jì)算參見(jiàn)公式(B.1):
#
GB/T18936—2020
SaX0+S6Xl+xX2+2rfX3*VA1 —〒
式中:
2,-10d累計(jì)正常雞數(shù);
——10d累計(jì)病雞數(shù);
——10d累計(jì)重病雞數(shù);
L——10d累計(jì)死雞數(shù);
T—10d累計(jì)記錄10只雞的總次數(shù).即100。
B.6判定標(biāo)準(zhǔn)
為髙致病性禽流1
B.6.1當(dāng)IVPI值大于為髙致病性禽流病
的序列分析,如果氨毒。
B.6.2氣IVPI值小H7亞型的禽流感病毒應(yīng)進(jìn)行
基酸序列同其他髙^毒相似.被檢測(cè)的分離物應(yīng)被視為髙致
GB/T18936—2020
附錄C
(資料性附錄)
血清非特異性凝集和非特異性抑制因子的處理方法
C.1非特異性凝集因子的處理
有些禽類(lèi)血清(如水餺、鴿)可能對(duì)雞紅細(xì)胞產(chǎn)生非特異性凝集,可先用待檢血清做HA試驗(yàn).如果待檢血清出現(xiàn)紅細(xì)胞凝集現(xiàn)象.則說(shuō)明有非特異凝集因子存在.宜用雞紅細(xì)胞對(duì)待檢血清進(jìn)行吸附.具體方法為:毎0.5mL血消中加人0.025mL50%雞紅細(xì)胞,輕搖后靜置至少30min.800g離心2min~
5min,收集上清液(處理后的血清)。用上清液進(jìn)行HI試驗(yàn)時(shí).需設(shè)處理陽(yáng)性血清對(duì)照?;蛘呖捎门c待檢血清宿主來(lái)源相同的1%紅細(xì)胞懸液進(jìn)行HA和HI試驗(yàn)。
C.2非特異性抑制因子的處理
C.2.1胰酶一加熱一離碘酸鹽法
利用胰酶一加熱一髙碘酸鹽法處理非特異性抑制因子的操作如下:
a) 取0.3mL血淸.加0.15mL狹海溶液(8mg/mL:200mg的P-250胰酶溶解于25mL的0.01mol/L,pH值7.0?7.2的PBS中,混勻,過(guò)濾除歯.分裝并在一15C以下保存.保存期6個(gè)月).混勻后,在56’C水浴滅活30min后冷卻至室溫。
b) 再加人0.9mL髙碘酸鉀(將230mgKIO4用0.01mol/L.pH值7.0-7.2的PBS定容至
100mL,過(guò)濾除謝后避光室溫保存.保存期1周),混合,室溫孵育15min。
c) 再加人0.9mL的丙三醇鹽溶液(1mL丙三醇加人99mL的0.01mol/L,pH值7.0-7.2的PBS中.混勻.過(guò)濾除菌.室溫保存),混合,室溫孵育15min。
d) 最后加人0.75mL生理鹽水.混勻.WC保存?zhèn)溆?處理后的血清最終為10倍稀釋的血清。
C.2.2受體破壞?(KDE:處理法
利用RDE處理法處理非特異性抑制因子的操作如下:
a) 取1體積血清(50ML),加4體積RDE(200mL),37_C水浴18h(過(guò)夜〉。
b) 再加人5體積(250ML)的1.5%濃度的擰檬酸鈉.混勻.置56’C水浴30min(以破壞殘余的RDE活性)。
c) 將1體積的50%的紅細(xì)胞加人到10體積RDE處理的血清中(50ML紅細(xì)胞+500ML血清),振蕩混勻后4_C放置1h,期間可輕輕搖勻懸浮紅細(xì)胞數(shù)次。
d) 1000g離心10min,小心吸取上層上清,用于檢測(cè)。處理后的血清最終為10倍稀釋的血清。
C.2.3處理非特異性抑制因子后血清HI試驗(yàn)方法
處理后血清HI試驗(yàn)方法如下:
a) 第2孔?第11孔加人0.025mLPBS.第12孔加人0.05mLPBS作為空內(nèi)對(duì)照。
b) 第1孔、第2孔加人處理后的血清0.025mL.第2孔血清與PBS充分混勻后吸0.025mL于第3孔.依次2倍稀釋至第10孔,從第10孔吸取0.025mL棄去。第11孔為抗原對(duì)照。
c) 第1孔?第11孔均加人0.025mL4HAU抗原,在室溫(約20?(:)下靜S40min或4C
11
GB/T18936—2020
60mino
d) 毎孔加人0.025mLl%(體積分?jǐn)?shù)〉雞紅細(xì)胞懸液.震蕩混勻,在室溫(約20’C)下靜置40min或4-C60min,對(duì)照孔紅細(xì)胞呈顯著紐扣狀時(shí)判定結(jié)果。
e) 結(jié)果判定。氣陰性對(duì)照血清抗體效價(jià)不髙于1:10,陽(yáng)性對(duì)照血清抗體效價(jià)與巳知效價(jià)誤差不超過(guò)1個(gè)滴度時(shí).試驗(yàn)方可成立。以完全抑制4HAU抗原的最商血清稀釋倍數(shù)判為該血清的HI抗體效價(jià)。被檢血清HI抗體效價(jià)低于1|10判為陰性.不低于1:10判為陽(yáng)性。
附錄D
(資料性附錄>
禽流感病番RT-PCR試驗(yàn)用引物
采用普通RT-PCR方法開(kāi)展禽流感檢測(cè).可根據(jù)檢測(cè)目的基因不同選擇引物(參見(jiàn)表D.1〉。表D.1禽流感病毒RT-PCR試驗(yàn)可選擇的引物
引物名稱(chēng)
引物序列
5'-~3'
長(zhǎng)度
bp
擴(kuò)増目的基因
M-229U
TTCTAACCGAGGTCGAAAC
229
M
M-229L
AAGCGTCTACGCTGCAGTCC
H5-372U
GGAATATGGTAACTGCAACACCA
372
H5
H5-372L
AACTGAGTGTTCATTTTGTCAATG
H7-501U
AATGCACARGGAGGAGGAACT
501
H7
H7-501L
TGAYGCCCCGAAGCTAAACCA
H9-273U
TGTGTCTTACGATGGGACAAGCA
273
H9
H9-273L
TTGACAAGAGGCCTTGGTCCTAT
N1-358U
ATTRAAATACAAYGGYATAATAAC
358
N1
N1-358L
GTCWCCGAAAACYCCACTGCA
N2-377U
GTGTGYATAGCATGGTCCAGCTCAAG
377
N2
N2-377L
GAGCCYTTCCARTTGTCTCTGCA
N9-203U
ATAATGAAACAAACATCACCAA
203
N9
N9-2O3L
AGCATAGAACCTCCATTCATCT
注:W=(AT),Y=(CT);R=(AG)。
GB/T18936—2020
附錄E
(資料性附錄)
RT-PCR反應(yīng)液配制
E.1RT-PCR反應(yīng)體系
毎個(gè)RT-PCR反應(yīng)體系包括的組分參見(jiàn)表E.l?
表E.1RT-PCR反應(yīng)液配方
組分
1個(gè)檢測(cè)體系的加入最
5X反S緩沖液
5.0
10mmol/LdNTP
0.5
15mmo/L氯化鎊
1.0
20pmo!上游引物
0.5
20pmo下游引物
0.5
AMV反轉(zhuǎn)錄酶(200U/ML)
0.5
TaqDNA聚合酶(5U/ML)
0.5
無(wú)核酶滅菌水
14.0
E.2無(wú)核酸曲水
將DEPC加入去離子水中至終濃度為0.1%,充分混合均勻后作用12h,分裝,(121士2VC髙壓滅菌30min,冷卻后冷藏備用。
附錄F
(資料性附錄)
實(shí)時(shí)熒光RT-PCR引物探針序列及反應(yīng)液配方
F.1引物和探針
采用實(shí)時(shí)熒光RT-PCR方法開(kāi)展禽流感檢測(cè).可根據(jù)檢測(cè)目的基因參見(jiàn)表F.1提供的序列合成引物和探針,純度為HPLC級(jí).用RNase-Free滅菌水溶解并稀釋至終濃度10Mmol/L,—20"C保存?zhèn)溆谩1鞦.1禽流感病番實(shí)時(shí)熒光RT-PCR試驗(yàn)可選擇的引物和探針
引物和探針名稱(chēng)
序列
(5'-3')
M上游引物
GACCRATCCTGTCACCTCTGAC
M下游引物
AGGGCATTYTGGACAAAKCGTCTA
M探針
TGCAGTCCTCGCTCACTGGGCACG
H5上游引物
AGGGAGGATGGCAGGGAATG
H5下游引物
TCTTTGTCTGCAGCGTACCCACT
H5探針
ATGGTTGGTATGGGTACCACCATAGCAATG
H7上游引物
CTAATTGATGGTTGGTATGGTTTCA
H7下游引物
AATTGCC:GATTGAGTGCTTTT
H7探針
CAGAATGCACAGGGAGAGGGAACTGCT
N6上游引物
TGCAGGATGTTTGCTCTGAGTC
N6下游引物
CGAAATGGGCTCCTATCATGTAT
N6探針
ACA
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