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分子生物學(xué)反應(yīng)
主要內(nèi)容:
1)SDS的工作原理
蛋白酶和蛋白酶抑制劑的工作原理
(3)瓊脂糖凝膠不是通過聚合形成的
042乙醇是如何沉淀DNA和RNA的
5)堿裂解的工作原理
主要內(nèi)容列表
一、SDS的工作原理
SDS(十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳)是實(shí)驗(yàn)室常
用的基于蛋白質(zhì)分子量對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行分離的方法。
SDS根據(jù)蛋白質(zhì)的分子量來分離蛋白質(zhì),基于施加電場(chǎng)的
作用下通過篩分基質(zhì)(凝膠)產(chǎn)生的遷移率。
1.使蛋白質(zhì)的遷移率與分子量成正比
任何帶電物種在電場(chǎng)中的運(yùn)動(dòng)都是由其凈電荷、分子半徑和外加
電場(chǎng)的大小決定的。但自體折疊的蛋白質(zhì)所帶來的問題是,它們的凈電
荷和分子半徑都不依賴于分子量。相反,它們的凈電荷由氨基酸組成決
定,即蛋白質(zhì)中的氨基酸正、負(fù)電荷之和以及蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)的分子半
徑?jīng)Q定。
因此,在它們的原生狀態(tài)下,具有相同分子量的不同蛋白質(zhì)在電
場(chǎng)中以不同的速度遷移,這取決于它們的電荷和三維形狀。
為了根據(jù)分子量在電場(chǎng)中分離蛋白質(zhì),我們需要將蛋白質(zhì)還原為
線性分子,破壞三級(jí)結(jié)構(gòu),并以某種方式掩蓋蛋白質(zhì)的固有凈電荷。這
就是SDS的應(yīng)用來源。
2.SDS的作用
SDS是一種存在于SDS緩沖液中的洗滌劑,在這種緩沖液
中,伴隨著一點(diǎn)煮沸和還原劑(通常是DTT或3ME來分解蛋白質(zhì)-蛋
白質(zhì)二硫鍵),它會(huì)破壞蛋白質(zhì)的三級(jí)結(jié)構(gòu)。這將折疊的蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)變?yōu)?/p>
線性分子。
SDS破壞蛋白質(zhì)三級(jí)結(jié)構(gòu)
SDS利用均勻的負(fù)電荷覆蓋蛋白質(zhì),從而掩蓋R-基團(tuán)的固有電荷。
SDS與線性蛋白(約1.4gSDS/lg蛋白)的結(jié)合相當(dāng)均勻,這意味著
蛋白質(zhì)的電荷現(xiàn)在與它的分子量近似成正比。
SDS也存在于凝膠中以確保一旦蛋白質(zhì)被線性化甩荷被掩蓋,
但蛋白質(zhì)在整個(gè)電泳分離過程中仍保持這種方式(與分子量成正比的遷
移)。
SDS包被的蛋白在凝膠中的遷移率的主要決定性因素是它的分子
半徑。
SDS包被的蛋白已被證明是線性分子,18A寬,長(zhǎng)度與分子量成
正比,因此分子半倒它們?cè)谀z中的遷移率)由蛋白質(zhì)的分子量決定。
由于SDS包被的蛋白質(zhì)具有相同的電荷質(zhì)量比,因此不存在基于電荷
的差異遷移。
3.凝膠基質(zhì)
在外加電場(chǎng)中,SDS處理后的蛋白質(zhì)現(xiàn)在將以不同分子量產(chǎn)生的
不同速率向陰極移動(dòng)。這些不同的遷移率將被凝膠基質(zhì)的高摩擦環(huán)境擴(kuò)
大。
SDS的凝膠基質(zhì)是聚丙烯酰胺,它具有化學(xué)惰性,并且至
關(guān)重要的是可以很容易地在各種濃度下制備不同的孔徑,可以產(chǎn)生不同
的分離特性。
4.不連續(xù)緩沖體系與濃縮凝膠
為了通過凝膠將電流從陽(yáng)極傳遞到陰極,需要緩沖液。我們通常
使用不連續(xù)Laemmli緩沖系統(tǒng)。"不連續(xù)”僅僅意味著凝膠和電泳槽
的緩沖液是不同的。
通常該系統(tǒng)采用PH6.8的Tris-HCI緩沖液配置的濃縮膠,pH8.8
的Tris-HCI緩沖液配置的分離膠以及pH8.3的電極緩沖液,濃縮膠具
有低濃度的丙烯酰胺,分離膠具有更高的濃度,能夠延緩蛋白質(zhì)的運(yùn)動(dòng)。
Tris-GlypH8.3-
Tris-HCIpH6.8
Tris-HCIpH8.8
Tris-GlypH83
非連續(xù)緩沖系統(tǒng)
那些不同的pH是怎么回事兒?甘氨酸可以以三種不同的電荷狀態(tài)存在,
正電荷、中性電荷或負(fù)電荷,這取決于pH值。用不同的緩沖液控制甘
氨酸的電荷狀態(tài)是整個(gè)濃縮膠的關(guān)鍵。
緩沖液pH對(duì)谷氨酸電荷的影響
同時(shí),這也是濃縮膠的工作原理,當(dāng)電源接通時(shí),在pH8.3電
極緩沖液中帶負(fù)電荷的甘氨酸離子被迫進(jìn)入濃縮膠(pH為6.8),在
這種環(huán)境中,甘氨酸主要轉(zhuǎn)變?yōu)閮尚噪x子(中性電荷)狀態(tài)。電荷的這
種損失使它們?cè)陔妶?chǎng)中移動(dòng)得非常緩慢。
另一方面,氯離子(來源于Tris-HCI)在電場(chǎng)中移動(dòng)得很快,它
們形成一個(gè)離子鋒,在甘氨酸之前遷移。從Tris平衡離子(正朝陰極移
動(dòng))中分離出的CI-形成一個(gè)具有陡峭電壓梯度的狹窄區(qū),該電壓梯度
將甘氨酸往后拉,導(dǎo)致遷移離子產(chǎn)生兩個(gè)狹長(zhǎng)遷移前沿,高流動(dòng)性的
CI-前沿,然后是較慢的中性甘氨酸前沿。
所有凝膠中的蛋白質(zhì)樣本的電泳遷移率處在甘氨酸和CI-遷移率
的極值之間。因此當(dāng)兩個(gè)前沿進(jìn)入樣品孔時(shí),蛋白質(zhì)濃縮到CI-和甘氨
酸之間的狹窄區(qū)。
5.當(dāng)?shù)鞍踪|(zhì)離開濃縮膠
濃縮膠遷移過程結(jié)束后,進(jìn)入分離膠,pH轉(zhuǎn)變?yōu)?.8,在該pH
下,甘氨酸分子大多帶負(fù)電,遷移速度比蛋白質(zhì)快得多。因此,甘氨酸
加速通過蛋白質(zhì),而蛋白質(zhì)留在分離膠中。
結(jié)果是,蛋白質(zhì)在濃縮和分離膠的界面處被濃縮到非常窄的帶中,
并且由于分離膠中丙烯酰胺濃度的增加,這減緩了蛋白質(zhì)根據(jù)其分子量
大小的運(yùn)動(dòng),分離開始。
6.濃縮膠起到了什么作用
濃縮膠膠孔約1cm深,通常需要填充足夠的蛋白在凝膠上。因此,
缺少濃縮膠的情況下,樣本則置于分離膠上,而樣本條帶將達(dá)到1cm
深。
與濃縮成一條帶同時(shí)進(jìn)入分離膠相比,沒有濃縮膠意味著蛋白質(zhì)
在不同時(shí)間分別進(jìn)入濃縮膠而形成彌散條帶。
因此,濃縮膠確保蛋白質(zhì)同時(shí)達(dá)到分離膠,分子量相同的蛋白質(zhì)
則形成緊密條帶進(jìn)行遷移。
7.蛋白質(zhì)分離
一旦蛋白質(zhì)進(jìn)入分離膠,則因高分子量蛋白質(zhì)通過多孔丙烯酰胺
凝膠的速度比低分子量蛋白慢而被分離。凝膠孔的大小可以根據(jù)丙烯酰
胺濃度和蛋白質(zhì)分子量大小而改變。
對(duì)于更寬的分離范圍,或?qū)τ陔y以分離的蛋白質(zhì),可以使用具有
丙烯酰胺濃度增加的梯度凝膠。
二、蛋白酶和蛋白酶抑制劑工作原理
1.蛋白酶:好的,壞的,水解的
所有生物體都有蛋白水解酶和磷酸化酶,包括:你、我、甚至棉鈴蟲。
雖然蛋白酶涉及到從宿主防御到傷口愈合乃至病毒復(fù)制的各個(gè)方面,但
根據(jù)蛋白酶活性位點(diǎn)的構(gòu)胡口與目標(biāo)肽鍵的相互作用,可以大致分為兩
大類。
1)通過絲氨酸、蘇氨酸或半胱氨酸在其活性部位的親核活化水解鍵;
2)天冬氨酸、谷氨酸和金屬蛋白酶,利用水本身進(jìn)行水解。
2.抑制劑:你不能只靠一種
化學(xué)分解、碰撞摩擦、超聲波和凍融,把整個(gè)系統(tǒng)都弄得亂七八
糟。沒有肽鍵是安全的!
外肽酶攻擊氨基酸鏈的末端,而內(nèi)肽酶水解它們的內(nèi)部連接。激
酶磷酸依口去磷酸化隨意。
沒有一種抑制劑能清除所有蛋白酶,阻止每一個(gè)磷酸化事件。它
需要一種“雞尾酒”的方法來阻止蛋白質(zhì)分解。蛋白酶抑制劑在脅迫下
可以不可逆、可逆和可逆地作用,可以是任何小分子,如氟化鈉,也可
以是進(jìn)化過程中自身微生物抑制劑多肽類似物。它們可以與底物競(jìng)爭(zhēng)活
性位點(diǎn),有時(shí)會(huì)破壞或者囤積蛋白酶功能所需的珍貴陽(yáng)離子。
競(jìng)爭(zhēng)性抑制劑的作用是以類似底物的方式與活性位點(diǎn)結(jié)合通過修
飾阻止蛋白酶,例如,酯化反應(yīng)。許多大的競(jìng)爭(zhēng)抑制劑通過增強(qiáng)親和性
和特異性結(jié)合。
競(jìng)爭(zhēng)性的阻礙因素。因素種類繁多,從抑肽酶,一種6kDa的多
肽絲氨酸蛋白酶(在極端的pH值是可逆的),到正鋼酸鈉,一種抑制
易受騙蛋白-酪氨酸磷酸酶的小分子。
螯合劑利用它們對(duì)金屬離子的增強(qiáng)親和力與金屬離子螯合,而不
能與其他成員發(fā)生反應(yīng)。金屬蛋白酶的活性部位需要鋅、鎂、鎰、鈣,
甚至鉆來活化水,水解肽鍵,以達(dá)到水解目的。把鋅和乙二胺四乙酸
(EDTA)結(jié)合起來,把鈣和乙二胺四乙酸(EGTA)結(jié)合起來,金屬蛋
白酶就不再有活性了。
三、瓊脂糖凝膠不是通過聚合形成的
1.瓊脂糖凝膠不是通過聚合形成的
聚丙烯酰胺主要用于SDS,是由丙烯酰胺單體和雙丙烯酰
胺單體組成的基質(zhì)。它的優(yōu)點(diǎn)是化學(xué)惰性,因此在蛋白質(zhì)通過時(shí)不會(huì)與
蛋白質(zhì)發(fā)生相互作用,而且它可以用不同的孔徑輕松地、重復(fù)地制造出
具有不同分離特性的凝膠。
聚合反應(yīng),是自由基催化的乙烯基加成反應(yīng)。該反應(yīng)由TEMED
引發(fā),引發(fā)過硫酸錠(APS)自由基的生成。自由基將電子轉(zhuǎn)移到丙烯
酰胺/雙丙烯酰胺單體上,使它們呈放射狀并相互作用形成聚丙烯酰胺
鏈。
Potyacryidrr^de
Bii-acrylamide
OU-CH
I
coAcrylamide
jCH2=CH
NHl
QU+c-o
INH;S04?
NH
I
C-0
I
CHACH
NH4s2O8
(APS)
聚丙烯酰胺聚合反應(yīng)
在缺失雙丙烯酰胺的情況下,丙烯酰胺會(huì)聚合成長(zhǎng)鏈,而不是多
孔凝膠。雙丙烯酰胺交聯(lián)丙烯酰胺鏈,是形成多孔凝膠基質(zhì)的原因。通
過改變丙烯酰胺與雙丙烯酰胺的比例,可以控制交聯(lián)的量,決定凝膠的
孔徑和分離特性。
2.瓊脂糖凝膠形成
瓊脂糖一凝膠瓊脂的主要成分,可以從某些海藻中分離出來一本
身就是一種聚合物。但是,聚合不是瓊脂糖凝膠形成的機(jī)制。
在化學(xué)上,瓊脂糖是一種多糖,其單體單元是D-半乳糖和3,6-
脫水-L-半乳毗喃糖的二糖。
瓊脂糖的結(jié)構(gòu)
在低于35(的水溶液中,這些聚合物鏈通過非共價(jià)鍵相互作用
(像氫鍵)和靜電相互作用被保持在多孔凝膠結(jié)構(gòu)中。
加熱溶液會(huì)破壞這些非共價(jià)相互作用,并使鏈脫離。
當(dāng)溶液冷卻時(shí),這些非共價(jià)相互作用被重新建立并且形成凝膠。
所以,瓊脂糖(和瓊脂)凝膠是通過氫鍵和靜電相互作用而不是
通過聚合形成的。
四、乙醇是如何沉淀DNA和RNA的
乙醇沉淀法是一種在水溶液中濃縮和脫鹽核酸(DNA或RNA)的常用
方法。最基本的步驟是在水溶液中加入鹽和乙醇,迫使核酸從溶液中沉
淀出來。
通過離心分離沉淀的核酸。核酸顆粒在70%的冷乙醇中洗滌,進(jìn)一步
離心后,干燥去除乙醇,核酸顆粒被重新懸浮在干凈的緩沖液中。
1.關(guān)于溶解度
首先我們需要知道為什么核酸能溶于水。水是一個(gè)極性分子,由
于非共享的電子對(duì),它在氧原子附近有部分負(fù)電荷,在氫原子附近有部
分正電荷。
由于這些電荷,極性分子,如DNA或RNA,可以與水分子靜電
作用,使它們很容易溶于水。
因此,極性分子可以被描述為親水性分子,而非極性分子是疏水
性的,它們不易與水分子相互作用。
核酸是親水性的,這是由于糖磷酸主鏈上帶負(fù)電荷的磷酸(PO3-)
基團(tuán)。
水分子的極性
2.鹽的作用
鹽在實(shí)驗(yàn)中的作用是中和糖磷酸骨架上的電荷。一種常用的鹽是
醋酸鈉(乙酸鈉),在溶液中,乙酸鈉分解成NA+和[CH3co0]-。
帶正電的鈉離子中和了核酸上PO3-基團(tuán)的負(fù)電荷,使分子的親
水性大大降低,因此在水中的溶解度大大降低。
3.乙醇的作用
溶液中Na+離子與P03-離子之間的靜電吸引受庫(kù)侖定律的支配,
受溶液介電常數(shù)的影響。
水具有很高的介電常數(shù),這使得Na+和P03-很難結(jié)合在一起。
另一方面,乙醇具有較低的介電常數(shù),使得Na+更容易與P03-
相互作用,屏蔽其電荷,使核酸不太親水,導(dǎo)致其從溶液中脫落。
4.溫度的作用
低溫(如-20或-8(TC)下保存核酸/鹽/乙醇混合物用于沉淀核酸
通常在實(shí)驗(yàn)中認(rèn)為是必要的。
然而,這不是必需的,因?yàn)闈舛鹊椭?0ng/mL的核酸在0-4C
時(shí)會(huì)沉淀,因此在冰上孵育15-30分鐘就足夠了。
5.70%無(wú)水乙醇洗滌步驟
把沉淀的DNA顆粒中的殘留鹽洗掉。
6.關(guān)于核酸沉淀的一些建議:
a.鹽的選擇
使用醋酸鈉(0.3M終濃度,pH值5.2)進(jìn)行常規(guī)DNA沉淀;
對(duì)于含有SDS的DNA樣品,使用氯化鈉(終濃度為0.2M),
因?yàn)镹aCI使SDS在70%乙醇中保持可溶性,因此不會(huì)與DNA一起
沉淀;
對(duì)于RNA,使用氯化鋰(0.8M終濃度)。這是因?yàn)?.5-3體積
的乙醇應(yīng)用于RNA沉淀,而LiCI比NaAC更易溶于乙醇,因此不會(huì)沉
淀,但要注意氯離子會(huì)抑制蛋白質(zhì)合成和DNA聚合酶,因此LiCI不適
合用于體外翻譯或反轉(zhuǎn)錄RNA的制備。在這種情況下,使用NaACo
使用乙酸錠(2M終濃度)去除dNTPs,但不用于制備應(yīng)用于T4
多核甘酸激酶反應(yīng)的DNA,因?yàn)殄X離子抑制酶活性。
提高低濃度或小核酸片段沉淀的產(chǎn)率(<100個(gè)核昔酸)
a.將MgCI2添加至最終濃度0.01M;
b.將離心前在冰上孵育的時(shí)間增加到1小時(shí)。
(下篇)
一、硅基質(zhì)離心柱制備DNA和RNA的工作原理
1.裂解
裂解方法可能會(huì)根據(jù)需要DNA或RNA而有所不同,但其共同點(diǎn)是含
有高濃度離液鹽的裂解緩沖液。
雜化使氫鍵不穩(wěn)定,范德華力和疏水相互作用。蛋白質(zhì)不穩(wěn)定,包括核
酸酶,核酸與水的結(jié)合被破壞,為核酸與硅機(jī)制結(jié)合創(chuàng)造條件。
離液鹽包括鹽酸胭、異硫氨酸服、尿素和高氯酸鋰。
除了離液鹽,裂解緩沖液通常還含有洗滌劑,有助于蛋白質(zhì)的溶解和裂
解。
根據(jù)樣品類型,也可以使用酶進(jìn)行裂解。蛋白酶k就是其中之一,實(shí)際
上蛋白酶k在裂解緩沖液中起著非常好的作用;蛋白酶k的作用就越好,
蛋白質(zhì)變性越完全。然而,溶菌酶在裂解緩沖液的變性條件下不起作用,
因此,通常在加入變性鹽之前進(jìn)行溶菌酶處理。
對(duì)于質(zhì)粒的制備,裂解方式與提取RNA或基因組DNA有很大不同,
因?yàn)楸仨毾葟幕蚪MDNA中分離出質(zhì)粒。
如果加入離液鹽,將立即釋放胞內(nèi)物質(zhì),并且無(wú)法從高分子量染色體中
區(qū)分出小的環(huán)狀質(zhì)粒。
因此,在質(zhì)粒制備中,直到裂解后,才加入離液鹽,并用于結(jié)合硅基質(zhì)。
2.結(jié)合硅基質(zhì)(Binding)
離液鹽對(duì)裂解和硅基質(zhì)的結(jié)合至關(guān)重要。
為了增強(qiáng)核酸與硅基質(zhì)的結(jié)合,在結(jié)合階段還加入了乙醇。通常是乙醇,
但有時(shí)可能是異丙醇。
乙醇的濃度和體積對(duì)結(jié)合有很大影響,濃度或體積太多會(huì)帶來大量降解
的核酸和小片段,進(jìn)而影響UV260的讀數(shù),使核酸濃度降低。濃度或
體積太少,可能很難洗掉膜上的殘留鹽。
重要的一點(diǎn)是,乙醇會(huì)影響結(jié)合,并且添加的量對(duì)于任何試劑盒都是優(yōu)
化的。修改該步驟有助于獲得核酸提取的效果,因此如果遇到問題并希
望排除原因,則可以進(jìn)一步評(píng)估該步驟。
另一種問題的診斷方法,保留離心后過柱濾液,并進(jìn)行沉淀操作,看是
否有核酸。如果在裂解過程中使用SDS的表面活性劑,試著用NaCI
作為沉淀劑,以避免污染DNA或RNA。
3.洗滌步驟
裂解液通過硅膠膜離心,現(xiàn)在DNA或RNA與柱結(jié)合,雜質(zhì),蛋白質(zhì)
和多糖則通過。
但是,膜仍然會(huì)被殘留的蛋白質(zhì)和鹽弄臟。如果樣本來自植物,膜上仍
會(huì)殘留多糖,可能還有一些色素,或者如果樣本是血液,膜可能呈棕色
或黃色。
清洗步驟有助于去除這些雜質(zhì)。通常有兩種清洗方式,但因樣本類型而
異。第一次洗滌通常會(huì)用少量的離液鹽來去除蛋白質(zhì)和有色污染物。然
后用乙醇清洗以除去鹽。如果樣本本身沒有太多蛋白質(zhì),如質(zhì)粒準(zhǔn)備或
PCR產(chǎn)物純化,那么只需要乙醇清洗即可。
4.離心柱的干燥
乙醇洗滌后,大多數(shù)操作步驟都有離心來干燥離心柱。這是為了去除乙
醇,是清潔洗脫的必要步驟。當(dāng)10mMTris緩沖液或水填充到膜上進(jìn)
行洗脫時(shí),核酸會(huì)水合并從膜上釋放。如果柱上還有乙醇,那么核酸就
不能完全再水化。
跳過干燥步驟會(huì)導(dǎo)致乙醇污染和核酸產(chǎn)量降低。
這個(gè)問題的主要跡象是當(dāng)試圖把樣品加載到瓊脂糖凝膠上時(shí),即使在存
在染料的情況下,DNA不會(huì)下沉,而是漂浮在緩沖液中。乙醇污染的
另一個(gè)跡象是,如果你把樣品放在-20攝氏度,它不會(huì)結(jié)冰。
5.洗脫
最后一步是從硅基質(zhì)中釋放出純DNA或RNA。對(duì)于DNA的處理,通
常使用pH值在8-9之間的10mMTrisoDNA在稍微堿性的pH下更
穩(wěn)定,在緩沖液中溶解更快。即使是DNA顆粒也是如此。水往往趨向
于低pH值,低至4-5,在短時(shí)間內(nèi)洗脫時(shí),高分子量DNA可能不完
全水化。通過讓緩沖液在離心前在膜中停留幾分鐘,可以最大限度地洗
脫DNA。
另一方面,RNA在弱酸性pH值下穩(wěn)定,因此水是首選洗脫液。RNA
很容易溶于水。
6.離心柱操作時(shí)容易出問題的事兒
核酸回收率低:因素有很多,通常是裂解問題,或者是過柱結(jié)合時(shí)條件
出現(xiàn)了問題。
確保使用新鮮的優(yōu)質(zhì)乙醺100%解釋緩沖液或添加到過柱結(jié)合步驟。
質(zhì)量差的乙醇或者長(zhǎng)期儲(chǔ)存的乙醇可能吸水,導(dǎo)致乙醇濃度發(fā)生變化,
如果洗脫緩沖液的配置出現(xiàn)問題,DNA或RNA就會(huì)被清洗時(shí)流失。
低純度:如果樣品被蛋白質(zhì)污染(低260/280),那么可能是因?yàn)闃悠?/p>
太多,蛋白質(zhì)沒有完全去除或溶解。如果樣品的260/230比率很低,
則問題通常是來自結(jié)合緩沖液或洗滌緩沖液中的鹽。確保使用最高質(zhì)量
的乙醇來制備洗滌緩沖液,如果問題仍然存在,則提取是增加洗滌次數(shù)。
與其他樣品相比,一些樣品含有更多的抑制劑。環(huán)境樣品特別容易出現(xiàn)
純度問題,因?yàn)樵谔崛∵^程中腐殖物質(zhì)會(huì)被溶解。腐殖質(zhì)類似于DNA,
很難從硅膠柱中除去。對(duì)于這種類型的樣品,在過柱步驟之前需要使用
去除蛋白質(zhì)和腐殖質(zhì)的專門技術(shù)。
降解:主要是RNA,降解是由于樣品儲(chǔ)存不當(dāng)或者裂解效率過低造成
的,不過前提是用不含RNase的水洗脫,對(duì)于DNA預(yù)處理來說,降
解并不是一個(gè)大問題,因?yàn)閷?duì)于PCR來說,DNA有降解,擴(kuò)增依舊可
以良好進(jìn)行。但如果不希望DNA剪切過于嚴(yán)重,那么不要使用太強(qiáng)的
裂解方法。PCR純化注意事項(xiàng):PCR純化是所有硅基質(zhì)離心柱技術(shù)中
最簡(jiǎn)單的,因?yàn)樗恍枰砑痈邼舛鹊慕Y(jié)合鹽(通常在每個(gè)PCR反應(yīng)
體系中添加3-5倍體積)并離心、柱體。因此,當(dāng)PCR純化試劑盒操作
失敗時(shí),可能會(huì)特別令人沮喪。所以純化前,最好在凝膠上檢測(cè)一下擴(kuò)
增結(jié)果。
PCR反應(yīng)體系中太多物質(zhì)可在UV260處有吸收峰:核甘酸、洗滌劑、
鹽和引物。PCR純化試劑盒操作失敗多數(shù)是因?yàn)闆]有獲得擴(kuò)增產(chǎn)物。
如果確定反應(yīng)體系中,有PCR產(chǎn)物且濃度不低,可以保留過柱后的液
體,如果DNA沒有發(fā)生結(jié)合,還可以進(jìn)行挽救,重新進(jìn)行純化。
二、DNA連接酶工作原理
DNA連接酶(EC6.5.1.1)以共價(jià)方式將DNA的磷酸骨架與平末端或
配對(duì)的粘性末端連接起來,其作用是修復(fù)DNA分子中斷裂的雙鏈。
Cohesiveends
5ATCTAGAGGATCCTACGTATCG3
TAGATCTCCTAGGATGCATAGC5
Bluntends
5ATCTACCCOGGCGTATCG—
TAGATGGGCCCGCATAGC5'
粘性末端與平末端示意圖
在分子生物學(xué)中,它通常用于將限制性內(nèi)切酶產(chǎn)生的DNA片段插入載
體。商業(yè)連接酶提供含有ATP和Mg2+的反應(yīng)緩沖液,這兩種物質(zhì)對(duì)
連接酶活性都是必不可少的。
由于反復(fù)的凍融可能會(huì)破壞ATP,所以最好將溶液進(jìn)行分裝。
鏈接反應(yīng)本身有兩個(gè)基本步驟。首先,DNA末端必須偶然碰撞,并保
持在一起足夠長(zhǎng)的時(shí)間,以便連接酶連接它們。
低溫反應(yīng)更容易。所有的分子在更高的溫度下移動(dòng)得更快,如果它們?cè)?/p>
低溫下輕輕地漂浮在溶液中,而不是像在更高的溫度下那樣呼嘯而過,
那么兩個(gè)DNA末端碰撞并保持在一起會(huì)更容易。對(duì)于粘性末端,較低
的溫度穩(wěn)定了互補(bǔ)核苜酸之間的氫鍵,有助于保持性對(duì)位置。
第二步是酶促反應(yīng):DNA連接酶通過兩步催化3--0H與5'-磷酸基團(tuán)
連接。首先,與酶活性部位的賴氨酸殘基相連的AMP核甘酸被轉(zhuǎn)移到
5'-磷酸。然后磷酸腺苜鍵被3'-0H攻擊,形成共價(jià)鍵并釋放腺甘酸。
為了讓酶進(jìn)行進(jìn)一步的反應(yīng),酶活性部位的AMP必須由ATP補(bǔ)充。
DNA連接酶在25(時(shí)具有最佳活性,因此連接反應(yīng)在使DNA末端連
接在一起的最佳溫度(1℃)和酶反應(yīng)(25()之間的權(quán)衡溫度下進(jìn)行。
通常在EC下1小時(shí)是可以的,但是由于將DNA末端連接在一起是
反應(yīng)中最不有效的部分,因此通過將溫度降低到4<來促進(jìn)這一點(diǎn)可以
提供更高的效率。然而,酶在這個(gè)溫度下工作非常緩慢,因此需要很
長(zhǎng)的(如過夜)反應(yīng)時(shí)間。
CCT?CCT
-GG-A-G---O-A
AMP
0CT4____cCT
-GG-A-G--
連接酶作用原理示意圖
三、比色分析的工作原理
1.對(duì)硝基苯基磷酸酯一分析機(jī)制
對(duì)硝基苯磷酸酯(pNPP)作為一種合成底物廣泛應(yīng)用于各種磷酸酶的
催化活性測(cè)定。pNPP的磷酸基團(tuán)被酶裂解生成對(duì)硝基苯酚,由于對(duì)硝
基苯酚在水中電子激發(fā)的最大波長(zhǎng)為318nm,因此對(duì)硝基苯酚也是無(wú)
色的。然而,在堿性條件下,對(duì)硝基苯酚轉(zhuǎn)化為對(duì)硝基苯酚陰離子,導(dǎo)
致向400nm左右的深色偏移(根據(jù)溶液條件將化合物的吸收峰改變?yōu)?/p>
較長(zhǎng)波長(zhǎng))。這是電磁光譜的藍(lán)色邊緣,但是由于我們看到反射光的顏
色(與吸收光相反),溶液看起來是黃色的。
要記住的事情:
銘酸鹽轉(zhuǎn)移是分析的關(guān)鍵因素。
舉例來說,如果酶的活性要求在酸性范圍內(nèi)有一個(gè)最佳的pH值,那么
酸性磷酸酶的情況正好如此。
在這種情況下,為了獲得所需的黃色,必須在終點(diǎn)添加強(qiáng)堿(例如氫氧
化鈉或氫氧化鉀)。
2.孔雀綠一分析機(jī)制
對(duì)硝基苯磷酸測(cè)定是很好的,但是如果你最喜歡的磷酸酶不能有效地代
謝pNPP呢?另一種市面上可買到的磷酸酶測(cè)定法是孔雀綠測(cè)定法。這
種簡(jiǎn)單的測(cè)定方法是基于孔雀綠、鋁酸核和游離正磷酸鹽(又稱無(wú)機(jī)磷
酸鹽,pi)在酸性條件下形成的絡(luò)合物。
正磷酸鹽被磷酸酶分解后從磷酸化底物中釋放出來,在硫酸溶液中與鋁
酸鐵形成絡(luò)合物??兹妇G磷鋁酸鹽絡(luò)合物的形成,在620-650nm處測(cè)
量,與游離正磷酸鹽濃度直接相關(guān)。因此,有可能量化蛋白質(zhì)磷酸酶底
物的磷酸化和磷酸釋放。
要記住的事情:
這種方法僅測(cè)量無(wú)機(jī)游離磷酸鹽;在測(cè)量之前,必須首先水解和中和有
機(jī)磷酸鹽(脂質(zhì)結(jié)合或蛋白質(zhì)結(jié)合磷酸鹽)。了解不同種類的有機(jī)磷酸
鹽及其各自不同的水解自由能有助于優(yōu)化分析條件。高能有機(jī)磷酸酯
(縮醛磷酸酯、酸酊等)具有不耐酸的磷酸基團(tuán),可在低pH下孵育釋
放到溶液中。另一方面,低能有機(jī)磷酸鹽(磷酸酯)在酸性溶液中穩(wěn)定,
需要更苛刻的條件(如熱分解)才能用這種方法檢測(cè)。
在大量孔雀綠存在下,3:1離子締合物[(MG+)3(PMol2O403-)]容易
在酸性水溶液中形成和沉淀。為了穩(wěn)定水溶液中的1:1離子締合物,在
溶液中加入聚乙烯醇。
Enzyme*Substrate?.(ES)>Enzyme?P,
P,?(NHAMoO.K.H)PMOUO40
2e
H)PMOi204o?HMG*W.(MG)(H2PMou04o)?2H.
(yellow)(matocMegreen)(gre?a「乏》1叼)
(yHowf「446nm)
分析機(jī)制示意圖
在分析過程中要考慮的另T牛事是任何可能干擾分析的氧化還原反應(yīng)
的可能性。祖是一種過渡金屬,因此存在于多種氧化狀態(tài)。在鋁酸鹽陰
離子中,它具有+6的氧化狀態(tài)。通過有機(jī)化合物,如抗壞血酸和還原
糖(即葡萄糖)或無(wú)機(jī)化合物(如
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