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文檔簡介
1、.WD.WD.WD.【一、提RNA】一、實驗準備:1、試劑:75%乙醇、Trizol、1.5mL 進口EP管、氯仿、異丙醇、進口槍頭(RNA專用)、2、配75%乙醇(DEPC水+無水乙醇),放-20冰箱預冷;3、預冷離心機(1.5mL EP管用的);4、清潔桌面,酒精噴過之后擦干,新手套、兩層口罩;二、操作步驟:01、棄上清不回收,直接倒去;02、1mL/孔 PBS洗兩遍不回收,直接倒去,隨后用200L槍吸盡PBS;03、每孔加500L Trizol,輕晃,隨后室溫放置2min左右;04、槍頭吹打,吸出放入1.5mL 進口EP管;05、參加100L氯仿(即1/5體積的trizol);06、4離
2、心機,12000g,15min;07、吸200L(可減少)上清放入新的1.5mL 進口EP管中注意:只能吸到上清;08、參加等體積異丙醇,充分混勻,常溫放置10-30min(15min);09、4離心機,12000g,10min;10、倒掉液體,參加1mL預冷的75%乙醇劇烈混勻;11、4離心機,7500g,5min;12、倒掉上清,參加1mL預冷的75%乙醇,混勻;13、4離心機,7500g,5min;14、倒掉上清,倒扣在餐巾紙上,5-10min,用針頭或者200微升槍頭去掉管壁上的水珠;15、每管中參加40L(40-60L)的DEPC水,吹打溶解;16、測濃度先知樓21樓測RNA濃度,帶
3、DEPC水、滅菌的dd水、10微升槍和槍頭;三、本卷須知01、如果當時不測RNA濃度,可暫時把RNA放在-20冰箱。但長時間(24h)保存,需要放在-80冰箱;02、異丙醇作用是沉淀RNA,作用比乙醇好;03、04、05、06、07、08、09、【二、測RNA濃度】一、實驗準備:01、先知樓21樓-2109教室,一個冰盒+DEPC水+10微升槍、滅菌dd H2O、10L槍頭(RNA專用)、本子+筆;二、操作步驟:01、登記;02、翻開電腦=翻開“N軟件=點擊“Nucleic acid=選擇“OK=選擇“RNA;03、滅菌dd H2O清洗2-3遍,擦干;04、DEPC水 校零:即加DEPC水一滴
4、,點擊“Blank,擦干;05、測RNA:加樣品一滴,點擊“measure,擦干,隨后加下一個樣品;06、記錄數(shù)據(jù),包括RNA濃度0.1。請注意,這個值跟儀器無關,核酸的吸光度必需大于 0.1,其值才有效和可靠,因為樣品中的雜質和顆粒這些不純物的干擾通常會對光有一定吸收,其值0.1;2.A280nm、A270nm是 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%B5%B0%B0%D7&k0=%B5
5、%B0%B0%D7&kdi0=0&luki=6&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 蛋白最高吸收峰的吸收波長,比值可進展 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0
6、&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%BA%CB%CB%E1&k0=%BA%CB%CB%E1&kdi0=0&luki=8&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_bl
7、ank 核酸樣品純度評估:純 DNA 的 A260/A280比值為1.8,純RNA為2.0。如果比值低,表示受到蛋白芳香族或酚類物質的污染,需要純化樣品。比值=1.5 相當于50 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%B5%B0%B0%D7%D6%CA&k0=%B5%B0%B0%D7%D6%CA&kdi0=0&luki=2&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteer
8、ror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 蛋白質/DNA溶液.酚的最大吸收峰在270nm。3. A230nm是碳水化合物最高吸收峰的吸收波長,比值可進展核酸樣品純度評估:純DNA 和 RNA的A260/A230比值為2.5。假設比值小于2.0 標明樣品被碳水化合物糖類、鹽類或有機溶劑污染,需要純化樣品。A230
9、產(chǎn)生負值主要是由于在很低 DNA 濃度的溶液中的一些其他成分的干擾所導致的。在下一個測定中,需要降低樣品的稀釋度,A230的負值會被校正。4. A320nm或A340nm 為檢測溶液樣品的濁度和其他干擾因子。該值應該接近0.0。如果不是,標明溶液中有懸浮物,需要 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%B4%BF%BB%AF&k0=%B4%BF%BB%AF&kdi0=0&luki=1&mcp
10、m=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 純化樣品。純樣品的A320一般是0。5. A260/A280和A260/A230 是 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=
11、news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%BA%CB%CB%E1&k0=%BA%CB%CB%E1&kdi0=0&luki=8&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank
12、 核酸純度的指示值。純度好的DNA或RNA,在pH7-8.5 下A260 / A280的比值應該在2.0 或2.5。純潔的樣品比值大于1.8DNA或者2.0RNA。如果比值低于1.8 或者2.0,表示存在蛋白質或者酚類物質的影響。A230表示樣品中存在一些污染物,如 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%CC%BC%CB%AE%BB%AF%BA%CF%CE%EF&k0=%CC%BC%CB%
13、AE%BB%AF%BA%CF%CE%EF&kdi0=0&luki=4&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 碳水化合物、鹽胍鹽等,較純潔的核酸A260/A230的比值大于2.0。當0.5BSA HYPERLINK :/cpro.baidu /
14、cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%B5%B0%B0%D7%D6%CA&k0=%B5%B0%B0%D7%D6%CA&kdi0=0&luki=2&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/
15、201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 蛋白質污染時,蛋白污染會導致260和280的數(shù)值都下降,其凈結果是260/280比值下降,但260/280的比值變化并不顯著,正如 HYPERLINK :/cpro.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%B7%D6%D7%D3&k0=%B7%D6%D7%D3&kdi0=0&luki=3&mcpm=0&n=10&p=baid
16、u&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 分子克隆3所說。但蛋白殘留會導致230的數(shù)值顯著上升,顯著影響260/230的比值。也就是說,如果RNA樣品的260/2801.7,260 /2300.5,那么就應該考慮污染原因不是胍鹽殘留,而是蛋白殘留.用 HYPERLINK :/cpr
17、o.baidu /cpro/ui/uijs.php?adclass=0&app_id=0&c=news&cf=1001&ch=0&di=8&fv=18&is_app=0&jk=3d10a9164843a066&k=%B7%D6%B9%E2%B9%E2%B6%C8%BC%C6&k0=%B7%D6%B9%E2%B9%E2%B6%C8%BC%C6&kdi0=0&luki=5&mcpm=0&n=10&p=baidu&q=baidusiteerror_cpr&rb=0&rs=1&seller_id=1&sid=66a0434816a9103d&ssp2=1&stid=9&t=tpclicked3_hc&
18、td=1615258&tu=u1615258&u= :/html/201305/5867686.html&urlid=0 t :/html/201305/_blank 分光光度計測量RNA時,用水而不是用TE 緩沖液稀釋RNA樣品會造成A260/A280比值下降。原因是低離子強度和低pH溶液會增加280 nm處的光吸收值。加氯仿離心后取上清的時候千萬不要貪多,那樣就很容易被蛋白污染,所以現(xiàn)在一般取400ul左右。6.當260/230加1號試劑2L=加3號試劑(0.5L)=加4號試劑(0.5L)=加2號試劑(0.5L)=加RNA=離心=上機;02、上機:OPEN=點擊“User菜單下的“clx,
19、點擊“Accept=選擇“run下面的到“exp001 rt=修改體系“10L(默認為25微升)=點擊“Start,進入界面;03、37.0 15min=85.0 5s=4.0 60min;04、4冰箱保存;三、本卷須知01、加液盡量無氣泡,槍不要打到底;02、嚴格冰上操作,防止RNA降解;【qRT-PCR】一、實驗準備:01、試劑:Roche的SyBr Green(rox)02、1.5mL EP管、0.2mL EP管、96孔板/八連冠;10L、20L、100L、200L、2.5L、1000L槍;03、冰盒一個、Rox化凍(避光)、引物化凍GAPDH、cDNA、DEPC水;二、操作步驟:01、
20、 Rox 10L;+ dd H2O 6L;+ P1(F) 1 + P2(R) 1 + cDNA 2-20L體系02、計算:每個樣,X個抗體(至少包括GAPDH-內參,還有目的),三個副孔。 即如果六個樣,2個抗體(GAPDH,PLK1),三個副孔。6*1*3=1820(PLK1),6*1*3=1820(GAPDH);1234567891011126/PLK16/PLK16/PLK15/PLK15/PLK15/PLK16/GAP6/GAP6/GAP5/GAP5/GAP5/GAP4/PLK14/PLK14/PLK13/PLK13/PLK13/PLK12/PLK12/PLK12/PLK11/PLK1
21、1/PLK11/PLK14/GAP4/GAP4/GAP3/GAP3/GAP3/GAP2/GAP2/GAP2/GAP1/GAP1/GAP1/GAP PLK1 Rox:10*20=200L DEPC水:6*20=120L F:1*20=20L R:1*20=20L GAPDH Rox:10*20=200L DEPC水:6*20=120L F:1*20=20L R:1*20=20L03、稀釋cDNA 10倍(18L DEPC水+2L)=配置Mix(Rox+ DEPC水+F+R)=加樣(一橫排先加18L mix(GAPDH),隨后參加18L mix(PLK1)。 隨后六個孔加同一個cDNA;06、去除
22、氣泡:加好樣后,觀察有無氣泡。如果有氣泡,彈開,隨后2000rpm離心,時間不定(5s即可);07、上機+設置程序: A、雙擊翻開程序“StepOne Software v2.1 =點擊“ OK =點擊“Ignore & Continue Startup =點擊“Advanced Setup =進入“ Experment Properties界面 ;B、Experment Properties界面: 將Expriment Name從Untitled 修改為“日期,如2015-12-17,將User Name(Optional)修改為“CZL;Which instrument are you u
23、sing to run the experiment ?中選擇“96 wells,一般無需修改;What type of experiment do you want to setup ?中選擇“Quantitation-Comparative CT(CT);Which reagents do you want to use to detect the target sequence ? 中選擇“SYBR Green Reagents; Which ramp speed do you want to use in the instrument run ? 中選擇“Fast( 40 minutes to complete a run);C、Plate Setup界面-Define Targets and Samples界面: Define Targets欄中:如果有GAPDH、PLK1、Akt、PI3K三個引物,那么點擊“Add New Target 三下,出現(xiàn)“Target1、Target2、Targ
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