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1、關(guān)于重組導(dǎo)入受體細(xì)胞 (2)第一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第五節(jié) 重組DNA導(dǎo)入受體細(xì)胞 按 DNA片段連接重組的方法,目的基因與載體連接后成為重組 DNA 分子。而重組 DNA分子只有進(jìn)入適宜的受體細(xì)胞后才能進(jìn)行大量的擴(kuò)增和有效的表達(dá)。目的基因能否有效地進(jìn)入受體細(xì)胞,除了選用上述合適的克隆載體外,還取決于選用的受體細(xì)胞和轉(zhuǎn)移方法。一、受體細(xì)胞二、重組DNA導(dǎo)入受體細(xì)胞的途徑第二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月一、受體細(xì)胞1. 受體細(xì)胞的定義與選擇原則2. 受體細(xì)胞的類型第三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月1. 受體細(xì)胞的定義與選擇原則(1)受體細(xì)胞指能夠攝
2、取外源DNA(基因)并使其穩(wěn)定遺傳的細(xì)胞。作為基因工程的受體細(xì)胞,從實(shí)驗(yàn)技術(shù)上講是能攝取外源 DNA(基因),并使其穩(wěn)定維持的細(xì)胞;從實(shí)驗(yàn)?zāi)康纳现v是有應(yīng)用價(jià)值或理論研究?jī)r(jià)值的細(xì)胞。原核生物細(xì)胞和真核生物細(xì)胞可作為受體細(xì)胞,但不是所有細(xì)胞都可以作為受體細(xì)胞。在目的基因與載體連接成重組DNA分子以后,下面的重要工作主要是將其導(dǎo)入受體細(xì)胞進(jìn)行擴(kuò)增和篩選,獲得大量的重組DNA分子,這就是外源基因的無(wú)性繁殖,即克隆(cloning)。 第四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月(2)受體細(xì)胞的選擇原則據(jù)所用載體體系及受體細(xì)胞的基因型進(jìn)行選擇;重組體的轉(zhuǎn)化或轉(zhuǎn)染率高;能夠穩(wěn)定遺傳;受體細(xì)胞基因型與載體
3、所含的選擇標(biāo)記匹配;易于篩選重組體;外源基因可以高效表達(dá)和穩(wěn)定遺傳;此外,安全性、導(dǎo)入方法、翻譯及后加工機(jī)制和生產(chǎn)應(yīng)用價(jià)值等。第五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月2. 受體細(xì)胞的類型(1)微生物表達(dá)系統(tǒng)(是較為理想的受體細(xì)胞)優(yōu)點(diǎn): 無(wú)纖維素組成的堅(jiān)硬細(xì)胞壁,便于外源 DNA 進(jìn)入;無(wú)核膜,外源DNA 與裸露的染色體 DNA 重組簡(jiǎn)單;基因組小,便于對(duì)引入的外源基因進(jìn)行遺傳分析;容易獲得一致性的實(shí)驗(yàn)材料,培養(yǎng)簡(jiǎn)單,繁殖迅速,實(shí)驗(yàn)周期短,重復(fù)實(shí)驗(yàn)快。第六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月2. 受體細(xì)胞的類型(1)微生物表達(dá)系統(tǒng)缺點(diǎn):缺乏蛋白質(zhì)的修飾作用,故微生物細(xì)胞不能直接表達(dá)
4、真核生物基因,但可以通過(guò)對(duì)真核生物基因進(jìn)行適當(dāng)?shù)男揎椈虿捎胏DNA克隆而加以改進(jìn)。第七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月2. 受體細(xì)胞的類型(1)微生物表達(dá)系統(tǒng)常用微生物表達(dá)系統(tǒng):大腸桿菌枯草桿菌藍(lán)細(xì)菌棒狀桿菌和鏈霉菌酵母菌第八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月大腸桿菌優(yōu)勢(shì):全基因組測(cè)序共有4405個(gè)開(kāi)放型閱讀框架;克隆表達(dá)系統(tǒng)成熟完善,繁殖迅速、培養(yǎng)簡(jiǎn)單、遺傳穩(wěn)定,曾被美國(guó)FDA批準(zhǔn)為安全的基因工程受體生物,現(xiàn)已用來(lái)生產(chǎn)人胰島素、生長(zhǎng)素及干擾素等。劣勢(shì):缺乏對(duì)真核生物蛋白質(zhì)的復(fù)制、修飾后加工功能;內(nèi)源性蛋白酶降解空間構(gòu)象不正確的異源蛋白,含有種類繁多的內(nèi)毒素。第九張,PPT共
5、八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月枯草桿菌亦稱枯草芽孢桿菌。優(yōu)勢(shì): 具有胞外酶分泌調(diào)節(jié)基因,能將基因表達(dá)產(chǎn)物高效的分泌到培養(yǎng)基中,簡(jiǎn)化了加工提取工藝,所分泌的真核基因產(chǎn)物具有天然構(gòu)象和生物活性;不產(chǎn)生內(nèi)毒素,無(wú)致病性;具有芽孢形成能力,易于保存和培養(yǎng),代謝易控制。成功表達(dá)了-干擾素、白細(xì)胞介素、乙肝病毒核心抗原及淀粉酶、高溫脂肪酶等。劣勢(shì):產(chǎn)物易被自身分泌的蛋白酶分解,而且重組體穩(wěn)定性差。第十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月藍(lán)細(xì)菌亦稱藍(lán)藻,與細(xì)菌親緣關(guān)系密切。優(yōu)勢(shì):自養(yǎng)型,嫩能夠進(jìn)行光合作用釋放氧氣,培養(yǎng)簡(jiǎn)單易行,可能成為植物基因表達(dá)的宿主。現(xiàn)已獲得了高效表達(dá)的PHB等產(chǎn)物的藍(lán)藻工程菌(
6、用于生產(chǎn)可降解塑料),作為生物反應(yīng)器,大量生產(chǎn)藥物、燃料等具有應(yīng)用價(jià)值的產(chǎn)品。第十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月棒狀桿菌和鏈霉菌用于生產(chǎn)氨基酸和抗生素等產(chǎn)品。第十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月酵母菌是以芽殖或裂殖進(jìn)行無(wú)性繁殖的單細(xì)胞真核生物。優(yōu)勢(shì):除了真核生物細(xì)胞共有的特性外,還具有以下優(yōu)點(diǎn):基因結(jié)構(gòu)相對(duì)比較簡(jiǎn)單,對(duì)其基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制研究得比較清楚,便于基因工程操作;培養(yǎng)簡(jiǎn)單,適于大規(guī)模發(fā)酵生產(chǎn),成本低廉;外源基因表達(dá)產(chǎn)物能分泌到培養(yǎng)基中,便于產(chǎn)物的提取和加工;不產(chǎn)生毒素,是安全的受體細(xì)胞。 第十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月(2)植物表達(dá)系統(tǒng)主要是利
7、用農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)染的方法將目的基因?qū)?,多用于雙子葉植物。最突出的優(yōu)點(diǎn):體細(xì)胞的全能性,即一個(gè)分離的活細(xì)胞在合適的培養(yǎng)條件下,比較容易再分化成植株,這意味著一個(gè)獲得外源基因的體細(xì)胞可以培養(yǎng)出能穩(wěn)定遺傳的植株或品系。第十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月(2)植物表達(dá)系統(tǒng)不足之處:植物細(xì)胞有纖維素參與組成的堅(jiān)硬細(xì)胞壁,不利于攝取重組 DNA 分子。克服方法:纖維素酶處理獲得原生質(zhì)體,采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)法或用基因槍、電激儀處理等方法,同樣可使外源 DNA進(jìn)入植物細(xì)胞。第十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月(3)動(dòng)物細(xì)胞表達(dá)系統(tǒng)主要用于大規(guī)模的表達(dá)天然狀態(tài)的復(fù)雜蛋白質(zhì)或動(dòng)物疫苗、動(dòng)物品種遺
8、傳改良及人類基因的遺傳治療等。昆蟲(chóng)細(xì)胞:能表達(dá)原核基因和哺乳動(dòng)物基因,具有較強(qiáng)的分泌能力和修飾能力,但糖基化的寡糖鏈與人類糖蛋白的相差較大,多用于抗體生產(chǎn)。哺乳動(dòng)物細(xì)胞:具有很強(qiáng)的蛋白質(zhì)修飾能力,基因產(chǎn)物分泌能力強(qiáng),有很強(qiáng)的遺傳穩(wěn)定性和可重復(fù)性,但組培條件要求苛刻,易污染,成本高。第十六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月二、重組DNA導(dǎo)入受體細(xì)胞的途徑轉(zhuǎn)化:transfermation,通過(guò)生物學(xué)或理化方法使質(zhì)粒DNA或以質(zhì)粒DNA為載體構(gòu)建的重組DNA導(dǎo)入受體細(xì)胞內(nèi),并在受體內(nèi)穩(wěn)定維持和表達(dá)的過(guò)程,主要用于原核生物。轉(zhuǎn)染:transfection,是轉(zhuǎn)化的一種特殊形式,指病毒或以病毒
9、為載體構(gòu)建的重組DNA導(dǎo)入受體細(xì)胞,并使宿主遺傳性狀發(fā)生改變的過(guò)程,其中包括DNA、RT-DNA及RNAi,主要用于原核生物。第十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 重組DNA導(dǎo)入宿主細(xì)胞的類型轉(zhuǎn)導(dǎo):( transduction ) 以噬菌體作載體構(gòu)建的重組體導(dǎo)入受體細(xì)胞的過(guò)程。 第十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月1. 直接轉(zhuǎn)化法有的微生物細(xì)胞在不加任何處理的情況下就能直接攝取外源 DNA,只要外源 DNA與這樣的細(xì)胞混合,在適宜的條件下懸浮培養(yǎng),就能完成外源 DNA 的轉(zhuǎn)化。細(xì)菌轉(zhuǎn)化 :指一種細(xì)菌菌株由于捕獲了來(lái)自另一細(xì)菌菌株的DNA,而導(dǎo)致性狀特征發(fā)生遺傳性改變的生
10、命過(guò)程。這種提供轉(zhuǎn)化DNA的菌株叫給體菌株,而接受轉(zhuǎn)化DNA的寄主菌株叫受體菌株。第十九張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 大腸桿菌是目前基因工程中最常用的受體細(xì)胞。 通常采用的是大腸桿菌的感受態(tài)細(xì)胞,即在冰浴中用一定濃度的CaCl2處理對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的大腸桿菌,以獲得高效轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細(xì)胞。也有采用Rb+、Mn2+、K+、二甲亞礬、二硫蘇糖醇(DTT)或用氯化己胺鈷處理制備感受態(tài)細(xì)胞。感受態(tài)細(xì)胞(competent cell):具有易于接受外源DNA能力的細(xì)胞。 感受態(tài):是指受體細(xì)胞能吸收外源DNA分子而有效地作為轉(zhuǎn)化受體的某些生理狀態(tài)。一般受體細(xì)胞在對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期轉(zhuǎn)化能力最強(qiáng)。第二十張,PP
11、T共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月本質(zhì)兩種假說(shuō)一局部原生質(zhì)體化假說(shuō):細(xì)菌表面的細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)發(fā)生變化,即局部失去細(xì)胞壁或局部溶解細(xì)胞壁,使DNA分子能夠通過(guò)質(zhì)膜進(jìn)入細(xì)胞二酶受體假說(shuō):感受態(tài)細(xì)胞表面形成一種能夠接受DNA的酶切位點(diǎn),使DNA分子能夠進(jìn)入細(xì)胞第二十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月大腸桿菌接種于瓊脂培養(yǎng)基37培養(yǎng)基(一) 感受態(tài)細(xì)胞的制備: 1、從新活化的E.coli DH5平板上挑取一單菌落,接種于35ml LB液體培養(yǎng)中,37振蕩培養(yǎng)至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期(12h左右); 2、將該菌懸液以1:1001:50轉(zhuǎn)接于100ml LB液體培養(yǎng)基中,37振蕩擴(kuò)大培養(yǎng),當(dāng)培養(yǎng)液開(kāi)始出現(xiàn)混濁后
12、,每隔2030min測(cè)一次OD600,至OD600為0.30.5時(shí)停止培養(yǎng),并轉(zhuǎn)裝到1.5 mL離心管中; 3、培養(yǎng)物于冰上放置20min; 4、 04,4000g離心10min,棄去上清液,加入1 mL冰冷的0.1mo1L CaCl2溶液,小心懸浮細(xì)胞, 冰浴20分鐘;感受態(tài)細(xì)胞制備Preparation of competent cell第二十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 5、04, 4000g離心10min,倒凈上清培養(yǎng)液,再用1.0 mL冰冷的0.1mo1L CaCl2溶液輕輕懸浮細(xì)胞,冰浴20min; 6、 04, 4000g離心10min,棄去上清液,加入100 L
13、冰冷的0.1mo1L CaCl2溶液,小心懸浮細(xì)胞,冰上放置片刻后,即制成了感受態(tài)細(xì)胞懸液; 7、制備好的感受態(tài)細(xì)胞懸液可直接用于轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn),如果在4放置1224h,其轉(zhuǎn)化效率可以增高46倍;也可加入占總體積15左右高壓滅菌過(guò)的甘油,混勻后分裝于1.5ml離心管中,置于-70條件下,可保存半年至一年。第二十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月注意事項(xiàng)1細(xì)菌的生長(zhǎng)狀態(tài):實(shí)驗(yàn)中應(yīng)密切注視細(xì)菌的生長(zhǎng)狀態(tài)和密度,盡量使用對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞(一般通過(guò)檢測(cè)OD600來(lái)控制。DH5菌株OD600為0.5時(shí)細(xì)胞密度是5107/ml);2 所有操作均應(yīng)在無(wú)菌條件和冰上進(jìn)行;3 經(jīng)CaCl2處理的細(xì)胞,在低溫
14、條件下,一定的時(shí)間內(nèi)轉(zhuǎn)化率隨時(shí)間的推移而增加,24h達(dá)到最高,之后轉(zhuǎn)化率再下降(這是由于總的活菌數(shù)隨時(shí)間延長(zhǎng)而減少造成的);4 化合物及無(wú)機(jī)離子的影響:在Ca2+的基礎(chǔ)上聯(lián)合其他二價(jià)金屬離子(如Mn 2+或Co 2+)、DMSO或還原劑等物質(zhì)處理細(xì)菌,可使轉(zhuǎn)化效率大大提高(100-1000倍);第二十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月5 所使用的器皿必須干凈。跡量的去污劑或其它化學(xué)物質(zhì)的存在可能大大降低細(xì)菌的轉(zhuǎn)化效率;6 質(zhì)粒的大小及構(gòu)型的影響:用于轉(zhuǎn)化的應(yīng)主要是超螺旋的DNA;7 一定范圍內(nèi),轉(zhuǎn)化效率與外源DNA的濃度呈正比;第二十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月2.
15、高壓電穿孔轉(zhuǎn)化法 (1)Electroproration原理:利用高壓電脈沖作用,使細(xì)胞膜上產(chǎn)生可逆的瞬間通道,從而促進(jìn)外源DNA和高分子物質(zhì)進(jìn)入細(xì)胞質(zhì)內(nèi)而實(shí)現(xiàn)基因轉(zhuǎn)化,但不傷及細(xì)胞,切斷電場(chǎng)后,被擊穿的膜孔可以自行恢復(fù)。(2)過(guò)程:把宿主細(xì)胞置于外加電場(chǎng)中,通過(guò)電脈沖作用在細(xì)胞膜上打孔,DNA分子進(jìn)入細(xì)胞。第二十六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月3. 高壓電穿孔轉(zhuǎn)化法(3)條件:電壓300600V、時(shí)間20100ms、溫度0。(4)適用范圍:酵母菌、霉菌等真核生物,適用于農(nóng)桿菌感染不敏感的植物。(5)形式:電穿孔 第二十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月例如:高壓電穿孔法
16、轉(zhuǎn)化細(xì)菌對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)菌冷卻離心低鹽緩沖液清洗用10%甘油懸浮細(xì)胞干冰速凍-70貯存外加電場(chǎng)(300-600V維持20100ms)電脈沖轉(zhuǎn)化細(xì)胞0-4 第二十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月4. 微彈轟擊轉(zhuǎn)化法(microprojectile bombardment,particle bombardment )該法亦稱基因槍法(particle gun),粒子轟擊法,生物彈法(Biolistics)。(1)原理:金屬微粒在外力作用下,達(dá)到一定速度后,將包裹在金屬顆粒表面的外源DNA分子隨金屬顆粒一起進(jìn)入植物細(xì)胞,但又不引起細(xì)胞致命傷害而維持正常的生命活動(dòng)。(2)過(guò)程:外源DNA與鎢
17、、金等金屬微?;旌?,使DNA吸附在微粒表面;用基因槍轟擊,通過(guò)氦氣沖擊波使DNA隨金屬微粒進(jìn)入植物細(xì)胞。第二十九張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月基因槍介導(dǎo)的DNA轉(zhuǎn)移基因槍法最早是由美國(guó)康奈爾大學(xué)的Sanford(1987)最先提出的。它通過(guò)高速飛行的金屬顆粒將包被其外的目的基因直接導(dǎo)入到受體細(xì)胞內(nèi),從而實(shí)現(xiàn)基因轉(zhuǎn)化的方法。1992年,世界首例轉(zhuǎn)基因小鼠就是通過(guò)該法獲得的。第三十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月一類是以火藥爆炸力作為動(dòng)力加速微彈;第二類是以高壓氣體(high pressure gas)作為動(dòng)力,如以氦氣、氫氣、氮?dú)獾取F涔ぷ髟硎前演d有DNA的鎢(金)粉噴灑
18、在一張微粒載片上,電極間懸滴著微水滴。在壓縮空氣的沖擊下,微水滴霧狀噴射,驅(qū)動(dòng)載片。當(dāng)載片受阻于金屬篩網(wǎng)時(shí),載有DNA的鎢(金)粒繼續(xù)向下沖擊射入細(xì)胞。第三十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第三十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第三十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 第三類是以高壓放電為驅(qū)動(dòng)力。其最大優(yōu)點(diǎn)是可以無(wú)級(jí)調(diào)速,通過(guò)變化工作電壓,粒子速度及射入濃度可準(zhǔn)確控制,使載有DNA的鎢(金)粉粒子能到達(dá)具有再生能力的細(xì)胞層。這一點(diǎn)非常重要,因?yàn)椴煌耐庵搀w需要不同的參數(shù)。采用該放電轟擊、已在大豆和水稻上成功地獲得了轉(zhuǎn)基因植株(Christou等,1992)第三
19、十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第三十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第三十六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第三十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第三十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月DNA微粒載體的制備原理是CaCl2對(duì)DNA沉淀作用,亞精胺、聚乙二醇具有粘附作用、將這些化合物與DNA混合后與鎢粉或金粉混合,吹干后,則DNA沉淀在載體顆粒上第三十九張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月步驟(1)DNA微彈的制備 1)微粒體的洗滌取60-100mg鎢粉或金粉,其微粒直徑最好選擇為細(xì)胞直徑的1/10,并溶于1ml無(wú)水乙醇中,用超聲
20、波振蕩洗滌。微粒體處理后可在密閉條件下,室溫貯存1周。離心盡量除去乙醇。加1ml無(wú)菌水振蕩離心,移去上清液,如此重復(fù)2次,將殘留的乙醇除凈,再用1ml無(wú)菌水重懸沉淀,密閉貯存于室溫中,備用,保存時(shí)間不要超過(guò)1周。第四十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月2)DNA微粒載體的制備上述微粒貯存液離心移去上清液,加1ml無(wú)菌水重懸;每份樣品取25l微粒重懸液,加入25 l DNA(1 g/ l),手指振蕩3次,充分混勻; 加入25l2.5mol/LCaCl2溶液,手指振蕩5次;加入20l40PEG 4000,手指振蕩5次;加入2.5ml0.1mol/L亞精胺,手指振蕩5次;混合液在室溫靜置10
21、min,使DNA沉淀到微粒體上;離心5min,移去50-60l上清液(嚴(yán)格掌握體積,使剩余溶液量可以進(jìn)行3次槍擊);制備好的DNA微粒載體,可在冰水中保存,但不能超過(guò)4個(gè)小時(shí),槍擊時(shí)每次取樣8l。 注意:上述制備過(guò)程均在無(wú)菌條件下操作。第四十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 3)靶外植體材料準(zhǔn)備在無(wú)菌條件下截取靶外植體(有菌的外植體按常規(guī)方法消毒處理),放于樣品皿中,外植體大小按基因槍要求選擇;在無(wú)菌條件下,把靶外植體放入基因槍的樣品室,并對(duì)準(zhǔn)子彈發(fā)射軸心。 4)DNA微彈轟擊,按照不同的基因槍說(shuō)明書操作。 5)轟擊后外植體的培養(yǎng)。DNA微彈轟擊后立刻轉(zhuǎn)入相應(yīng)的培養(yǎng)基中培養(yǎng),以免材
22、料脫水加重細(xì)胞受傷害的程度,獲得再生植株。第四十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 轉(zhuǎn)化率及其影響因素關(guān)于基因槍法的轉(zhuǎn)化率,目前不同的作者報(bào)告差別很大,不同的植物、同一植物的不同外植體均有明顯差異。一般在10-4-10-2頻率范圍。第四十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月影響轉(zhuǎn)化率的因素:1)金屬微粒的影響 目前主要采用兩種金屬微粒作為DNA包裹的載體:一種是鎢粉,其微粒直徑可根據(jù)不同植物材料進(jìn)行選擇,一般以0.6m至4m為宜,其優(yōu)點(diǎn)是廉價(jià)易得,制備容易。金粉顆粒,其比鎢粒具有更規(guī)則的球形體積,可以在相同體積下取得最大的附著面積;化學(xué)性質(zhì)也更為穩(wěn)定,也不像鎢粒那樣形成氧化膜
23、。此外,金粉對(duì)DNA的吸附力更強(qiáng),許多學(xué)者認(rèn)為金粉比鎢粉更理想,但金粉價(jià)格昂貴,仍然應(yīng)用較少。第四十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 (2)DNA沉淀輔助劑的影響 目前常用的DNA沉淀輔助劑有CaCl2、亞精胺、聚乙二醇等。這些化合物的濃度不僅對(duì)DNA在鎢(金)粉上的粘附有重要影響,而且對(duì)植物受體細(xì)胞的傷害也至關(guān)重要。 (3)DNA的純度及濃度對(duì)轉(zhuǎn)化率的影響 DNA的純度越高越容易獲得成功的轉(zhuǎn)化,加入攜帶DNA如4-6kb的小牛胸腺DNA及鮭魚精DNA??商岣咿D(zhuǎn)化率、但混雜的DNA起干擾作用。DNA的濃度對(duì)微彈轉(zhuǎn)化率也有影響。 (4)微彈速度的影響 基因槍的轟擊參數(shù),DNA粒子速度
24、、入射濃度、阻擋板至樣品室高度、轟擊次數(shù)等均影響轉(zhuǎn)化率,其中微彈的速度是影響轉(zhuǎn)比率的一個(gè)重要因素。它直接決定了微彈對(duì)細(xì)胞、組織的作用力及產(chǎn)生損傷的程度 不同的植物材料、不同的轉(zhuǎn)化要求,應(yīng)選擇不同的速度。第四十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月特點(diǎn)無(wú)宿主限制:?jiǎn)巫尤~和雙子葉植物適用,動(dòng)物、微生物也適用靶受體類型廣泛:原生質(zhì)體、葉圓片、愈傷組織、懸浮液細(xì)胞、莖段、胚、花粉可控度高;高壓氣體基因槍已可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要無(wú)級(jí)調(diào)控微彈的速度和射入濃度,可以較高的命中率把DNA微粒載體射入特定層次的細(xì)胞從而為基因轉(zhuǎn)化提供可靠的技術(shù)措施。操作簡(jiǎn)便快速,甚至可克服無(wú)菌的困難。第四十六張,PPT共八十九頁(yè),
25、創(chuàng)作于2022年6月 不少問(wèn)題值得進(jìn)一步研究例如,轉(zhuǎn)化頻率低,目前大多數(shù)只報(bào)道轉(zhuǎn)化后的瞬時(shí)表達(dá),而穩(wěn)定遺傳的比例甚差,外源DNA的整合機(jī)理等理論問(wèn)題也不清楚、應(yīng)該說(shuō)基因槍轉(zhuǎn)化技術(shù)只處在研究階段,尚未成熱。第四十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月4. 微彈轟擊轉(zhuǎn)化法(3)適用范圍:植物細(xì)胞。(4)特點(diǎn):操作簡(jiǎn)單,轉(zhuǎn)化率高,省去了分離原生質(zhì)體的麻煩,耗資較大。第四十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月5. 顯微注射法(microinjection)(1)原理:利用顯微注射儀,通過(guò)機(jī)械方法把外源DNA直接注入細(xì)胞質(zhì)或細(xì)胞核(需用特制的玻璃微管)。倒置顯微注射儀第四十九張,PPT共八
26、十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第五十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月5. 顯微注射法(2)過(guò)程:將外源基因直接注入實(shí)驗(yàn)動(dòng)物受精卵原核,外源基因整合到動(dòng)物基因組,通過(guò)胚胎移植把含有外源基因的受精卵移植到受體子宮并發(fā)育。(3)適用范圍:真核生物,早期用于動(dòng)物,現(xiàn)已應(yīng)用于植物。(4)特點(diǎn):繁瑣耗時(shí)、轉(zhuǎn)化率高,但需專門的顯微注射儀,且要求操作者有精細(xì)的操作技術(shù)和低密度細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)。第五十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月受體細(xì)胞的固定動(dòng)物細(xì)胞具有獨(dú)特的貼壁生長(zhǎng)待性,不存在固定細(xì)胞的問(wèn)題植物細(xì)胞必須先建立細(xì)胞固定技術(shù)目前有三種方法:第五十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月瓊脂
27、糖包埋法:把低熔點(diǎn)的瓊脂糖熔化,冷卻到一定溫度后將制備的細(xì)胞懸浮液混合于瓊脂糖中。需要注意的問(wèn)題是,在包埋時(shí)細(xì)胞約1/3-1/2暴露在瓊脂糖表面,即細(xì)胞體的一半埋在瓊脂糖中,起固定作用,暴露的一半細(xì)胞可一進(jìn)行微針注射、否則瓊脂固化后很難進(jìn)行。多聚-L-賴氨酸粘連法:先用多聚-L-賴氨酸處理玻片表面,由于聚賴氨酸對(duì)細(xì)胞有粘連作用,因此當(dāng)分離的細(xì)胞或原生質(zhì)體與玻片接觸時(shí)被固定在玻片上。而且一個(gè)破片上可固定較多數(shù)量的細(xì)胞或原生質(zhì)體。第五十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月吸管支持法:用一固定的毛細(xì)管將原生質(zhì)體或細(xì)胞吸著在管口起到固定作用,然后再用微針進(jìn)行DNA注射。這種方法的優(yōu)點(diǎn)是吸管可以
28、旋轉(zhuǎn)或移動(dòng)位置使操作者能選擇最佳位置進(jìn)行注射。 顯微注射用的微針通常用拉針機(jī)制備,尖針直徑以0.5m左右為宜。一次注入細(xì)胞質(zhì)中的DNA量約為10-9ml。第五十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月轉(zhuǎn)化率及影響因素 顯微注射雖然操作繁瑣耗時(shí),但其轉(zhuǎn)化效率很高已發(fā)展出一套完善的技術(shù),在煙草、油菜、苜蓿等植物的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)化率高達(dá)60以上。影響轉(zhuǎn)化率的因素。(1)原生質(zhì)體的成活率是轉(zhuǎn)化率的重要因素,只有注射那些能夠分裂、成活的原生質(zhì)體才能得到轉(zhuǎn)化。因此,注射時(shí)要選擇啟動(dòng)分裂、細(xì)胞壁開(kāi)始形成的原生質(zhì)體進(jìn)行注射。 (2)線性DNA比環(huán)形DNA具有更高的轉(zhuǎn)化率。 (3)操作要迅速敏捷,選擇最佳的注射
29、強(qiáng)力和濃度,使細(xì)胞的損傷減少到最小程度。 (4)固定技術(shù)要可靠,不能損傷細(xì)胞。第五十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月顯微注射特點(diǎn)方法簡(jiǎn)單、轉(zhuǎn)化率高;6-8%它是一種純粹的物理方法,適用于各種植物和各種材料,無(wú)局限性;整個(gè)操作過(guò)程對(duì)受體細(xì)胞無(wú)藥物等毒害,有利于轉(zhuǎn)化細(xì)胞的生長(zhǎng)發(fā)育;轉(zhuǎn)化細(xì)胞的培養(yǎng)過(guò)程無(wú)需特殊的選擇系統(tǒng)。其缺點(diǎn)是需要有精細(xì)操作的技術(shù)及低密度培養(yǎng)的基礎(chǔ),注射速度慢、效率低,要求研究者有耐心。第五十六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月6. 脂質(zhì)體(liposome)介導(dǎo)法(1)原理:受體細(xì)胞的細(xì)胞膜表面帶負(fù)電荷,脂質(zhì)體顆粒帶正電荷,利用引力的作用把遺傳物質(zhì)導(dǎo)入細(xì)胞內(nèi)。
30、即用脂類化學(xué)物質(zhì)包裹DNA成球體,通過(guò)植物原生質(zhì)體的吞噬或融合作用把內(nèi)含物轉(zhuǎn)入受體細(xì)胞。脂質(zhì)體是根據(jù)生物膜的結(jié)構(gòu)功能特性合成生物膜,然后把DNA包裹在人工膜內(nèi)。 第五十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第五十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月6. 脂質(zhì)體介導(dǎo)法(2)過(guò)程:在形成脂質(zhì)體時(shí),把用來(lái)轉(zhuǎn)染的目的DNA分子包裹在其中;脂質(zhì)體與細(xì)胞接觸;外源DNA分子導(dǎo)入受體細(xì)胞。(3)適用范圍:真核細(xì)胞。(4)特點(diǎn):包在脂質(zhì)體內(nèi)的 DNA可免受細(xì)胞內(nèi)核酸酶的降解,所以可直接轉(zhuǎn)化外源 DNA;對(duì)植物病毒RNA的轉(zhuǎn)化率高;如用PEG誘導(dǎo)脂質(zhì)體與原生質(zhì)體融合可獲得高的轉(zhuǎn)化率。4 10-5第
31、五十九張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 影響脂質(zhì)體轉(zhuǎn)化率的因素很多:脂質(zhì)體的制備類型、方法均有明顯差異;PEG的濃度、加入時(shí)間、PH值及ca”濃度均起到重要作用;保溫培養(yǎng)及轉(zhuǎn)化時(shí)的條件同樣十分重要。第六十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月 近年來(lái)美國(guó)BRL公司推小一種新型脂質(zhì)體即轉(zhuǎn)化脂(1ipofectia,它主要是由具有強(qiáng)電荷的N-1-(2,3-dioleyoxy)propylN,N,N,trimethylammonium chloride(DOTMA)-(N-1-(2,3二油酰)丙酰N,N,N三甲氨鹽酸鹽)和磷酯組成的小單層脂質(zhì)體(SUV)。借助于DOTMA的強(qiáng)正電荷,可
32、以與帶有負(fù)電荷的DNA分子自發(fā)地結(jié)合,只要把轉(zhuǎn)化脂與DNA簡(jiǎn)單地混合,即可形成轉(zhuǎn)化脂與DNA的復(fù)合體,把DNA包裹在脂質(zhì)體內(nèi),并可有效地轉(zhuǎn)化動(dòng)植物細(xì)胞。此方法不僅可明顯提高轉(zhuǎn)化率,而且由于這種脂質(zhì)體有商品出售,免去耗時(shí)的制備上作,操作簡(jiǎn)便,反應(yīng)條件溫和。朱禎等1990年首次利用此脂質(zhì)體將人的干擾素cDNA導(dǎo)入水稻原生質(zhì)體獲得轉(zhuǎn)基因植株,并檢測(cè)了干擾素在水稻細(xì)胞中的有效表達(dá)轉(zhuǎn)化頻率提高到14。第六十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月7. 花粉管通道法(1)原理:在花粉管通道形成之后封閉之前一段時(shí)間,使外源DNA能沿著花粉管通道進(jìn)入胚囊,轉(zhuǎn)化尚不具正常細(xì)胞壁的卵細(xì)胞、合子或早期胚胎細(xì)胞,
33、從而實(shí)現(xiàn)基因的轉(zhuǎn)移。(2)適用范圍:植物第六十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月7. 花粉管通道法(3)特點(diǎn):直接得到轉(zhuǎn)化種子,不經(jīng)過(guò)組培,減少了基因型的影響;操作簡(jiǎn)單經(jīng)濟(jì),無(wú)需昂貴儀器和化學(xué)藥品,可直接在大田操作;大量快捷,性狀穩(wěn)定,轉(zhuǎn)化率高;可獲得110-2110-1的高遺傳轉(zhuǎn)化率。 不僅可以導(dǎo)入供體的總DNA,而且可導(dǎo)入含目的基因的質(zhì)粒,甚至可將化學(xué)誘變劑導(dǎo)入胚囊。缺點(diǎn):工作時(shí)間受自然花期限制,田間操作受環(huán)境影響大,基因組以隨機(jī)方式結(jié)合,要求工作人員經(jīng)濟(jì)性要強(qiáng),工作效率較低。第六十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月我國(guó)科學(xué)家周光宇在1983年首次在“Methods i
34、n En-zymology”報(bào)道的研究成果?,F(xiàn)該技術(shù)主要在蔬菜育種上應(yīng)用。(白菜、茄子、黃瓜、番茄、辣椒等操作步驟1.外源DNA的制備2. 分析受體植物的受精過(guò)程及時(shí)間,確定導(dǎo)入外源DNA的時(shí)間方法(3種) 柱頭涂抹法 柱頭切除法 花粉粒吸入法3.后代材料處理第六十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月9. 激光微束穿孔轉(zhuǎn)化法 早在1984年Tao等首先利用激光微束對(duì)動(dòng)物細(xì)胞進(jìn)行DNA轉(zhuǎn)化試驗(yàn)、此庸Web等利用激光微束技術(shù)對(duì)原生質(zhì)體、花粉以及活細(xì)胞內(nèi)的葉綠體進(jìn)行外源DNA導(dǎo)入獲得成功,并用熒光標(biāo)記的大腸桿菌pBR322質(zhì)粒DNA在轉(zhuǎn)化細(xì)胞中得到檢測(cè)。(1)原理:利用直徑很小、能量很高的激
35、光微束能引起細(xì)胞膜可逆性穿孔的原理。在熒光顯微鏡下找適合的細(xì)胞,然后用激光代替熒光光源,聚焦后發(fā)出激光微束脈沖,造成膜穿孔外于細(xì)胞周圍的外源DNA分子隨之進(jìn)入受體細(xì)胞。第六十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月9. 激光微束穿孔轉(zhuǎn)化法(2)特點(diǎn):操作簡(jiǎn)便快捷,轉(zhuǎn)化效率高10-3-10-4,無(wú)宿主限制,但需要貴重儀器,技術(shù)條件要求高,穩(wěn)定性和安全性不如電穿孔法和基因槍法。(3)適用范圍:動(dòng)植物細(xì)胞、組織、器官及線粒體、葉綠體。第六十六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月過(guò)程1)DNA的提取2)受體植物樣品制備:將欲照射的植物細(xì)胞或組織用高滲緩沖液浸泡數(shù)分鐘,不同作物不同外植體所用高
36、滲液不同,浸泡時(shí)間也不同。 3)轉(zhuǎn)導(dǎo)細(xì)胞懸浮液準(zhǔn)備:激光照射前洗去高滲液,加新鮮培養(yǎng)液。吸取0.5mI細(xì)胞懸浮液,加50ul質(zhì)粒DNA或植物外源DNA(濃度5ugml)一起注入激光微束系統(tǒng)的Rose小室。第六十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月4)激光微束照射:激光微束顯微照射裝置如為NdYAG四集倍頻脈沖激光冠微照射系統(tǒng)、即輸出波長(zhǎng)技需要選擇,脈寬10-15ns。激光束引入一臺(tái)相差顯微鏡,用40物鏡聚焦Y于欲照射的細(xì)胞。光斑直徑為1.3nm。照射時(shí)移動(dòng)載物臺(tái),使激光脈沖在植物細(xì)胞團(tuán)上進(jìn)行掃描照射,照射時(shí)間每個(gè)佯品60分鐘,約打7000個(gè)脈沖。 5)培養(yǎng):激光照射后,將樣品用新鮮的培
37、養(yǎng)液沖洗1-2次,然后接種在裝有液體培養(yǎng)基的小培養(yǎng)皿中,25度條件下懸浮培養(yǎng)2-3天或固體培養(yǎng)。第六十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第六十九張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月10. 病毒顆粒轉(zhuǎn)導(dǎo)法(1)原理:用病毒(噬菌體)DNA(或 RT-DNA)構(gòu)建的克隆載體或攜帶目的基因的克隆體,在體外包裝成病毒(噬菌體)顆粒后,感染受體細(xì)胞,使其攜帶的重組 DNA 進(jìn)入受體細(xì)胞,將此過(guò)程稱為病毒(噬菌體)顆粒轉(zhuǎn)導(dǎo)法。(2)適用范圍:主要用于構(gòu)建基因文庫(kù)和物的轉(zhuǎn)基因,早期也用于植物的轉(zhuǎn)基因。 第七十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月10. 病毒顆粒轉(zhuǎn)導(dǎo)法(3)類型:帶有目的
38、基因的病毒顆粒直接感染受體細(xì)胞,目的基因打隨同病毒DNA分子整合到受體細(xì)胞染色體DNA上,這樣以后不需要再包裝成病毒顆粒。帶有目的基因的病毒是缺陷型的,需同另一輔助病毒一起感染受體細(xì)胞,在受體細(xì)胞內(nèi)包裝成新的病毒顆粒。雖然帶有目的基因的SV40早期轉(zhuǎn)錄是缺陷型的,但被感染的cos細(xì)胞系的基因組中整合的SV40早期轉(zhuǎn)錄區(qū)段DNA,所以無(wú)需輔助病毒做混合感染。第七十一張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月11. 磷酸鈣轉(zhuǎn)染法(1)原理:哺乳動(dòng)物細(xì)胞能捕獲黏附在細(xì)胞表面的DNA-磷酸鈣沉淀物,使DNA轉(zhuǎn)入細(xì)胞。(2)基本操作過(guò)程:將待轉(zhuǎn)染的外源 DNA同CaCl2混合制成CaCl2-DNA溶液,
39、逐滴加入到不斷攪拌的Hepers-磷酸鈣溶液中,形成DNA-磷酸鈣共沉淀復(fù)合物;用吸管將沉淀復(fù)合物黏附在哺乳動(dòng)物單層培養(yǎng)細(xì)胞表面;保溫幾小時(shí)后,用新鮮培養(yǎng)液洗凈細(xì)胞,再用新鮮培養(yǎng)茹繼續(xù)培養(yǎng),直至外源基因表達(dá)。第七十二張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月11. 磷酸鈣轉(zhuǎn)染法(3)特點(diǎn):多使用高濃度的DNA,1050g/ml;保溫時(shí)間隨受體細(xì)胞而異;Hepers-磷酸鈣溶液應(yīng)不斷攪拌,DNA溶液則應(yīng)緩慢加入,否則形成大塊狀顆粒,不利于受體細(xì)胞吸納。(4)適用范圍:哺乳動(dòng)物細(xì)胞。第七十三張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月12. DEAE-葡聚糖轉(zhuǎn)染法即二乙胺乙基葡聚糖法(1)可能機(jī)制:
40、DEAE葡聚糖能與外源DNA形成復(fù)合物,保護(hù)DNA免受核酸降解 DEAE葡聚糖可作用于受體細(xì)胞,增加其通透性,便于DNA進(jìn)入。(2)類型:病毒DNA直接與DEAE-葡聚糖混合形成復(fù)合物,再處理受體細(xì)胞;受體細(xì)胞先用DEAE-葡聚糖處理,然后再接觸DNA。(3)特點(diǎn):方法簡(jiǎn)單,重復(fù)性高,轉(zhuǎn)染率高于磷酸鈣法,但轉(zhuǎn)染哺乳動(dòng)物細(xì)胞不能獲得穩(wěn)定的細(xì)胞系,故僅適用于基因瞬時(shí)表達(dá)研究。(4)適用范圍:哺乳動(dòng)物細(xì)胞 第七十四張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月13. 聚陽(yáng)離子DMSO轉(zhuǎn)染法(1)原理:采用聚陽(yáng)離子poly-brene處理哺乳動(dòng)物細(xì)胞,以增加細(xì)胞表面對(duì)DNA的吸附能力,然后用25%30%D
41、MSO短暫處理細(xì)胞,增加膜的通透性,以提高對(duì)外源DNA的捕獲量(2)適用范圍:哺乳動(dòng)物細(xì)胞第七十五張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月14. 農(nóng)桿菌介導(dǎo)Ti質(zhì)粒載體轉(zhuǎn)化法(1)原理:植物受傷后,在傷口處分泌大量的酚類物質(zhì)如乙酰丁香酮AS、羥基乙酰丁香酮等,他們是農(nóng)桿菌識(shí)別敏感植物的信號(hào)分子,趨化性農(nóng)桿菌移向這些細(xì)胞,并將其Ti質(zhì)粒上的T-DNA轉(zhuǎn)移至細(xì)胞內(nèi)部,故目的基因與Ti質(zhì)粒結(jié)合后,通過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)轉(zhuǎn)入植物細(xì)胞,與染色體DNA整合而得以穩(wěn)定維持或表達(dá)。第七十六張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月外植體(子葉、上胚軸、莖段、愈傷組織)胚 狀 體轉(zhuǎn)基因檢測(cè)(GUS、PCR )進(jìn)一步檢
42、測(cè)( Southern blot 、 Northern blot、ELISA)LB繁殖菌體農(nóng)桿菌(Ti或Ri質(zhì)粒)轉(zhuǎn) 基 因 植 株田間實(shí)驗(yàn)、遺傳分析、功能鑒定侵 染 轉(zhuǎn) 化愈 傷 組 織共 培 養(yǎng)芽誘導(dǎo)生根 (試管嫁接)預(yù) 培 養(yǎng)農(nóng)桿菌介導(dǎo)法第七十七張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月農(nóng)桿菌介導(dǎo)法 (一)農(nóng)桿菌包括農(nóng)桿菌包括根癌農(nóng)桿菌(Ti質(zhì)粒)和發(fā)根農(nóng)桿菌(Ri質(zhì)粒),質(zhì)粒中含有一段可移動(dòng)的DNA稱為T-DNA,可作為外源DNA的載體。 (二)根癌農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化植物細(xì)胞的過(guò)程大致包括:1、農(nóng)桿菌對(duì)植物細(xì)胞表面特定部位的識(shí)別和附著;2、經(jīng)敏感細(xì)胞的誘導(dǎo)作用,位于Ti質(zhì)粒上控制T區(qū)的基因轉(zhuǎn)移的Vir區(qū)基因活化并表達(dá);3、T-DNA從Ti質(zhì)粒上切割下來(lái),通過(guò)細(xì)菌和植物細(xì)胞的壁,轉(zhuǎn)移并整合到植物細(xì)胞的核基因組中。第七十八張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月14. 農(nóng)桿菌介導(dǎo)Ti質(zhì)粒載體轉(zhuǎn)化法(2)類型: 整株感染:對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的野生農(nóng)桿菌感染植物細(xì)胞的受傷部位,將得到的腫瘤或發(fā)根切下,至于含羧芐青霉素的無(wú)激素培養(yǎng)基上培養(yǎng)并殺菌,這是獲得轉(zhuǎn)化細(xì)胞的最簡(jiǎn)單的方。該法實(shí)驗(yàn)周期短,操作簡(jiǎn)便,但在用轉(zhuǎn)化后形成的腫瘤組織時(shí),常會(huì)有未轉(zhuǎn)化的正常細(xì)胞,即形成的是嵌合體植株。第七十九張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于2022年6月第八十張,PPT共八十九頁(yè),創(chuàng)作于202
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