版權(quán)說(shuō)明:本文檔由用戶提供并上傳,收益歸屬內(nèi)容提供方,若內(nèi)容存在侵權(quán),請(qǐng)進(jìn)行舉報(bào)或認(rèn)領(lǐng)
文檔簡(jiǎn)介
1、水稻OsDHHC13基因參與氧化脅迫響應(yīng)的初步研究摘 要:DHHC型鋅指蛋白參與細(xì)胞內(nèi)蛋白質(zhì)的棕櫚?;揎?,對(duì)細(xì)胞和個(gè)體的生長(zhǎng)發(fā)育起著重要的調(diào)控作用.OsDHHC13是典型的DHHC型鋅指蛋白基因.生物信息學(xué)分析發(fā)現(xiàn),OsDHHC13的啟動(dòng)子區(qū)域含有脅迫及光響應(yīng)元件,而且其編碼蛋白是具有4個(gè)跨膜構(gòu)造域的典型膜蛋白.對(duì)OsDHHC13過(guò)表達(dá)株系進(jìn)展H2O2的氧化脅迫處理發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)株系幼苗的根顯著長(zhǎng)于野生型,說(shuō)明OsDHHC13能解除H2O2對(duì)根生長(zhǎng)的抑制,進(jìn)步了抗氧化脅迫的才能.隨后H2O2含量測(cè)定發(fā)現(xiàn),OsDHHC13過(guò)表達(dá)株系幼苗根部的H2O2含量顯著低于野生型.進(jìn)一步的qRTPCR分析發(fā)
2、現(xiàn),與去除H2O2相關(guān)的酶基因的轉(zhuǎn)錄程度在過(guò)表達(dá)株系中顯著升高,說(shuō)明OsDHHC13能促進(jìn)去除H2O2的相關(guān)酶基因的表達(dá),調(diào)節(jié)內(nèi)源性H2O2的動(dòng)態(tài)平衡.總之,本研究結(jié)果初步證明鋅指蛋白基因OsDHHC13正調(diào)控水稻的抗氧化脅迫才能.關(guān)鍵詞: OsDHHC13基因;H2O2含量;根長(zhǎng);鋅指蛋白中圖分類號(hào):Q943 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:AAbstract:DHHCtype zinc finger proteins are involved in the palmitoylated modification of intracellular proteins and play important roles
3、 in the growth and development of cells and individuals. OsDHHC13 is a typical DHHCtype zinc finger gene. Bioinformatics analysis showed that the OsDHHC13 promoter region contains some stress and light response elements, and its encoded protein is a typical membrane protein with four transmembrane d
4、omains. When the OsDHHC13 overexpressing lines were suffered from oxidative stress with H2O2, the roots of overexpressing seedlings were significantly longer than those of wildtype, indicating that OsDHHC13 can remove the inhibition of root growth by H2O2 and improve the ability of resistance to oxi
5、dative stress. Subsequently, analysis of H2O2 contents found that the H2O2 contents in the roots of overexpressing seedlings were markedly lower than that in wild type. qRTPCR analysis further revealed that the transcriptional levels of enzyme genes related to H2O2 elimination increased significantl
6、y, suggesting that OsDHHC13 can promote the expression of enzyme genes related to H2O2 elimination and regulate the homeostasis of endogenous H2O2 in plants. In a whole, present study preliminarily proved that the zinc finger protein gene OsDHHC13 positively regulates the ability of resistance to ox
7、idative stress.Key words:OsDHHC13 gene;H2O2 content;root length;zinc finger proteinDHHC型鋅指蛋白是一類富含DHHC AspHisHisCys 型鋅指構(gòu)造域的蛋白質(zhì).DHHC型鋅指構(gòu)造域是一種富含半胱氨酸高度保守的鋅指構(gòu)造域,是一種常見(jiàn)的DNA結(jié)合構(gòu)造單元.DHHC型鋅指蛋白一般具有的通用構(gòu)造,至少存在4段跨膜構(gòu)造域、DHHCCRD構(gòu)造域以及DPG功能元件1.DHHC型鋅指蛋白的主要功能是棕櫚?;湎掠蔚鞍?,從而影響其下游蛋白的定位、轉(zhuǎn)運(yùn),最終影響其生理功能2.DHHC型鋅指蛋白的棕櫚?;巧矬w一種常見(jiàn)的修
8、飾方式,它包括3種方式3-4,最主要是PAT介牧蝓;轉(zhuǎn)移,其次是硫?;o酶A介導(dǎo)的轉(zhuǎn)移和以硫?;o酶A為輔酶的蛋白質(zhì)介導(dǎo)轉(zhuǎn)移.以往對(duì)DHHC型鋅指蛋白的研究主要集中在動(dòng)物和酵母的研究.Pedram等5發(fā)現(xiàn)動(dòng)物體內(nèi)DHHC7與DHHC21蛋白可以作為新靶點(diǎn)選擇性地抑制膜性類固醇受體定位并影響其功能.Fukata等6在人和鼠基因庫(kù)挑選時(shí),挑選出23個(gè)可以編碼不同DHHC型蛋白的DHHC基因.在植物中DHHC基因的功能研究相對(duì)甚少,目前只有OsDHHC1,AtTIP1TIP GROWTH DEFECTIVE1和At5g04270這3個(gè)基因的功能是研究的比較清楚的.研究發(fā)現(xiàn)OsDHHC1基因主要與水稻
9、株型構(gòu)建及產(chǎn)量相關(guān)7,AtTIP1主要影響擬南芥的根毛的生長(zhǎng)2.活性氧ROSReactive oxygen species是植物體內(nèi)普遍存在的一種代謝產(chǎn)物,主要包括超氧根離子、過(guò)氧化氫和羥自由基等8-10.在正常情況下細(xì)胞內(nèi)ROS的產(chǎn)生與去除處于動(dòng)態(tài)平衡中,ROS濃度相比照擬低.但是當(dāng)植物受到非生物脅迫時(shí),植物體內(nèi)這種動(dòng)態(tài)平衡就會(huì)受到破壞,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)積累過(guò)多的ROS11-12,從而影響植物的各種生理功能.其中H2O2是研究最多的ROS,研究發(fā)現(xiàn)過(guò)量的H2O2會(huì)對(duì)植物造成損傷,而適量的H2O2可作為細(xì)胞內(nèi)一種信號(hào)分子,參與并調(diào)控植物的生長(zhǎng)發(fā)育和對(duì)各種生物和非生物刺激的應(yīng)答反響13.近年的研究提醒
10、, H2O2通過(guò)在信號(hào)傳導(dǎo)途徑的上游抑制或激活相關(guān)激酶的活性來(lái)啟動(dòng)或增強(qiáng)信號(hào)的作用從而影響植物的氧化脅迫反響、細(xì)胞凋亡、氣孔的關(guān)閉、發(fā)育以及組織的形態(tài)建成10,14-16.Ivanchenko等17發(fā)現(xiàn)H2O2可以影響西紅柿根的發(fā)育,在IAA或H2O2處理下會(huì)導(dǎo)致dgt11突變體根部?jī)?nèi)源性H2O2增加,從而抑制西紅柿根的發(fā)育.Zhang等18發(fā)現(xiàn)H2O2可作為信號(hào)分子介導(dǎo)OsRACK1基因調(diào)控水稻種子的萌發(fā). 在本研究中,我們克隆了OsDHHC13基因,構(gòu)建了該基因過(guò)表達(dá)的轉(zhuǎn)基因株系,并對(duì)OsDHHC13過(guò)表達(dá)株系的H2O2脅迫響應(yīng)進(jìn)展了初步研究,發(fā)現(xiàn)鋅指蛋白OsDHHC13正調(diào)控水稻的抗氧化
11、脅迫響應(yīng).1 材料與方法1.1 實(shí)驗(yàn)材料粳稻品種日本晴用于OsDHHC13基因的克隆和組織特異性表達(dá)分析.粳稻品種Kitaake用于作為轉(zhuǎn)化受體,其轉(zhuǎn)基因植株用于后續(xù)的分子及表型分析.1.2 實(shí)驗(yàn)方法1.2.1 生物信息學(xué)分析OsDHHC13基因全長(zhǎng)CDS序列與氨基酸序列通過(guò)TIGR 和NCBI ncbi.nlm.nih. gov, National Center for Biotechnology information數(shù)據(jù)庫(kù)獲得.利用植物啟動(dòng)子順式作用元件分析網(wǎng)站plantCARE 對(duì)OsDHHC13基因啟動(dòng)子進(jìn)展分析.采用丹麥科技大學(xué)生物序列分析中心CBS的蛋白跨膜構(gòu)造域預(yù)測(cè)程序TMHM
12、M cbs.dtu.dk/services/TMHMM/ 進(jìn)展跨膜構(gòu)造域預(yù)測(cè).1.2.2 載體構(gòu)建與水稻轉(zhuǎn)化利用Premier 5.0軟件設(shè)計(jì)克隆正向引物5CCCAAGCTTATGCTCTTCGTCATATGTGG TG3下劃線為Hind酶切位點(diǎn) 和反向引物5CGGGATCCAAGAAGTTTTGAAC TCGAAT TGTC3 下劃線為BamH酶切位點(diǎn),然后以日本晴的cDNA為模板,用prime STAR 高保真酶TaKaRa,通過(guò)PCR反響獲得目的片段.PCR反響條件為:98 ,5 min;98,10 s;56 ,15 s;72 ,1 min ;共35個(gè)循環(huán).然后將PCR產(chǎn)物連接至pGEM
13、T Easy Vector Promega,送至鉑尚生物技術(shù)公司測(cè)序.最后將測(cè)序正確的OsDHHC13的CDS片段通過(guò)酶切連接到pHB載體19.在pHBOsDHHC13載體中,目的基因OsDHHC13由235S啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)表達(dá),植物中的挑選標(biāo)記基因?yàn)槌泵顾乜剐曰騂pt 主要用于轉(zhuǎn)化過(guò)程的抗性愈傷組織挑選和除草劑Basta抗性基因bar 主要用于苗期挑選.根據(jù)林建中等20-21的水稻轉(zhuǎn)化方法,將重組的質(zhì)粒pHBOsDHHC13經(jīng)電擊法轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌,通過(guò)農(nóng)桿菌侵染水稻粳稻品種Kitaake的愈傷組織以獲取過(guò)表達(dá)轉(zhuǎn)基因株系.1.2.3 轉(zhuǎn)基因水稻的鑒定及實(shí)時(shí)定量PCRqRTPCR分析采用經(jīng)典的CTAB
14、十六烷基三甲基溴化銨法 20從再生的轉(zhuǎn)基因水稻株系中提取DNA.然后以特異性引物F: 5ATCTCGTGCTTTCAGCTTCG3; R: 5ACATCGCCTCGCTCCAGT3進(jìn)展PCR鑒定TDNA區(qū)域的潮霉素抗性基因Hpt.同時(shí),采用Trizol試劑盒Invitrogen提取各轉(zhuǎn)基因株系葉片的總RNA,然后再利用Maxima First Strand cDNA Synthesis Kit 試劑盒TaKaRa逆轉(zhuǎn)錄成cDNA, 并以此為模板進(jìn)展qRTPCR鑒定OsDHHC13的轉(zhuǎn)錄程度.PCR反響程度進(jìn)展分析qRTPCR引物見(jiàn)表1.未轉(zhuǎn)化的Kitaake野生型WT作為對(duì)照.為了檢測(cè)OsDH
15、HC13的表達(dá)對(duì)H2O2的響應(yīng),將野生型Kitaake幼苗水培培養(yǎng)至三葉期,然后用5 mmol/L的H2O2分別處理幼苗1 h, 3 h, 6 h, 9 h, 12 h和24 h,選取水稻幼苗根部用于提取總RNA并逆轉(zhuǎn)錄為cDNA.采用qRTPCR鑒定OsDHHC13在H2O2處理的不同時(shí)間點(diǎn)的轉(zhuǎn)錄程度.另外,提取營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期20 d的幼苗和生殖生長(zhǎng)期抽穗期野生型的各組織器官的總RNA并逆轉(zhuǎn)錄為cDNA, 然后采用qRTPCR分析OsDHHC13在水稻不同生長(zhǎng)時(shí)期和不同組織器官中的轉(zhuǎn)錄程度.為了檢測(cè)轉(zhuǎn)基因株系中與H2O2去除相關(guān)的基因OsCATb,OsSOD1,OsAPX1和OsAPX2的轉(zhuǎn)錄程
16、度14-17,將轉(zhuǎn)基因株系和野生型幼苗水培培養(yǎng)至三葉期,然后用5 mmol/L的H2O2處理幼苗12 h,然后提取幼苗總RNA并逆轉(zhuǎn)錄為cDNA.采用qRTPCR鑒定4個(gè)基因的轉(zhuǎn)錄程度qRTPCR引物見(jiàn)表 水稻幼苗的處理及根長(zhǎng)的測(cè)定挑選OsDHHC13轉(zhuǎn)基因株系及野生型的飽滿種子,用10% NaClO消毒30 min,再用去離子水ddH2O漂洗45次,然后放置于室匚脹處理48 h,接著轉(zhuǎn)移至28 恒溫培養(yǎng)箱催芽48 h.待種子露白后,再轉(zhuǎn)入添加和未添加H2O25 mmol/L的1/2 MS培養(yǎng)液的試管里.種子用棉花作為支撐讓其位于試管上部,置于恒溫培養(yǎng)室28 ,光照16 h/黑暗
17、8 h培養(yǎng)10 d.然后觀察幼苗表型,并測(cè)量和統(tǒng)計(jì)根長(zhǎng).1.2.5 水稻根部H2O2含量的測(cè)定將水培至三葉期的OsDHHC13轉(zhuǎn)基因株系及野生型幼苗用濃度為5 mmol /L H2O2處理5 d,然后用碧云天生物技術(shù)公司的H2O2檢測(cè)試劑盒提取并測(cè)定水稻根部H2O2含量. 2 結(jié) 果2.1 OsDHHC13基因啟動(dòng)子調(diào)控元件分析通過(guò)相關(guān)網(wǎng)站 /的sequence viewer工具找到OsDHHC13基因起始密碼子上游1 500 bp的片段,然后把這段核苷酸序列輸入植物專用的啟動(dòng)子分析網(wǎng)站在線分析工具中,對(duì)OsDHHC13基因上游啟動(dòng)子進(jìn)展預(yù)測(cè)分析如圖1所示.結(jié)果
18、發(fā)現(xiàn),OsDHHC13基因啟動(dòng)子存在大量的AEbox,Box 4,Gbox和Ibox等光響應(yīng)元件,同時(shí)也存在一些與激素相關(guān)的AuxRRcore和Pbox等元件.有趣的是,在啟動(dòng)子區(qū)域還發(fā)現(xiàn)了TCrich repeats和 MBS等與抗旱以及脅迫響應(yīng)親密相關(guān)的元件.該分析結(jié)果說(shuō)明,OsDHHC13基因可能被光信號(hào)、激素以及其他非生物脅迫誘導(dǎo)表達(dá),并且其編碼蛋白有可能參與植物的光信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、激素轉(zhuǎn)導(dǎo)以及非生物脅迫響應(yīng).2.2 OsDHHC13蛋白的跨膜構(gòu)造域預(yù)測(cè)將OsDHHC13的氨基酸全長(zhǎng)序列輸入跨膜構(gòu)造域預(yù)測(cè)程序TMHMM cbs.dtu.dk/ services/TMHMM/,結(jié)果顯示OsDH
19、HC13蛋白可能存在4個(gè)跨膜構(gòu)造域圖2.在跨膜構(gòu)造域的預(yù)測(cè)結(jié)果中,其跨膜分值越高,那么說(shuō)明該段序列跨膜的可能性越大.在OsDHHC13可能存在的4個(gè)跨膜構(gòu)造域中,3個(gè)分值較高,而另1個(gè)分值那么稍低,但是其分值仍大于0.8.因此,該結(jié)果說(shuō)明,OsDHHC13可能是一個(gè)具有4個(gè)跨膜構(gòu)造域的典型膜蛋白.圖中斷裂雙線表示該段氨基酸序列處于質(zhì)膜的胞外側(cè);斷裂單線表示該段氨基酸序列處于質(zhì)膜的胞質(zhì)側(cè); 連續(xù)線表示該段氨基酸序列為跨膜構(gòu)造域2.3 OsDHHC13基因的克隆與轉(zhuǎn)基因植株的鑒定通過(guò)NCBI以及TIGR等數(shù)據(jù)庫(kù)查找到OsDHHC13的基因組序列及其CDS序列,利用特異性的克隆引物,從水稻品種日本晴
20、的cDNA中克隆了OsDHHC13的CDS序列如圖3a所示.通過(guò)酶切連接的方式將OsDHHC13連接至終載體pHB.最后轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌浸染水稻愈傷組織,再經(jīng)組織培養(yǎng)及田間栽培后,共收獲8個(gè)獨(dú)立的OsDHHC13過(guò)表達(dá)轉(zhuǎn)基因株系的種子.隨后,對(duì)T1代幼苗分別進(jìn)展了DNA與RNA程度的鑒定如圖3bc所示.從圖3b可以看出,8個(gè)轉(zhuǎn)基因株系均能檢測(cè)到潮霉素抗性基因hpt,說(shuō)明TDNA已經(jīng)成功整合到轉(zhuǎn)基因株系的基因組中.OsDHHC13的轉(zhuǎn)錄程度檢測(cè)發(fā)現(xiàn),5個(gè)株系中的轉(zhuǎn)錄程度顯著高于野生型WT; 圖3c,說(shuō)明OsDHHC13已成功過(guò)表達(dá)于轉(zhuǎn)基因株系.隨后我們選取了3個(gè)過(guò)表達(dá)株系:35S:OsDHHC139,
21、35S:OsDHHC1312和35S:OsDHHC1319的T2代純合子用于后續(xù)的表型鑒定.2.4 OsDHHC13基因的時(shí)空表達(dá)分析基因的時(shí)空表達(dá)形式可為預(yù)測(cè)和研究其生物學(xué)功能提供參考根據(jù).于是,我們采用qRTPCR方法分析了營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)期和生殖生長(zhǎng)期OsDHHC13在水稻不同組織器官中的相對(duì)表達(dá)量如圖4所示.結(jié)果發(fā)現(xiàn),在營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)的苗期OsDHHC13在根、莖和葉中均有表達(dá),尤其在葉片中的表達(dá)量相對(duì)較高,而根中的相對(duì)較低如圖4a所示.在生殖生長(zhǎng)的抽穗期,OsDHHC13在各組織器官中均有表達(dá),其中葉片中的表達(dá)量最高,根中的表達(dá)量?jī)H次于葉片,而節(jié)間的表達(dá)量最低如圖4b所示.2.5 OsDHHC13
22、轉(zhuǎn)基因株系對(duì)H2O2的響應(yīng)啟動(dòng)子分析發(fā)現(xiàn),OsDHHC13基因的啟動(dòng)子存在TCrich repeats和 MBS等與抗旱以及脅迫響應(yīng)親密相關(guān)的元件如圖1所示, 說(shuō)明該基因可能參與了非生物脅迫響應(yīng).為了驗(yàn)證該假設(shè),我們用5 mmol/L的H2O2處理剛發(fā)芽的OsDHHC13轉(zhuǎn)基因株系種子10 d,然后觀察表型并統(tǒng)計(jì)根長(zhǎng).結(jié)果發(fā)現(xiàn),在正常水培條件未含H2O2下轉(zhuǎn)基因株系的根長(zhǎng)與野生型沒(méi)有差異如圖5ac所示,而在H2O2處理?xiàng)l件下轉(zhuǎn)基因株系的根顯著長(zhǎng)于野生型如圖5bd所示.該結(jié)果說(shuō)明,OsDHHC13轉(zhuǎn)基因植株進(jìn)步了對(duì)H2O2脅迫的抗性,鋅指蛋白OsDHHC13可能正調(diào)控植物的抗氧化脅迫.隨后,我們
23、檢測(cè)了H2O2對(duì)野生型幼苗根部OsDHHC13轉(zhuǎn)錄程度的影響,發(fā)現(xiàn)OsDHHC13的轉(zhuǎn)錄程度隨著H2O2處理時(shí)間的延長(zhǎng)而升高,在12 h時(shí)到達(dá)最大值,隨后稍有下降如圖5e所示.該結(jié)果說(shuō)明H2O2可以誘導(dǎo)OsDHHC13基因的表達(dá),意味著OsDHHC13基因可能參與脅迫條件下水稻根部生長(zhǎng)和發(fā)育的調(diào)控.2.6 根部?jī)?nèi)源性H2O2含量變化及相關(guān)基因測(cè)定為了進(jìn)一步探究在外源性H2O2處理下OsDHHC13基因如何影響水稻幼苗根部生長(zhǎng)與發(fā)育,我們進(jìn)一步對(duì)幼苗根部?jī)?nèi)源性H2O2含量進(jìn)展了測(cè)定.如圖6a所示,當(dāng)OsDHHC13轉(zhuǎn)基因株系幼苗經(jīng)5 mmol /L H2O2處理5 d后,其水稻根部H2O2含量比
24、野生型顯著降低,而在未經(jīng)H2O2處理的幼苗根中轉(zhuǎn)基因株系與野生型間沒(méi)有明顯的差異.該結(jié)果說(shuō)明,OsDHHC13可能正調(diào)控氧化脅迫條件下體內(nèi)H2O2的降解,從而解除氧化脅迫對(duì)植株的傷害.為了進(jìn)一步驗(yàn)證以上推y,我們檢測(cè)了5 mmol/L H2O2處理12 h的轉(zhuǎn)基因株系幼苗中與H2O2去除相關(guān)的酶基因OsCATB,OsSOD1,OsAPX1和OsAPX2等的轉(zhuǎn)錄程度如圖6所示.結(jié)果發(fā)現(xiàn),在正常條件下OsCATB,OsSOD1,OsAPX1和OsAPX2等4個(gè)酶基因的轉(zhuǎn)錄程度在轉(zhuǎn)基因株系和野生型WT間沒(méi)有明顯差異,但是在H2O2處理?xiàng)l件下轉(zhuǎn)基因株系中4個(gè)酶基因的轉(zhuǎn)錄程度顯著高于野生型如圖6be所示
25、.該結(jié)果說(shuō)明,在氧化脅迫條件下OsDHHC13確實(shí)能促進(jìn)去除H2O2的相關(guān)酶基因表達(dá),從而調(diào)節(jié)內(nèi)源性H2O2含量的動(dòng)態(tài)平衡,最終解除H2O2對(duì)根的生長(zhǎng)與發(fā)育的抑制. 3 論DHHC蛋白是一類典型的膜蛋白,一般具有多段跨膜構(gòu)造域,包含了DHHCCRD構(gòu)造域.它的主要功能是棕櫚?;湎掠蔚鞍?,從而影響其轉(zhuǎn)運(yùn)與定位,最終調(diào)控植物的各種生理功能2.通過(guò)生物信息學(xué)的預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn),OsDHHC13蛋白具有4段跨膜構(gòu)造域如圖1所示,并且發(fā)現(xiàn)其啟動(dòng)子含有多個(gè)與光調(diào)控、激素和脅迫響應(yīng)相關(guān)的元件如圖2所示,為研究該基因與激素、光調(diào)控相關(guān)功能提供了重要線索.通過(guò)對(duì)基因在植物不同組織器官中的表達(dá)分析,可以對(duì)該基因的功能進(jìn)
26、展預(yù)測(cè)22.我們對(duì)OsDHHC13在水稻不同時(shí)期和不同組織器官的表達(dá)特異性進(jìn)展了分析,發(fā)現(xiàn)OsDHHC13主要在水稻葉片、根以及莖表達(dá)如圖4所示,暗示該基因可能參與水稻根、莖和葉的生長(zhǎng)與發(fā)育調(diào)控.隨后,通過(guò)H2O2處理發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因株系的根要顯著長(zhǎng)于野生型,相反正常條件下的根長(zhǎng)那么沒(méi)有明顯變化,說(shuō)明該基因參與逆境下根的生長(zhǎng)與發(fā)育調(diào)控.同時(shí),我們發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因株系與野生型間在葉片形態(tài)及株高等方面沒(méi)有明顯變化結(jié)果未列出,因此OsDHHC13在葉和莖中的功能還有待進(jìn)一步研究.ROS的穩(wěn)態(tài)在植物中發(fā)揮重要功能13.H2O2是最主要的一種ROS,在植物中參與信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)、植物的生長(zhǎng)發(fā)育以及非生物脅迫響應(yīng)的作用22-
27、23.H2O2在植物抗病反響中的作用已經(jīng)得到了廣泛的研究, 而在非生物脅迫條件下,同樣扮演了關(guān)鍵的調(diào)控作用, 參與多種生理生化過(guò)程, 包括光合作用、光呼吸、氣孔運(yùn)動(dòng)與細(xì)胞程序性死亡等.前人已有活性氧代謝以及H2O2信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)方面的綜述報(bào)道24.Ivanchenko等17發(fā)現(xiàn)H2O2積累可以抑制西紅柿根部的生長(zhǎng)與發(fā)育,但詳細(xì)機(jī)制尚不清楚.本研究通過(guò)H2O2處理野生型與轉(zhuǎn)基因幼苗,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因株系根顯著長(zhǎng)于野生型如圖5所示.通過(guò)測(cè)定根部H2O2含量以及與H2O2去除相關(guān)的酶基因表達(dá)分析,過(guò)表達(dá)株系H2O2含量以及相關(guān)基因表達(dá)量顯著高于野生型如圖6所示.這些結(jié)果說(shuō)明,在氧化脅迫等逆境下OsDHHC13確
28、實(shí)能促進(jìn)去除H2O2的相關(guān)酶基因表達(dá),從而解除H2O2對(duì)根的生長(zhǎng)與發(fā)育的抑制.至于作為鋅指蛋白的OsDHHC13如何棕櫚?;湎掠蔚鞍?,最終如何調(diào)控水稻根部H2O2的動(dòng)態(tài)平衡的分子機(jī)制尚且未知,還有待進(jìn)一步研究.綜上所述,本研究初步發(fā)現(xiàn),水稻鋅指蛋白基因OsDHHC13能促進(jìn)去除H2O2的相關(guān)酶基因表達(dá),調(diào)節(jié)內(nèi)源性H2O2的動(dòng)態(tài)平衡,從而正調(diào)控水稻的抗氧化脅迫才能.參考文獻(xiàn)1 MITCHELL D A, VASUDEVAN A, LINDER M E, et al. Thematic review series: lipid posttranslational modifications. P
29、rotein palmitoylation by a family of DHHC protein Sacyltransferases J. Journal of Lipid Research, 2022, 476: 1118-1127.2 HEMSLEY P A, KEMP A C, GRIERSON C S. The TIP GROWTH DEFECTIVE1 Sacyl transferase regulates plant cell growth in ArabidopsisJ. Plant Cell, 2022, 179: 2554-2563.3 RESH M D. Use of a
30、nalogs and inhibitors to study the functional significance of protein palmitoylationJ. Methods, 2022, 402: 191-197.4 GREAVES J, CHAMBERLAIN L H. Sacylation by the DHHC protein familyJ. Biochemical Society Transactions, 2022, 382: 522-524.5 PEDRAM A, RAZANDI M, DESCHENES R J, et al. DHHC7 and21 are p
31、almitoylacyltransferases for sex steroid receptorsJ. Molecular Biology of the Cell, 2022, 231: 188-199.6 FUKATA Y, IWANAGA T, FUKATA M. Systematic screening for palmitoyl transferase activity of the DHHC protein family in mammalian cellsJ. Methods, 2022, 402: 177-182.7 ZHOU B, LIN J Z, PENG D, et al
32、. Plant architecture and grain yield are regulated by the novel DHHCtype zinc finger protein genes in rice Oryza sativa L.J. Plant Science, 2022.8 INZ D, VAN MONTAGU M. Oxidative stress in plantsJ. Current Opinion in Biotechnology, 1995, 62: 153-158.5: 779-795. 10HALLIWELL B. Redox biology is a fund
33、amental theme of aerobic life J. Plant Physiol, 2022, 1418: 312-322.11SONG X H, WANG K, GUO L L, et al. Effects of catalase and ascorbate peroxidase on the root growth of rice under cadmium stressJ. Agricultural Science Technology, 2022, 129: 1256-1259.12JIANG S J, YU H, ZHANG G Q, et al. Research o
34、n oxidative stress induced by tenuazonic acid from Alternaria augustiovoide and changes in antioxidant enzyme activities in leaves of Echinochloa crusgalliJ. Agricultural Science Technology, 2022, 126: 792-794.13DRGE W. Free radicals in the physiological control of cell functionJ. Physiological Revi
35、ews, 2002, 821: 47-95.14GAPPER C, DOLAN L. Control of plant development by reactive oxygen speciesJ. Plant Physiology, 2022, 1412: 341-345.15GECHEV T S, HILLE J. Hydrogen peroxide as a signal controlling plant programmed cell deathJ. The Journal of Cell Biology, 2022, 1681: 17-20.16MITTLER R, VANDER
36、AUWERA S, GOLLERY M, et al. Reactive oxygen gene network of plantsJ. Trends in Plant Science, 2022, 910: 490-498.17IVANCHENKO M G, OS D D, MONSHAUSEN G B, et al. Auxin increases the hydrogen peroxide H2O2 concentration in tomato Solanum lycopersicum root tips while inhibiting root growthJ. Annals of Botany, 2022, 1126: 1107-1116.18ZHANG D, CHEN L, LI D, et al. OsRACK1 is involved in abscisic acidand H2O2mediated signaling to regulate
溫馨提示
- 1. 本站所有資源如無(wú)特殊說(shuō)明,都需要本地電腦安裝OFFICE2007和PDF閱讀器。圖紙軟件為CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.壓縮文件請(qǐng)下載最新的WinRAR軟件解壓。
- 2. 本站的文檔不包含任何第三方提供的附件圖紙等,如果需要附件,請(qǐng)聯(lián)系上傳者。文件的所有權(quán)益歸上傳用戶所有。
- 3. 本站RAR壓縮包中若帶圖紙,網(wǎng)頁(yè)內(nèi)容里面會(huì)有圖紙預(yù)覽,若沒(méi)有圖紙預(yù)覽就沒(méi)有圖紙。
- 4. 未經(jīng)權(quán)益所有人同意不得將文件中的內(nèi)容挪作商業(yè)或盈利用途。
- 5. 人人文庫(kù)網(wǎng)僅提供信息存儲(chǔ)空間,僅對(duì)用戶上傳內(nèi)容的表現(xiàn)方式做保護(hù)處理,對(duì)用戶上傳分享的文檔內(nèi)容本身不做任何修改或編輯,并不能對(duì)任何下載內(nèi)容負(fù)責(zé)。
- 6. 下載文件中如有侵權(quán)或不適當(dāng)內(nèi)容,請(qǐng)與我們聯(lián)系,我們立即糾正。
- 7. 本站不保證下載資源的準(zhǔn)確性、安全性和完整性, 同時(shí)也不承擔(dān)用戶因使用這些下載資源對(duì)自己和他人造成任何形式的傷害或損失。
最新文檔
- 高安市九年級(jí)上學(xué)期語(yǔ)文期中考試卷
- 二年級(jí)數(shù)學(xué)計(jì)算題專項(xiàng)練習(xí)集錦
- 脫硫廢水零排放技術(shù)協(xié)議書(2篇)
- 高中技術(shù)學(xué)業(yè)水平測(cè)試試卷
- 南京工業(yè)大學(xué)浦江學(xué)院《食品標(biāo)準(zhǔn)與法規(guī)》2022-2023學(xué)年第一學(xué)期期末試卷
- 翰林國(guó)際(原曹妃甸科教城共享居住及配套)土地固化施工組織設(shè)計(jì)
- 多種多樣的生態(tài)系統(tǒng)說(shuō)課稿
- gkh說(shuō)課稿第課時(shí)
- 《小數(shù)的性質(zhì)》說(shuō)課稿
- 租地合同范本(2篇)
- 蘋果商店所有地區(qū)價(jià)格和等級(jí)表
- 【參考】華為騰訊職位管理0506
- 五年級(jí)英語(yǔ)上冊(cè)Unit1Getupontime!教案陜旅版
- 風(fēng)機(jī)安裝工程質(zhì)量通病及預(yù)防措施
- 三角形鋼管懸挑斜撐腳手架計(jì)算書
- 剪紙教學(xué)課件53489.ppt
- 旅游業(yè)與公共關(guān)系PPT課件
- 勞動(dòng)法講解PPT-定稿..完整版
- 彩色的翅膀_《彩色的翅膀》課堂實(shí)錄
- 假如你愛(ài)我的正譜
- 銅芯聚氯乙烯絕緣聚氯乙烯護(hù)套控制電纜檢測(cè)報(bào)告可修改
評(píng)論
0/150
提交評(píng)論