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1、禽流感病毒檢測技術(shù)研究進(jìn)展         08-12-20 14:17:00     作者:胡曉紅,彭惠民,劉昕    編輯:studa20關(guān)鍵詞禽流感病毒;檢測技術(shù); 禽流行性感冒病毒簡稱禽流感病毒(AIV),屬于正粘病毒科、流感病毒屬。流感病毒根據(jù)可溶性抗原不同可分為A、B、C 型,只有 A 型(AIV)易變異1,并可在禽、人、豬、馬和海洋哺乳動物中暴發(fā)流行,出現(xiàn)輕度呼吸疾病到嚴(yán)重敗血癥等。1878 年 AIV 在意大利首次暴發(fā),

2、其后在英、法、德等歐洲國家和美國均有流行。高致病性 AIV H5N1 于 1997 年在香港致 6 人死亡,20032004 年在亞洲致 4 人死亡,2003 年 H7N7 在荷蘭致 人死亡2。AIV 給人類健康已帶來嚴(yán)重威脅,引起全球的極大關(guān)注,AIV 檢測技術(shù)也隨之成為人們研究的熱點?,F(xiàn)就近年來 AIV檢測技術(shù)研究進(jìn)展作一綜述。1  病原學(xué)檢測雞胚分離培養(yǎng)是檢測病禽組織中AIV的一種經(jīng)典、準(zhǔn)確、敏感的病原學(xué)診斷方法,可以作為金標(biāo)準(zhǔn),特異性和敏感度均可以達(dá)到100%2。2  血清學(xué)檢測21  病毒中和試驗(NT) 作為經(jīng)典方法,病毒中和實驗操作繁瑣、耗時、費(fèi)料,

3、臨床幾乎不用。22  血凝(HA)和血凝抑制(HI)試驗AIV 能夠與雞紅細(xì)胞發(fā)生凝集現(xiàn)象,這種紅細(xì)胞凝集現(xiàn)象又可被特異性免疫血清所抑制,即紅細(xì)胞凝集抑制試驗。血凝和血凝抑制試驗可以鑒定病毒、檢測血清中的抗體水平。用抗不同血凝素的抗血清,由血凝抑制試驗來確定HA亞型。23  神經(jīng)氨酸酶抑制(NI)試驗微量神經(jīng)氨酸酶(NA)抑制劑抑制NA的活性,并以半抑制濃度IC50鑒定NA亞型。Hurt等3用5mg的抗病毒藥物zanamivir建立的熒光NI試驗,檢測陽性樣本H1N1、H1N2,符合率分別為N1 955%,N2 897%,平均935%(187/200)。該方法成本低,適于大

4、規(guī)模地應(yīng)用。24  瓊脂凝膠擴(kuò)散試驗(AGP) 用于檢測AIV共同抗原核蛋白或基質(zhì)蛋白。由于所有的AIV 都具有型特異性共同抗原,用一種AIV的抗原或抗血清就可對所有AIV 的抗體或抗原進(jìn)行鑒定。免疫雙向擴(kuò)散及免疫電泳中以沉淀線判定可以定性,免疫單輻射擴(kuò)散試驗可以定量。25  免疫熒光技術(shù)(IFT) 將抗原或抗體標(biāo)記上熒光素,再進(jìn)行抗原抗體反應(yīng)。最早用于流感病毒是鑒定和定位病毒感染細(xì)胞中特異性的抗原、核蛋白(NP)或基質(zhì)蛋白(MP)抗原。用NP抗原的熒光抗體染色,主要出現(xiàn)核內(nèi)熒光;用MP抗原的熒光抗體主要出現(xiàn)胞質(zhì)熒光,核內(nèi)也可出現(xiàn)部分熒光。26  酶聯(lián)免疫吸附試驗

5、(ELISA) 運(yùn)用ELISA原理建立的AIV檢測方法較多,如用單克隆抗體介導(dǎo)的、經(jīng)生物素一親和素系統(tǒng)放大的H5亞型禽流感病毒捕獲ELISA檢測方法,為進(jìn)一步研究檢測試劑盒提供基礎(chǔ)4。AIV抗體膠體金檢測試紙條則是膠體金免疫層析分析法,用純化病毒與膠體金顆粒偶聯(lián),吸附在玻璃纖維上制作而成,不需要其他試劑,一步完成,反應(yīng)時間只需要幾分鐘(510min),是一種檢測微量AIV抗體快速、簡便的方法5。鄭其升等6用基因工程重組HA蛋白作為抗原建立了檢測AIV 抗體的間接ELISA方法,可以檢測H3、H5、H7、H9亞型血清,特異性高,與傳統(tǒng)HI方法比較,符合率為 971%(774/807)?;谥亟MH

6、A蛋白的間接ELISA方法可望用于AIV的保護(hù)性抗體水平檢測。3  單鏈構(gòu)型多態(tài)性(SSCP) 作為檢測基因變異的手段已得到廣泛應(yīng)用,其原理是單個核苷酸的置換引起DNA單鏈構(gòu)象改變,在非變性電泳中足以導(dǎo)致泳動率變化。Quinto等7用高通量 SSCP 與限制性片段長度多性(RFLP)分析法對照,檢測了近50株流感病毒的400多個基因片段,符合率為98%。4  核酸擴(kuò)增方法41  RTPCR基于MP、NP 基因的高度保守區(qū)的引物,RTPCR可以鑒定AIV810。Lee等9在此基礎(chǔ)上針對H1H15又分別設(shè)計了15對HA基因的特異性引物,同時進(jìn)行15管RTPCR,可以檢

7、測H1H15的HA亞型,該法所測80株病毒樣品,與血清學(xué)方法符合率為100%。但單管單測,操作繁瑣。Phipps等11建立了相對簡便的RTPCR的AIV檢測法,僅用一對引物擴(kuò)增出H1H15的HA2基因,產(chǎn)物由雙脫氧核酸鏈中止法測序分析,盲測12株標(biāo)準(zhǔn)病毒和30株樣品病毒,并與HI對照,完全相符。為提高擴(kuò)增的靈敏度和特異性,也可采用巢式或半巢式RTPCR8。42  多重RTPCR(mRTPCR)mRTRCR是在RTPCR基礎(chǔ)之上實現(xiàn)單管多檢的相對快速和經(jīng)濟(jì)的檢測方法。 Malik等12建立的mRTPCR方法,檢測3種不同的鳥類呼吸道病毒,與單管單檢RTPCR方法結(jié)果完全相符。Yamad

8、a等13 建立了包括5對引物的mRTPCR體系,可鑒別5種亞型AIV。BellauPujol等14運(yùn)用多重半巢式RTPCR可以檢測包括AIV的12種呼吸道RNA病毒,使檢測范圍進(jìn)一步擴(kuò)展,其203個樣本與培養(yǎng)方法及直接免疫熒光法對照,綜合敏感度為98%。43  Realtime RTPCR(RRTPCR)運(yùn)用特異性的熒光水解探針的RRTPCR方法可使檢測時間縮短為4 h 10,15。Lee等10建立的檢測H5、H7亞型AIV的RRTPCR方法,與傳統(tǒng)的培養(yǎng)方法比較,并以EID50(50%雞胚致病指數(shù))為評價指標(biāo),呈正相關(guān)(r  = 0972),T 檢驗無顯著差別(P >

9、;021)。其重復(fù)性試驗呈正相關(guān)(r = 0902),靈敏度H5為1 fg或 10 RNA拷貝,H7為10-1 fg或10 RNA拷貝,所測病毒濃度均低于1010 EID50,該靈敏度高于培養(yǎng)方法。44  依賴核酸序列的擴(kuò)增(NASBA)NASBA是一種快速、等溫的RNA 擴(kuò)增技術(shù),整個反應(yīng)有賴于AMV逆轉(zhuǎn)錄酶、T7 RNA 多聚酶和核酸酶H(RNase H)共同協(xié)作而完成,不需特殊儀器,不需溫度循環(huán),是以轉(zhuǎn)錄為基礎(chǔ),單鏈核苷酸的連續(xù)擴(kuò)增,其反應(yīng)產(chǎn)物是單鏈RNA。擴(kuò)增產(chǎn)物與磁珠上的捕捉探針及釕標(biāo)記的電化學(xué)發(fā)光寡核苷酸探針雜交后,形成復(fù)合物,經(jīng)NucliSens閱讀器直接檢測電化學(xué)發(fā)光

10、強(qiáng)度1617。Collins等16檢測了亞歐地區(qū)H5亞型AIV,同時還鑒別出高致病及低致病H5亞型。Lau 等17建立的NASBA技術(shù)可以檢測H1H15亞型的AIV,并能區(qū)分出H5及H7亞型,整個過程從核酸分離、擴(kuò)增、檢測在6 h 以內(nèi),靈敏度與雞胚培養(yǎng)相當(dāng)。45  環(huán)介導(dǎo)的等溫擴(kuò)增(loopmediated isothermal amplification, LAMP)    Poon等18介紹了一種新的更加簡便的擴(kuò)增方法,即環(huán)介導(dǎo)的等溫擴(kuò)增,特異性地針對6個獨立的結(jié)合位點設(shè)計兩對引物擴(kuò)增,以看家基因或外源性RNA分子作為陽性對照。由于反應(yīng)中產(chǎn)生大量焦

11、磷酸鎂,可以肉眼判斷結(jié)果,無需凝膠電泳。作者用該方法檢測了SARS病毒后,又檢測了H1H3的AIV,與常規(guī)方法比較符合率為100%。5  基因芯片將RTPCR獲得的cDNA固化于芯片,利用核酸探針技術(shù)構(gòu)建的檢測流感病毒A、B及其亞型的芯片平臺, Cy3、Cy5標(biāo)記的核酸探針與靶DNA雜交,可以進(jìn)一步鑒別混合體系中擴(kuò)增產(chǎn)物。Li等19用cDNA芯片及mRTPCR對流感病毒進(jìn)行檢測及分型,結(jié)果顯示cDNA芯片為基于PCR的診斷技術(shù)提供了補(bǔ)充,因為基于PCR的方法,直接從DNA擴(kuò)增片段大小不足以證明是目的產(chǎn)物。王秀榮等20依據(jù)M蛋白進(jìn)行基因型別鑒定和HA基因亞型鑒定,用Cy5熒光標(biāo)記,在基因芯片平臺上構(gòu)建檢測H5、H7、H9亞型禽流感病毒(AIV)的實驗技術(shù)模型,檢測AIV的cDNA,雜交達(dá)到預(yù)期結(jié)果。Kessler等

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