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ICS67.120.30B50
T/HBIQAT/HBIQA0003.1—2024食品中常見(jiàn)高組胺魚(yú)源性成分檢測(cè)方法1PCRDetectionofcommonHistamine-richfishderivedingredientinfoodPart1:DecapterusmaruadsiReal-timePCRmethod2024-08-15發(fā)布 2024-10-15實(shí)施河北省檢驗(yàn)檢疫學(xué)會(huì)發(fā)布T/HBIQA0003.1—2024T/HBIQA0003.1—2024前 言本文件按照GB/T1.1—2020《標(biāo)準(zhǔn)化工作導(dǎo)則第1部分:標(biāo)準(zhǔn)化文件的結(jié)構(gòu)和起草規(guī)則》的規(guī)定起草。T/HBIQA0003-2024《食品中常見(jiàn)高組胺魚(yú)源性成分檢測(cè)方法實(shí)時(shí)熒光PCR法系列標(biāo)準(zhǔn)》分為7個(gè)部分:1PCR2PCR3PCR4PCR5PCR6PCR法第7部分:藍(lán)點(diǎn)馬鮫實(shí)時(shí)熒光PCR法T/HBIQA0003.1-20241本文件主要起草人:劉立兵、王建昌、孫曉霞、陳志敏、蒲靜、王金鳳、艾連峰、付琦、董振國(guó)。T/HBIQA0003.1—2024T/HBIQA0003.1—2024PAGEPAGE2食品中常見(jiàn)高組胺魚(yú)源性成分檢測(cè)方法第1部分:藍(lán)圓鰺實(shí)時(shí)熒光PCR法范圍本部分規(guī)定了食品中藍(lán)圓鰺源性成分的實(shí)時(shí)熒光PCR檢測(cè)方法。本部分適用于食品中藍(lán)圓鰺源性成分的定性檢測(cè)。本部分所規(guī)定方法的最低檢出限(LOD)為0.1%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))。()GB/T6682分析實(shí)驗(yàn)室用水規(guī)格和試驗(yàn)方法GB/T27403實(shí)驗(yàn)室質(zhì)量控制規(guī)范食品分子生物學(xué)檢測(cè)術(shù)語(yǔ)和定義下列術(shù)語(yǔ)和定義適用于本標(biāo)準(zhǔn)。藍(lán)圓鰺Decapterusmaruadsi俗名巴浪、棍子魚(yú),屬于鱸形目(Perciformes),鲹科(Carangidae),圓鲹屬(Decapterus)。實(shí)時(shí)熒光PCR real-time在PCR反應(yīng)體系中加入熒光基團(tuán),利用熒光信號(hào)的積累實(shí)時(shí)監(jiān)控整個(gè)PCR擴(kuò)增過(guò)程。Ct值 cyclethresholdvalue每個(gè)反應(yīng)管內(nèi)的熒光信號(hào)達(dá)到設(shè)定的域值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)數(shù)。縮略語(yǔ)下列縮略語(yǔ)適用于本文件。PCR(Polymerasechainreaction)DNA(deoxyribonuleicacid)coxICI(cytochromeoxidasesubunitI)dNTP(deoxyribonucleosidetriphosphate)CTAB(cetyltrithylammoniumbromide)Tris:三羥甲基(tris(hydroxymethyl)aminomethane)EDTA(ethylenediaminetetraaceticacid)FAM(carboxyfluorescein)BHQ11原理實(shí)時(shí)熒光法是在提取樣品DNA為模板,以藍(lán)圓鰺coxI基因中相對(duì)保守且高度特異的引物和探針進(jìn)行目標(biāo)物的實(shí)時(shí)熒光試劑和材料GB/T66821表1引物和探針序列名稱序列(5′-3′)目的基因內(nèi)參照F:TCTGCCCTATCAACTTTCGATGGTA真核生物18Sr基因R:AATTTGCGCGCCTGCTGCCTTCCTTP:FAM-CCGTTTCTCAGGCTCCCTCTCCGGAATCGAACC-BHQ1藍(lán)圓鰺F:TGGCCTTCCCTCGAATGAcoxI基因R:CGGCCCCGGCTTCAP:FAM-CTTCTGACTACTCCCTCCGTCCTTCCTGC-BHQ1CTAB裂解液:20g/LCTAB,0.1mol/LTris-HCI(pH8.0),1.4mol/LNaCl,20mmol/LEDTA(pH8.0)。CTAB沉淀液:5g/LCTAB,40mmol/LNaCl。蛋白酶K(20mg/mL),-2075%熒光預(yù)混液(2×)。TE(Tris-ClEDTA緩沖液mmol/Lmmol/L儀器和設(shè)備儀。12000g。7.5 (0.1μL~2.5μL,1μL~10μL,10μL~100μL,20μL~200μL,100μL~1000μL)。pH0.1。0.01g。均質(zhì)器。檢驗(yàn)步驟樣品前處理魚(yú)罐頭、魚(yú)腸、魚(yú)丸等食品取肉糜300mg,置于三氯甲烷:甲醇:水混合溶液(1:2:0.8)中室溫孵育過(guò)夜,去除油脂的肌肉組織可用于核酸提??;魚(yú)肉、魚(yú)排、魚(yú)糜等魚(yú)肉制品取300mg,用生理鹽水清洗后,放入研缽中,在研缽中倒入液氮,將樣品在液氮中研磨成粉末或用冷凍研磨儀研磨成粉末。DNA50mg2mL1.5mL10μLK,min12000r/min5min400μL:12000r/min5,吸取上清液至另一新離心管中,加入0.8倍體積異丙醇,混勻后室溫下靜置1h12000r/min1050μLDNA-20℃保存DNADNA。DNA取適量DNA溶液原液,使用核酸蛋白分析儀或紫外分光光度計(jì)分別測(cè)定260nm和280nm處的吸光值A(chǔ)260和A280。DNA的濃度按照公式(1)計(jì)算:c=A260×N×50 (1)公式(1)中:c ——DNA(μg/mL);A260——260nm處的吸光值;N ——當(dāng)A260/A280比值在1.7~2.0之間時(shí),適宜于實(shí)時(shí)熒光PCR擴(kuò)增。實(shí)時(shí)熒光檢測(cè)實(shí)時(shí)熒光反應(yīng)體系實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)參數(shù)見(jiàn)表2。每個(gè)樣品各做兩個(gè)平行管,可先將反應(yīng)試劑及引物預(yù)混成混合液。表2實(shí)時(shí)熒光PCR反應(yīng)體系試劑名稱終濃度反應(yīng)體系/μL熒光PCR預(yù)混液(2×)1×12.5F(10μmol/L)320nmol/L0.8R(10μmol/L)320nmol/L0.8P(10μmol/L)320nmol/L0.8DNA模板(50-100ng/μL)—2.0補(bǔ)水至—25擴(kuò)增條件℃預(yù)變性30℃15℃35s(),40試驗(yàn)對(duì)照檢驗(yàn)過(guò)程中分別設(shè)陽(yáng)性對(duì)照、陰性對(duì)照和空白對(duì)照。以藍(lán)圓鰺提取的DNA為陽(yáng)性對(duì)照,以已知不含有藍(lán)圓鰺的樣品提取的DNA為陰性對(duì)照,以滅菌水為空白對(duì)照。樣品、陽(yáng)性對(duì)照、陰性對(duì)照、空白對(duì)照各設(shè)置兩個(gè)平行。質(zhì)量控制以下條件有一條不滿足時(shí),實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效:Ct值>40.0。Ct值>40.0。Ct值<30.0。Ct值<30.0。結(jié)果判定在符合第9章的情況下,被檢樣品進(jìn)行檢測(cè)時(shí):a)Ct值≤35.0b)Ct值≥40.0c)如35.0<Ct值<40.0,則重復(fù)試驗(yàn)。如再次擴(kuò)增后Ct值仍為<40.0,且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線,則判定被檢樣品陽(yáng)性;如再次擴(kuò)增后Ct值≥40.0,則判定為被檢樣品陰性。結(jié)果表述防污染措施檢測(cè)過(guò)程中防止交叉污染的措施按照GB/T27403的規(guī)定執(zhí)行。
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