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文檔簡介
電泳遷移率實驗技術(shù)(EMSA)主講人:劉東
凝膠遷移實驗又稱凝膠阻滯實驗或電泳遷移率實驗(EMSA,electrophoreticmobilityshiftassay),是一種用于蛋白與核酸相互作用的技術(shù)。最初是用于轉(zhuǎn)錄因子與啟動子相互作用的驗證性實驗,也可應(yīng)用于蛋白-DNA、蛋白-RNA互作研究。一、實驗原理
EMSA主要基于蛋白-探針復(fù)合物在在凝膠電泳過程中遷移較慢的原理。根據(jù)實驗設(shè)計特異性和非特異性探針,當(dāng)核酸探針與樣本蛋白混合孵育時,樣本中可以與核酸探針結(jié)合的蛋白質(zhì)與探針形成蛋白-探針復(fù)合物;這種復(fù)合物由于分子量大,在進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳時遷移較慢,而沒有結(jié)合蛋白的探針則較快;孵育的樣本在進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳并轉(zhuǎn)膜后,蛋白-探針復(fù)合物會在膜靠前的位置形成一條帶,說明有蛋白與目標(biāo)探針發(fā)生互作。二、實驗操作步驟
1、實驗前準(zhǔn)備
(1)合理的實驗方案根據(jù)研究目的合理設(shè)計特異性探針實驗組以及非特異性探針對照組,如有必要還可以添加特異性抗體組、特異性核酸競爭組等。(2)樣本制備可以選擇提取樣本的總蛋白、核蛋白或者使用純化好的目的蛋白。對樣本蛋白進(jìn)行定量,實驗中等量加入蛋白。(3)探針制備根據(jù)實驗要求設(shè)計不同的探針并添加標(biāo)記,可以合成核酸后自行添加,部分已知蛋白有商業(yè)化的抗體也可以直接購買?,F(xiàn)在大多數(shù)實驗室已經(jīng)不再使用放射性標(biāo)記,生物素使用相對較多。蛋白樣本(2-5μg)Xμlpolyd(I-C)1μlBindingBuffer2μlNuclease-FreeddH2OXμl總體積9μl2、形成蛋白-探針復(fù)合物
(1)在0.5ml離心管中按順序?qū)⑾铝薪M份混勻:
(2)冰浴5min后,加入1μl探針。(對照組加1ul對照探針)
(3)PCR儀中室溫(20-23℃)溫育30min。3、制備凝膠,電泳
(1)必須是非變性PAGE凝膠,一般用6.5%的非變性膠.制膠很重要,直接影響電泳的效果!一般控制在5分鐘凝固的效果。(2)加樣前先在預(yù)冷的0.5XTBEbuffer中120V預(yù)電泳10min,電泳完畢后沖洗加樣孔。(3)混合樣本及電泳緩沖液,點樣電泳。(4)將電泳槽置于冰上或者4℃環(huán)境中,恒壓100V進(jìn)行電泳,直至緩沖液指示帶距離凝膠底部2~3cm為止。(大約50-60min,根據(jù)實際情況調(diào)整電泳時間及電壓;電泳時間不宜過長)10XTBE1.0ml40%Acrylamide(聚丙烯酰氨)3.3mldeionized,sterilewater14.8ml50%Glycerol(甘油)1.0mlTEMED(四甲基乙二胺)10μl脫氣10min10%AP(過硫酸銨)120μl4、轉(zhuǎn)膜
(1)在預(yù)冷的0.5XTBE中浸泡凝膠,膜,濾紙和纖維墊。(2)按如下順序組裝“三明治”:纖維墊,濾紙,凝膠,膜,濾紙,纖維墊。注意電極,確保凝膠位于陰極、膜位于陽極。(3)在預(yù)冷的0.5XTBE中進(jìn)行轉(zhuǎn)膜。轉(zhuǎn)膜裝置應(yīng)置于冰上或者低溫室中,恒壓60V轉(zhuǎn)膜1h。(注意根據(jù)實際情況調(diào)整電壓及時間)。5、紫外交聯(lián)
紫外交聯(lián)儀是一種多用途的254mm紫外輻射系統(tǒng)主要用于將核酸交為使核苷酸固定在雜交膜上。傳統(tǒng)的方法是將膜置于80℃真空烘箱中烘2小時,在本紫外交聯(lián)儀上僅需在254nm紫外光下照射幾秒鐘即可。·紫外照射可使雜交信號比傳統(tǒng)烘烤法提高5-10倍。5.洗滌、孵育
用WashingBuffer洗滌(整個過程避免膜干燥)倒掉沖洗緩沖液,加入BlockBuffer輕微震蕩20min加入適量的HRP酶標(biāo)記的鏈霉親和素室溫震蕩孵育45min。(勿將酶標(biāo)記物直接加到膜上)去掉酶聯(lián)物稀釋液,用WashingBuffer洗膜三次,每次室溫輕微震蕩10min。配置反應(yīng)底物,均勻加至膜上,室溫孵育5min。(可以在加完底物后,用薄膜輕輕覆蓋在膜上,使底物均勻覆蓋,注意不要產(chǎn)生氣泡)6、曝光成像兩種方法:化學(xué)發(fā)光數(shù)字成像與檢測和感光膠片沖印成像用TNFa刺激腫瘤細(xì)胞后得到的核蛋白的NFKB的EMSA試驗圖片
操作基本和Western試驗操作相當(dāng),只是這個膜是一次性的,不能重復(fù)使用,一定保存好圖片!由于跑得是非變性凝膠,蛋白保持天然構(gòu)像和活性,所以條帶很可能是一塊一塊的而不像WB那樣很規(guī)整的一條細(xì)線,這個很正常。三、常見問題1、為什么看不到遷移帶?
1)蛋白樣本提取質(zhì)量不高,蛋白降解或者提取量不足。2)樣本中沒有可以與探針結(jié)合的蛋白。3)探針與蛋白無特異性的相互作用。4)轉(zhuǎn)膜效率低,蛋白或者探針未轉(zhuǎn)移到膜上。5)曝光或者成像時間過短。2、為什么實驗背景高?
1)曝光或者成像時間過長。2)封閉時間不足或者效率不高。3)洗滌效果不佳4)實驗過程中膜沒有一直處于濕潤狀態(tài)。3、EMSA測定需要多少量的蛋白與標(biāo)記的探針?
對每一個特定的結(jié)合蛋白和探針,所用的純化蛋白,部分純化蛋白,粗制核抽提液需作優(yōu)化:一般所用純化蛋白的量在20-2000ng間,可將蛋白:DNA的等摩爾比調(diào)整為蛋白的
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