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文檔簡介
67.050B
31
DB12天津 市 地 方 標(biāo) 準(zhǔn)DB12/T
647—2016大白菜品種純度
分子標(biāo)記檢測方法Methods
of
identifying
purity
of
Chinese
by
using
2016-09-27
發(fā)布 2016-11-01
實施天津市市場和質(zhì)量監(jiān)督管理委員會發(fā)布DB12/T
647—2016 本標(biāo)準(zhǔn)按照
GB/T
—
給出的規(guī)則起草。本標(biāo)準(zhǔn)由天津市農(nóng)村工作委員會提出。本標(biāo)準(zhǔn)起草單位:天津市農(nóng)業(yè)質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測技術(shù)研究所、天津市蔬菜研究中心。本標(biāo)準(zhǔn)主要起草人:趙新、王超楠、蘭青闊、王成、劉莉莉、朱珠、李梅、陳銳、徐石勇。本標(biāo)準(zhǔn)
年
9
月首次發(fā)布。DB12/T
647—2016
SSR
1 范圍本標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定了大白菜品種純度分子標(biāo)記檢測方法的術(shù)語和定義、檢測方法、純度計算方法。本標(biāo)準(zhǔn)適用于大白菜單交種的純度檢測。2 規(guī)范性引用文件下列文件對于本文件的應(yīng)用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,僅所注日期的版本適用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改單)適用于本文件。GB/T
3543.2 農(nóng)作物種子檢驗規(guī)程
扦樣GB/T
6682 分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法3 術(shù)語和定義下列術(shù)語和定義適用于本文件。3.1品種純度
purity品種純度指種子在SSR分子標(biāo)記帶型方面典型一致的程度,用具有本品種特異帶型的種子粒數(shù)占檢測樣品種子粒數(shù)的百分率表示,以反映某品種特征特性的一致性程度。3.2聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)
chain
reaction(PCR)一種在體外通過酶促反應(yīng)擴增特異片段的技術(shù)。3.3簡單重復(fù)序列
sequence
repeat(SSR)由幾個核苷酸(個)為重復(fù)單位聚集而成的長達(dá)幾十個至幾百個(一般為)的串聯(lián)重復(fù)序列,又稱微衛(wèi)星序列或短串聯(lián)重復(fù)序列,其高度多態(tài)性主要來源于串聯(lián)數(shù)目的不同。3.4分子標(biāo)記
以蛋白質(zhì)、核酸分子的多態(tài)性為基礎(chǔ),檢測生物在遺傳上的差異。4原理SSRPCR技術(shù)將多態(tài)的擴增出來,通過電泳檢測擴增產(chǎn)物,利用電泳圖譜進行大白菜品種純度檢測。DB12/T
647—20165儀器設(shè)備及試劑5.1 儀器設(shè)備PCR儀;測序電泳槽;水平電泳槽;高壓電泳儀(3000
V,400
,400
W);萬分之一電子天-鍋;計等。5.2 試劑乙二胺四乙酸二鈉(EDTA-Na);三羥甲基氨基甲烷(Tris);鹽酸(HCl,36%);十二烷基硫酸鈉(SDS);氯化鈉(NaCl);氫氧化鈉(NaOH);硼酸;去離子甲酰胺;溴酚藍(lán);二甲苯青TEMED過硫酸銨;冰醋酸;硝酸銀;甲醛溶液(37%);
DNA聚合酶(含Mg的10×PCR緩沖液);四SSRGold
ViewGB/T6682規(guī)定的一級水等。除特殊說明外,所用試劑均為分析純試劑。5.3 溶液配制相關(guān)溶液配制方法見附錄A。6 方法步驟6.1 取樣按照GB/T
3543.2規(guī)定方法扦樣,從送檢樣品中隨機取10
g種子,分別隨機取其親本種子106.2 單粒種子的
DNA
提取6.2.1 樣品預(yù)處理在玻璃培養(yǎng)皿底部墊上一層厚度適宜的棉花,用自來水浸濕后均勻地撒上種子,再于表面覆蓋一1635℃光照培養(yǎng),8小時備用。也可采用經(jīng)驗證的、等效的培養(yǎng)條件。6.2.2 DNA
取單株幼苗子葉,放入
mL離心管中,在液氮中研碎,放入
離心管中。將DNA提取液預(yù)熱到65
65
30
離心管中加入
μL
24:1氯仿-10
g離心
μL轉(zhuǎn)入另一支1.5
mL離心管,加入400
μL
℃預(yù)冷無水乙醇沉淀DNA。10
g離心1
,棄上清液,加入500
μL乙醇—乙酸銨溶液,6000
g5
收集沉淀。加入
μL
TE(pH8.0DNA0.8
%的瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA。使用紫外-可見成像系統(tǒng)觀察DNA電泳條帶的完整性。6.3分子標(biāo)記篩選用30對核心引物進行PCR10份DNA互補性好的引物作為純度檢測的SSR分子標(biāo)記。6.4 PCR
DB12/T
647—20166.4.1 反應(yīng)體系總體積20
μL,包括
μL超純水、2
μL含Mg的10×PCR緩沖液、
μL
dNTPs(2.5
)、3.2
μL
SSR
2
μL
Taq
DNA2.5
U/μL2
μL
DNA(30~50
ng/μL6.4.2 反應(yīng)程序94
℃預(yù)變性5
;94
℃變性1
,58
℃退火45
s,72
℃延伸45
s3572
℃延伸7
;
℃保存?zhèn)溆谩?.5 變性聚丙烯酰氨凝膠電泳按照附錄C規(guī)定的方法,進行4.5%變性聚丙烯酰胺凝膠制作及電泳檢測擴增產(chǎn)物。7 純度計算以篩選出來的分子標(biāo)記為引物擴增送檢樣品的DNA,通過帶型統(tǒng)計,用具有本品種特異帶型的種子粒數(shù)占檢測樣品種子粒數(shù)的百分率表示純度,計算公式如下: 純度%
100%檢測樣品種子粒數(shù)DB12/T
647—2016附錄A(規(guī)范性附錄)溶液配制A.1 DNA提取液含有
Tris-HCl(pH
8.0250
NaCl,25
EDTA,0.5%SDS汽滅菌后使用。A.2引物稀釋按照引物合成單的說明先配制100
的儲存液,取適量儲存液稀釋40倍,配制濃度為mmol/L的使用液。A.3 6×變性上樣緩沖液去離子甲酰胺49
mL,0.5
的EDTA溶液(
)1mL,溴酚藍(lán)0.125
g,二甲苯青0.125
g。A.4 10×電泳緩沖液Tris
108g,硼酸55
g,
EDTA(pH
8.0)溶液37
,定容至1000
mL。A.540%丙烯胺膠丙烯酰胺
g,甲叉雙丙烯酰胺10
g,定容至500
。A.64.5%丙烯胺膠尿素
g,10×電泳緩沖液100
,40%丙烯酰胺膠112.5
mL,定容至1000
mL。A.7 1%親和硅烷20
μL親和硅烷,20
μL冰醋酸,加無水乙醇至2
mL?,F(xiàn)用現(xiàn)配。A.8 2%剝離硅烷1
mL剝離硅烷,49
mL三氯甲烷。A.9 10%過硫酸銨0.1
g過硫酸銨溶于1
超純水中?,F(xiàn)用現(xiàn)配。A.10 固定液DB12/T
647—2016200
mL冰醋酸,定容至
mL。A.11 染色液4
g硝酸銀,定容至2000
。A.12 顯影液2000
蒸餾水中加入40
g氫氧化鈉和10
甲醛。3’)01BC-1F:
R:
02BC-2F:
R:
03BC-3F:
CTTCCACAGGAGGAGACTGCR:
04BC-4F:
R:
05BC-5F:
R:
06BC-6F:
R:
07BC-7F:
R:
TGCGGTTTGAGCAGTAGTTG08BC-8F:
R:
09BC-9F:
R:
10BC-10F:
R:
11BC-11F:
R:
12BC-12F:
TCCCTCGTGACAAATCTCAAR:
13BC-13F:
R:
14BC-14F:
R:
15BC-15F:
R:
16BC-16F:
R:
17BC-17F:
R:
DB12/T
647—2016附
錄 B(規(guī)范性附錄)30
對核心引物3’)18BC-18F:
R:
19BC-19F:
R:
20BC-20F:
R:
21BC-21F:
R:
22BC-22F:
R:
23BC-23F:
R:
24BC-24F:
R:
25BC-25F:
AACGGATCTGACTTGGCATCR:
26BC-26F:
R:
27BC-27F:
R:
28BC-28F:
R:
29BC-29F:
R:
ACCCACATAGCATGAGAGCC30BC-30F:
R:
DB12/T
DB12/T
647—2016DB12/T
647—2016(規(guī)范性附錄)制膠過程C.1 凝膠制作將玻璃板洗凈,用無水乙醇擦兩遍,晾干。在長板上涂1%親和硅烷,在短板上涂2%玻璃硅烷。4.5%丙烯酰胺膠80
mL
80
μL和10%過硫酸銨
μL生。灌膠結(jié)束后,將梳子齒向外,輕輕的插入膠中,使其聚合1
h以上。C.2 預(yù)電泳待膠凝固后,拔出梳子,將電泳槽組裝好,80
W恒功率下預(yù)電泳15
。C.3 變性在20
μL
PCR產(chǎn)物中加入4
μL
6×變性上樣緩沖液,混勻后,在PCR儀上運行變性程序:95
℃變性5
,4
℃冷卻
。C.4 電泳用洗耳球吹洗加樣槽
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