質(zhì)粒抽提原理與詳細操作步驟

1、質(zhì)粒抽提,實驗室必備技能之質(zhì)粒質(zhì)粒存在于許多細菌以及酵母菌等生物中，是細胞染色體外能夠自主復制的很小的環(huán)狀DNA分子。質(zhì)粒抽提從細菌中分離質(zhì)粒DNA的方法包括3個基本步驟：培養(yǎng)細菌使質(zhì)粒擴增；收集和裂解細菌;分離和純化質(zhì)粒DNA。采用強堿液、加熱或溶菌酶（主要針對革蘭氏陽性細菌）可以破壞菌體細胞壁，十二烷基磺酸鈉（SDS）和TritonX-100（一般很少使用）可使細胞膜裂解。經(jīng)溶菌酶和SDS或TritonX-100處理后，細菌染色體DNA會纏繞附著在細胞碎片上，同時由于細菌染色體DNA比質(zhì)粒大得多，易受機械力和核酸酶等的作用而被切斷成不同大小的線性片段。當用強熱或酸、堿處理時，細菌的線性染色

2、體DNA變性，而共價閉合環(huán)狀DNA（CovalentlyclosedcircularDNA,簡稱cccDNA）的兩條鏈不會相互分開。當外界條件恢復正常時，線狀染色體DNA片段難以復性，而是與變性的蛋白質(zhì)和細胞碎片纏繞在一起，而質(zhì)粒DNA雙鏈又恢復原狀，重新形成天然的超螺旋分子，并以溶解狀態(tài)存在于液相中。質(zhì)粒抽提最常用的方法是堿裂解法，它具有得率高、適用面廣、快速和純度高等特點。當然,堿裂解法也有缺陷：容易導致不可逆的變性。要降低不可逆的變性，就要控制好堿裂解的時間。堿裂解法抽提質(zhì)粒需要用到以下三種溶液溶液I50mmol/L葡萄糖，25mmol/LTris-Cl(pH8.0),10mmol/LE

3、DTA(pH8.0)，在15psi壓力下蒸汽滅菌15min,4c保存。溶液n0.2mmol/LNaOH（從10mmol/L貯存液中現(xiàn)用現(xiàn)稀釋），10g/LSDS（室溫保存）。溶液出5mol/L乙酸鉀60.0mL,冰乙酸11.5mL,無菌水28.5mL,4c保存，使用時置于冰浴中。卜面介紹一下堿裂解法小提質(zhì)粒的具體操作:01柱平衡：向吸附柱中加入500平衡Buffer,12000rpm離心30-60s,倒掉收集管中的廢液；注意：吸附柱平衡后可最大限度激活硅基質(zhì)膜，提高質(zhì)粒的得率；吸附柱平衡后應立即使用，長時間放置會影響其吸附效果。02收菌：將過夜培養(yǎng)的菌液用8000g,2-3min低溫離心，吸棄

4、液體培養(yǎng)基；注意：高拷貝的質(zhì)粒，需要5-15mL的培養(yǎng)菌液；低拷貝的質(zhì)粒，則需要15-30mL的培養(yǎng)菌液；殘留的液體培養(yǎng)基過多會影響細菌的裂解效果，應盡可能吸干培養(yǎng)基。03向離心管中加入2506溶液I（加入RNaseA）,吹勻菌沉淀并將懸液轉(zhuǎn)移至新1.5mLEP管中；注意：菌體懸浮不完全會導致裂解不完全，質(zhì)粒提取量和純度會降低。04向EP管中加入250口溶液n（裂解Buffer）,溫和翻轉(zhuǎn)EP管6-10次，使菌體充分裂解，液體變得澄清濃稠（開蓋拉絲）；注意：所用時間不宜超過5min,以免質(zhì)粒被破壞；切勿劇烈震蕩；液體未變得澄清，則表明裂解不充分，可適當減少菌體量或增大Buffer使用量；若溶液

5、n出現(xiàn)渾濁，可37C水浴幾分鐘，待液體恢復澄清即可使用。05向EP管中加入350口溶液出，溫和番S轉(zhuǎn)EP管6-10次，此時可觀察到管內(nèi)出現(xiàn)白色絮狀沉淀，12000rpm室溫離心10min；注意：若上清中仍有少量白色絮狀物，可再次離心2-3min直至液體澄清。06將離心后上清轉(zhuǎn)移至吸附柱中，12000rpm離心30-60s,倒掉收集管中的廢液；07可選：向吸附柱中加入5006BufferPD（富含蛋白酶），12000rpm離心1min,倒掉收集管中的廢液；注意：此步對富含內(nèi)源核酸酶的宿主菌（endA+）是必須的，對于endA-宿主菌可省略。08向吸附柱中加入600lWashBuffer（加入無水

6、乙醇），12000rpm離心1min,倒掉收集管中的廢液；09重復步驟8一次；10將吸附柱和收集管放回離心機中，12000rpm空轉(zhuǎn)離心2min;注意：此步驟非常關鍵，乙醇是否去除干凈會影響后續(xù)的洗脫效率以及PCR等效果。11將吸附柱轉(zhuǎn)移至新的1.5mLEP管中，拿到超凈工作臺中開蓋鼓風吹5-10min；12向吸附柱膜的中央滴加40-50口預熱HutionBuffer或者DD水，關蓋靜置3-5min,12000rpm離心2min;注意：洗月Buffer預熱后效果更好；可以根據(jù)質(zhì)粒的拷貝數(shù)、宿主菌等因素調(diào)整洗脫Buffer的添加量。13離心后將EP管內(nèi)的液體重新滴加至吸附柱膜上，12000rpm

7、離心1min；14做好標記，取2口質(zhì)粒跑1%瓊脂糖凝膠電泳檢測驗證；15提取出的質(zhì)粒-20C保存。抽提質(zhì)粒中的常見問題1提不出質(zhì)?；蛘哔|(zhì)粒提取量很少(1)菌體中無質(zhì)粒：有些質(zhì)粒本身不能在某些菌種中穩(wěn)定存在，經(jīng)多次轉(zhuǎn)接后有可能造成質(zhì)粒丟失。例如柯斯質(zhì)粒在大腸桿菌中保存不穩(wěn)定，因此不要頻繁轉(zhuǎn)接，每次接種時應接種單菌落。另外，檢查篩選用抗生素使用濃度是否正確。(2)質(zhì)?？截悢?shù)低：由于使用低拷貝數(shù)載體引起的質(zhì)粒DNA提取量低，可更換具有相同功能的高拷貝數(shù)載體。(3)菌種老化：若是甘油保藏菌，需要在活化后再培養(yǎng)搖菌；建議涂布平板培養(yǎng)后，重新挑選新菌落進行液體培養(yǎng)。(4)吸附柱過載：不同產(chǎn)品中吸附柱吸附能

8、力不同，如果需要提取的質(zhì)粒量很大，請分多次提取。若用富集培養(yǎng)基，例如TB或者2XYT,菌液體積必須減少；若質(zhì)?；蛩拗骶欠浅８叩目截悢?shù)或生長率，則需調(diào)整LB培養(yǎng)液體積。(5)堿裂解不充分：使用過多的菌體培養(yǎng)液，會導致菌體裂解不充分，可減少菌體用量或增加溶液I、II、出的用量。對低拷貝數(shù)質(zhì)粒提取時，可加倍使用溶液I、n、出，有助于增加質(zhì)粒提取量和質(zhì)粒質(zhì)量。(6)溶液使用不當：溶液n和出在溫度較低時可能出現(xiàn)渾濁，應置于37C保溫片刻直至溶解為清亮的溶液，才能使用。(7)洗脫液加入位置不正確：洗脫液應加在硅膠膜中心部位，以確保洗脫液會完全覆蓋硅膠。膜的表面，達到最大洗脫效率。(8)洗脫液不合適：DN

9、A只在低鹽溶液中才能被洗脫，pH洗脫效率取決于pH值。最大洗脫效率在pH7.0-8.5之間。當用水洗脫時確保其pH值在此范圍內(nèi)，如果pH過低可能導致洗脫量低。洗脫緩沖液加熱至60c后使用有利于提高洗脫效率。(9)洗脫體積太?。合疵擉w積對回收率有一定影響。隨著洗脫體積的增大回收率增高，但產(chǎn)品濃度降低。為了得到較高的回收率可以增大洗脫體積。(10)洗脫時間過短：洗脫時間對回收率也會有一定的影響。洗脫時放置1min可達到較好的效果。(11)乙醇殘留：漂洗液洗滌后應離心盡量去除殘留液體，樹脂型試劑盒漂洗后應晾干樹脂，再加入洗脫緩沖液。(12)質(zhì)粒未全部溶解：洗脫溶解質(zhì)粒時，可適當加溫或延長溶解時間。2

10、質(zhì)粒純度不高(1)混有蛋白質(zhì)：不要過多使用菌體。溶液I、n、出處理并離心后，溶液應為澄清的，如果還混有微小蛋白質(zhì)懸浮物，可再次離心去除后再進行下一步驟。(2)混有RNA：RNaseA處理不徹底，請減少菌體用量或加入溶液出后室溫放置一段時間。如果溶液I已保存6個月以上，要及日向I中添加RNaseA。(3)混有基因組DNA:加入溶液H、出后應溫和混勻，若劇烈震蕩，可能把基因組DNA剪切成碎片混在質(zhì)粒中。如果加入溶液H后過于黏稠，無法溫和混勻，請減少菌體用量。細菌培養(yǎng)不要超過16h,時間過長會導致細胞和DNA的降解。(4游液出加入時間過長：溶液出加入后，放置時間不要太長，否則有可能產(chǎn)生小片段DNA污染。(5)宿主菌含大量核酸酶：宿主菌含大量核酸酶，在質(zhì)粒提取中降解質(zhì)粒DNA,影響提取質(zhì)粒DNA的完整性，最好選用不含核酸酶的大腸桿菌宿主菌，例如DHa和TOP10。(6)裂解時間過長：加入溶液n后裂解時間不宜超過5min。(7)質(zhì)粒的二聚體和多聚體形式：是質(zhì)粒復制過程中形成的，與宿主菌相關，電泳可檢測出。質(zhì)粒濃度的檢測DNA純度的判斷大多根據(jù)OD260/OD280的比值檢測，符合要求、純度高的DNA樣品其OD260/OD280在1.8-2.0之間，低于此范圍表明蛋白質(zhì)含量超標，高于此范圍表